Gepaarte Patch-Clamp-Aufzeichnung der neuronalen Verbindungen in akuten Hirnschnitten

0 Ansichten3:50 Min. • July 8th, 2025

Sichern Sie ein Hirnschnitt mit der Zielregion in einer Aufnahmekammer.

Positionieren Sie eine Aufnahmepipette mit einer internen Lösung über einem postsynaptischen Neuron und erreichen Sie eine Ganzzellkonfiguration.

Führen Sie eine Suchpflasterpipette in der Nähe eines präsynaptischen Neurons ein.

Diese Pipette ist mit einer Lösung auf Natriumbasis gefüllt, um die Depolarisation der Neuronen bei der Suche nach der präsynaptischen Zelle zu verhindern.

Verwenden Sie ein sanftes Absaugen, um mit der Suchpipette eine lose Dichtungskonfiguration herzustellen.

Halten Sie das Membranpotential und legen Sie große Stromimpulse an, um ein Aktionspotential im präsynaptischen Neuron auszulösen.

Überwachen Sie die postsynaptische Reaktion auf diese Stimulation.

Wenn keine Reaktion festgestellt wird, patchen Sie ein anderes präsynaptisches Neuron und wiederholen Sie die Stimulation.

Setzen Sie diesen Prozess fort, bis eine Reaktion im postsynaptischen Neuron beobachtet wird.

Ersetzen Sie die suchende Pipette durch eine Aufzeichnungspipette und etablieren Sie eine Ganzzellkonfiguration im präsynaptischen Neuron.

Wenden Sie Stromimpulse an, um Aktionspotentiale im präsynaptischen Neuron auszulösen, und zeichnen Sie die postsynaptische Reaktion auf.

Nachdem Sie die Scheiben der Zielregion vorbereitet haben, lassen Sie sie inkubieren. Ziehen Sie in dieser Zeit an den Patch-Pipetten, die einen langen und schlanken Schaft haben sollten. Nachdem Sie eine Gehirnscheibe mit einer Platinharfe in einer Experimentierkammer befestigt haben, füllen Sie eine Aufnahmepipette mit interner Lösung.

Setzen Sie die Pipette in den Vorverstärker und patchen Sie ein mutmaßliches postsynaptisches Neuron im Ganzzellmodus. Unter Verwendung einer Suchpflasterpipette mit einem Widerstand von 8 bis 10 Megaohm, die mit einer internen Lösung gefüllt ist, in der Kaliumsalze durch Natriumsalze ersetzt werden, üben Sie einen sanften Sog an der Suchpipette aus, um ein potenzielles präsynaptisches Neuron in einer lockerzellgebundenen Konfiguration zu pflastern.

Halten Sie das Membranpotential unter der losen Dichtung im Stromzangenmodus auf minus 30 bis minus 60 Millivolt. Legen Sie dann große Stromimpulse von 0,2 bis 2 Nanoampere an, um ein Aktionspotential in der potenziellen präsynaptischen Zelle hervorzurufen.

Beobachten Sie dieses Aktionspotential als kleine Spitze, die auf dem Spannungsgang aufleuchtet. Stellen Sie die Stimulationsfrequenz auf 0,1 Hertz ein, um einen Nachlauf der postsynaptischen Reaktion zu verhindern. Wenn das postsynaptische Neuron nicht auf die Stimulation des getesteten potenziell präsynaptischen Neurons reagiert, wird ein neues potentiell präsynaptisches Neuron im Loose-Seal-Modus geflickt.

Testen Sie auf diese Weise bis zu 30 potenziell präsynaptische Neuronen und verwenden Sie weiterhin dieselbe Suchpflasterelektrode, solange eine Dichtung mit einem Widerstand von mehr als 30 Megaohm hergestellt werden kann.

Wenn die Stimulation im Loose-Seal-Modus zu einem EPSP oder IPSP mit einer Latenz von weniger als fünf Millisekunden im postsynaptischen Neuron führt, entfernen Sie die suchende Pipette aus dem präsynaptischen Neuron.

Mit einer mit Biocytin gefüllten Aufzeichnungs-Patch-Elektrode, die eine reguläre interne Lösung mit einem Widerstand von vier bis acht Megaohm enthält, das präsynaptische Neuron patchen und im Ganzzell-Strom-Clamp-Modus aufzeichnen. Auslösen von Aktionspotentialen durch Strominjektion in die präsynaptischen Neuronen und Aufzeichnen der postsynaptischen Antwort.

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026