Messung der neuronalen Aktivität in einem Maushirnschnitt nach längerer Inkubation

0 Ansichten2:55 Min. • July 8th, 2025

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Sichern Sie ein Maushirnschnitt in einer Aufnahmekammer, die nach längerer Inkubation mit sauerstoffhaltigem aCSF durchblutet wurde.

Die Zellen in der Scheibe sind mit einem Kalziumindikator beladen, der intrazelluläre Kalziummessungen erleichtert.

Nehmen Sie eine Aufzeichnungspipette, die aus einer Elektrode in einer Elektrolytlösung besteht.

Identifizieren Sie ein Zielneuron. Positionieren Sie die Aufzeichnungspipette mit positivem Druck auf der Zellmembran, so dass ein Grübchen entsteht.

Üben Sie Unterdruck aus, um eine dichte Abdichtung zu erzeugen.

Wenden Sie weiterhin Unterdruckimpulse an, die die Membran aufbrechen und eine Ganzzellenkonfiguration herstellen.

Perfundieren Sie aCSF mit einer hohen Kaliumkonzentration, die die Membran des Neurons depolarisiert.

Die Depolarisation öffnet Natriumkanäle und löst ein Aktionspotential aus, das wiederum spannungsgesteuerte Kalziumkanäle aktiviert und den Kalziumeinstrom ermöglicht.

Kalziumionen binden an den Indikator und verstärken die Fluoreszenz, die bei geeigneter Beleuchtung sichtbar gemacht werden kann.

Die Zunahme der intrazellulären Fluoreszenz, die durch den Kalziumeinstrom nach Kaliumapplikation verursacht wird, deutet auf die Lebensfähigkeit der Neuronen nach längerer Inkubation hin.

Legen Sie das Gewebe für die Aufzeichnung in eine untergetauchte Aufnahmekammer unter einem Mikroskop und perfundieren Sie es mit sauerstoffhaltigem aCSF bei einer Flussrate von 4 bis 5 Millilitern pro Minute. Halten Sie das Taschentuch mit einer speziell angefertigten Harfe fest. Bereiten Sie als Nächstes einige Aufnahmepipetten mit einem Mikropipettenabzieher vor, um einen Endwiderstand von 5 bis 6 Megaohm zu erreichen.

Füllen Sie die Pipette mit 3 bis 4 Mikrolitern interner Lösung und legen Sie die Lösung dann auf Eis. Visualisieren Sie dann die Zellen mit einer CCD-Kamera unter IR-DIC. Positionieren Sie die Pipette mit einem Mikromanipulator auf der Zellmembran. Halten Sie den Überdruck durch eine Saugöffnung am Pipettenhalter aufrecht. Sobald sich die Pipette auf der Zelle befindet, üben Sie einen sanften Unterdruck auf die Pipette aus, um eine Gigaohm-Versiegelung zu erreichen.

Dann wird die Zellmembran mit kurzem Unterdruck aufgerissen. Starten Sie anschließend die Aufzeichnung des Stroms oder der Spannungsklemme für die gesamte Zelle. Für eine einzelne Anregungswellenlänge von Strömung 4 wird das Anregungslicht durch einen 460- bis 490-Nanometer-Bandpassfilter und das emittierte Licht durch einen 515- bis 550-Nanometer-Bandpassfilter gefiltert.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026