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Nehmen Sie eine betäubte Ratte in Rückenlage und machen Sie einen Schnitt in der Leistenregion, um die Oberschenkelarterie freizulegen.
Verschluss der Arterie, um den Blutfluss vorübergehend einzuschränken. Erstellen Sie eine Öffnung, führen Sie einen Druckmesskatheter ein, um den arteriellen Blutdruck zu messen, und sichern Sie den Katheter.
Positionieren Sie die Ratte in Bauchlage in einem stereotaktischen Rahmen und machen Sie einen seitlichen Schnitt unterhalb der Rippen.
Identifizieren Sie mit einem Mikroskop die renalen Sympathikusnerven (RSNs), die den Blutfluss zur Niere regulieren.
Heben Sie den Nerv auf eine Aufzeichnungselektrode, fügen Sie Öl hinzu, um eine Austrocknung der Nerven zu verhindern, und zeichnen Sie die elektrische Aktivität auf.
Injizieren Sie intravenös ein Medikament, das eine arterielle Verengung verursacht, die den systemischen Blutdruck erhöht.
Barorezeptoren erkennen einen erhöhten Blutdruck und signalisieren dem Hirnstamm, sympathische Nerven, einschließlich RSNs, zu hemmen.
Entfernen Sie das Öl, tragen Sie ein Gel auf, um die Elektrode für eine stabile Aufzeichnung zu sichern, und überwachen Sie die RSN-Aktivität.
Eine vorübergehende Hemmung der RSN-Aktivität, die mit einem erhöhten arteriellen Druck zusammenfällt, bestätigt die medikamenteninduzierte RSN-Hemmung.
Untersuchen Sie vor der arteriellen Kanülierung den Druckmesskatheter unter starker Vergrößerung, um sicherzustellen, dass der Katheter frei von Blasen und Ablagerungen ist und einen intakten Meniskus zwischen der Flüssigkeit und den mit Gel gefüllten Komponenten aufweist. Füllen Sie vor jeder Implantation das Gel an der distalen Spitze des Katheters nach und schalten Sie den Transmitter mit einem Magneten ein. Legen Sie einen lockeren Überhand-Halbknoten in die proximale Naht, um die Oberschenkelarterie kurz zu verschließen, halten Sie den Kathetereinführer in der nicht-dominanten Hand und greifen Sie mit einer Gefäßkanülenzange die Spitze der Kanüle der Telemetrieeinheit, um ein Verschieben des Gels von der Spitze zu vermeiden.
Stechen Sie mit einer gebogenen 22-Gauge-Nadelspitze ein Loch in die Arterie und führen Sie die Kanüle so weit wie möglich in die Arterie ein. Befestigen Sie dann den Druckkatheter mit den proximalen und distalen Nahtbindern und stecken Sie den Körper des Telemetrieimplantats in die Flanke neben dem Schnitt. Bewegen Sie die Ratte vorsichtig in die Bauchlage in einem stereotaktischen Operationsrahmen, wobei sich der Kopf zwischen den Ohrstangen befindet.
Um die sympathischen Nerven der Niere zu isolieren, schließen Sie eine Drahtelektrode für die Aktivität des renalen sympathischen Nerven oder RSNA an einen 10X-Vorverstärker in einem Mikroelektrodenverstärker an und machen Sie einen Skalpellschnitt, der sich von 4 bis 5 Zentimetern unterhalb der Rippen in kaudaler Richtung leicht lateral der Wirbelsäule erstreckt.
Blunt-Dissektion, um die paraspinalen Muskeln sichtbar zu machen und einen sehr oberflächlichen 1 bis 2 Zentimeter großen rostrocaudalen Schnitt zu machen, wo das Fett auf den Muskel trifft. Verteilen Sie mit Applikatoren mit Wattespitze das Fett vom Muskel weg, um die Niere sichtbar zu machen, ohne in den Peritonealraum einzudringen, und verwenden Sie Retraktoren, um die Niere sanft von den paraspinalen Muskeln zu trennen, um die Nierenarterie und die Bauchaorta sichtbar zu machen, und verwenden Sie eine hohe Vergrößerung, um die Nierennerven in der Schnitttasche zu identifizieren.
Die Nervenbündel sind am besten im rechten Winkel sichtbar, der von der Aorta und der Nierenarterie gebildet wird und der Nierenarterie von der Aorta bis zu den Nieren folgt. Verwenden Sie dann eine Mikrodisparierpinzette, um ein Segment des Nervenbündels, das auf der Aufzeichnungselektrode platziert werden soll, vorsichtig vom umgebenden Gewebe zu trennen. Befestigen Sie die RSNA-Drahtelektrode in einer Halterung und senken Sie die Elektrode auf Höhe des Nervensegments ab.
Verwenden Sie einen Nervenhaken, um das Segment des Nierennervs vorsichtig auf die Elektrode zu heben, ohne den Nerv zu dehnen, und füllen Sie den Schnitt mit Mineralöl, um den freiliegenden sympathischen Nerv der Niere mit Feuchtigkeit zu versorgen. Befestigen Sie eine Erdungsklammer am Tier, am anderen Ende am Faradayschen Käfig und verwenden Sie Hoch- und Tiefpassfilter, um das Signal zu den Verstärkern zu leiten. Stellen Sie dann die Verstärkung auf bis zu 10 Kilohertz ein, einschließlich eines Audiomonitors, um das Berstmuster des RSNA zu beurteilen.
Um die Qualität der RSNA-Aufzeichnung zu beurteilen, evozieren Sie den Baroreflex mit einer intravenösen Bolusinjektion von 100 Mikrogramm pro Milliliter Phenylephrin, um den Blutdruck zu erhöhen und die Aktivität des sympathischen Nervus der Niere zu hemmen, wobei die Position der Elektroden angepasst wird, um das Signal nach Bedarf zu verbessern. Sobald ein klares Signal erhalten wurde, saugen Sie das Mineralöl an und befestigen Sie die Elektrode mit Kieselgel.