Etablierung einer Ganzzell-Patch-Klemme für die elektrophysiologische Aufzeichnung von vomeronasalen sensorischen Neuronen

0 Ansichten3:34 Min. • July 8th, 2025

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Nehmen Sie einen koronalen Schnitt des chemosensorischen Vomeronasalorgans von einer transgenen Maus, die fluoreszenzmarkierte sensorische Neuronen exprimiert.

Das sensorische Epithel enthält diese markierten Neuronen, die dem mit der Nasenhöhle verbundenen Lumen ausgesetzt sind, um chemische Signale wahrzunehmen.

Sichern Sie die Scheibe mit einem Scheibenanker in einer Bildgebungskammer.

Übertragen Sie die Kammer in ein Aufnahme-Setup und lassen Sie sauerstoffhaltige extrazelluläre Lösung fließen, um die Lebensfähigkeit des Gewebes zu erhalten.

Positionieren Sie eine Perfusionspipette in der Nähe der Schnitte, um chemische Reize einzuführen, und eine Aufnahmepipette über den sensorischen Neuronen.

Identifizieren Sie mit einem Fluoreszenzmikroskop die markierten Neuronen.

Üben Sie positiven Druck aus, um ein Verstopfen der Pipette zu verhindern, und nähern Sie sich einem Neuron, bis sich ein Grübchen auf der Membran bildet.

Schalten Sie auf Unterdruck um und ziehen Sie die Membran in die Pipette.

Wenden Sie einen Sog an, um die Membran zu durchbrechen, und stellen Sie eine Kontinuität mit dem Zytoplasma her, die als Ganzzell-Patch-Klemme bezeichnet wird und die Einführung chemischer Reize und die Aufzeichnung der daraus resultierenden elektrophysiologischen Signale ermöglicht.

Übertragen Sie eine VNO-Scheibe in die Bildgebungskammer und fixieren Sie die Position der Scheibe mit einem Edelstahlanker, der mit 0,1 Millimeter dicken synthetischen Fasern verdrahtet ist. Decken Sie die Gewebescheibe nicht mit einem der Kunstfaserfäden ab. Übertragen Sie dann die Bildgebungskammer in das Aufnahme-Setup und übermalen Sie die Scheibe kontinuierlich mit sauerstoffreichem S2 bei Raumtemperatur.

Passen Sie die Saugkapillare an die Oberfläche der Lösung an, um einen ständigen Austausch der Badlösung zu gewährleisten. Passen Sie dann den 8-in-1-Perfusionsstift mit mehreren Zylindern über und in der Nähe des nicht-sensorischen Teils der VNO-Scheibe an, der das Blutgefäß enthält. Verbinden Sie anschließend die Referenzelektrode und die Badlösung mit der L-förmigen Agarbrücke, die mit 150 Millimolar Kaliumchlorid gefüllt ist.

Füllen Sie anschließend die Patch-Pipette mit der Pipettenlösung S4. Montieren Sie die Pipette über die mit Silberchlorid beschichtete Elektrode, die mit dem Kopftisch verbunden ist, ohne die Beschichtung abzukratzen, und befestigen Sie sie fest. Üben Sie dann einen leichten Überdruck auf die Patch-Pipette aus, bevor Sie in die Badewanne gelangen. Überwachen Sie die Pipette und stellen Sie sicher, dass sie zwischen vier und 10 Megaohm liegt.

Visualisieren Sie die VNO-Schicht mit einer CCD-Kamera unter Verwendung von infrarotoptimiertem DIC und identifizieren Sie FPR-rs3-i-Venus-exprimierende Zellen oder ähnlich markierte Neuronen mithilfe von Fluoreszenzbeleuchtung und einem geeigneten Filterwürfel. Nähern Sie sich dem Zellkörper mit Handrädern, um maximale Empfindlichkeit zu erzielen. Durch den Überdruck wird eine kleine Delle auf der Somamembran der Zelle sichtbar, sobald sich die Pipettenspitze in unmittelbarer Nähe befindet.

Lassen Sie dann den Überdruck ab und üben Sie einen leichten Unterdruck aus, um die Zellmembran anzusaugen, um eine hochohmige Abdichtung von 1 bis 20 Gigaohm zu erhalten. Wenden Sie anschließend einen kurzen und sanften Sog an, um die Zellmembran aufzubrechen und die Ganzzellkonfiguration zu etablieren.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026