Analyse der beuteevozierten neuronalen Aktivität in einer transgenen Zebrafischlarve

0 Ansichten3:10 Min. • July 8th, 2025

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Beginnen Sie mit einer Verhaltensaufzeichnungskammer, die eine anästhesierte, transgene Zebrafischlarve enthält, die in einer niedrigschmelzenden Agarose immobilisiert ist.

Die Prätectum-Region des Mittelhirns der Larve und der untere Lappen des Hypothalamus enthalten modifizierte Neuronen, die fluoreszierende Kalziumindikatoren exprimieren.

Entfernen Sie die Agarose um den Kopf der Larve und waschen Sie sie mit Wasser, um Agarosereste zu entfernen.

Platzieren Sie ein Pantoffeltierchen als Beute in der Nähe der Larve.

Übertragen Sie die Aufnahmekammer unter ein Fluoreszenzmikroskop.

Während die Beute schwimmt, erkennt das Auge der Larve sie und sendet ein Signal an die Regionen des Prätektums und des Hypothalamus, die an der Beuteerkennung beteiligt sind.

Dadurch werden Kalziumkanäle in diesen Neuronen geöffnet, wodurch Kalziumionen in die Kalziumindikatoren eindringen und an diese binden können, was zu einer Fluoreszenzemission führt.

Nehmen Sie die Zeitraffer-Bildgebung auf, um die Fluoreszenzintensität von Neuronen entlang des Schwimmwegs der Beute zu erkennen und eine Farbkarte zu erstellen.

In dieser Karte stellen Pfeilspitzen die Flugbahnen der Beute dar: Schwarze Pfeile zeigen keine neuronale Erregung, während farbige Pfeile eine erhöhte neuronale Erregung anzeigen, die durch die Bewegung der Beute ausgelöst wird.

Nach der Kultivierung von Pantoffeltierchen und der Betäubung einer Zebrafischlarve gemäß dem Textprotokoll legen Sie die Larve in 2% Agarose mit niedrigem Schmelzpunkt und entfernen Sie sofort überschüssige Agarose, so dass die Oberfläche der Agarose leicht konvex aussieht. Richten Sie die Larve mit einer Präpariernadel schnell in eine aufrechte Position ein.

Machen Sie dann mit einem chirurgischen Messer ein paar kleine Schnitte in die Agarose, um die Agarose um den Zebrafischkopf herum zu entfernen, wodurch Platz für das Pantoffeltierchen zum Schwimmen entsteht. Entfernen Sie vorsichtig die Agarosereste, indem Sie vorsichtig Systemwasser auf die Kammer gießen. Legen Sie als Nächstes ein Pantoffeltierchen in die Aufnahmekammer, das als visueller Reiz dient.

Stellen Sie dann die Aufnahmekammer unter ein Epifluoreszenzmikroskop, das mit einer wissenschaftlichen CMOS-Kamera ausgestattet ist, und wählen Sie ein 2,5-fach-Objektiv aus. Starten Sie die Bildaufnahmeanwendung für die ausgerüstete Kamera. Klicken Sie auf Sequenzbereich, und wählen Sie im Fensterausschnitt Festplattendatensatz aus. Legen Sie im Abschnitt "Scan-Einstellungen" die Frame-Anzahl auf 900 oder eine andere gewünschte Gesamt-Frame-Anzahl fest.

Legen Sie im Bereich "Erfassen" die Belichtungszeit auf 30 Millisekunden und die Klassierung auf 2 x 2 fest. Klicken Sie im Aufnahmebereich auf Live, um die Larve in der Kameraansicht zu lokalisieren und zu fokussieren, und klicken Sie dann auf Live stoppen und dann auf die Schaltfläche Start. Speichern Sie den Film im .cxd-Format und analysieren Sie die Daten gemäß dem Textprotokoll.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026