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Entnehmen Sie Mikrogliakulturen in einer Multiwell-Platte, die Medien enthält.
Ersetzen Sie die Hälfte des Mediums in der Testvertiefung durch Medien, die Silbernanopartikel enthalten, und in der Kontrollvertiefung durch Fahrzeugmedien. Ausbrüten.
Die Mikroglia internalisieren die Nanopartikel, werden aktiviert und setzen entzündungsfördernde Zytokine frei.
Das Vehikelmedium und das konditionierte Medium, das diese Zytokine enthält, werden in Filter umgefüllt, die auf Sammelröhrchen angebracht sind.
Zentrifuge, um die Nanopartikel zu entfernen, wobei die Zytokine erhalten bleiben.
Drehen Sie die Filter in neue Sammelrohre um, zentrifugieren Sie und sammeln Sie das Medium. Fügen Sie frische Medien hinzu.
Nehmen Sie als nächstes hypothalamische neuronale Kulturen.
Ersetzen Sie die Hälfte des Kontroll-Well-Mediums durch Fahrzeug-Medien und das Test-Well-Medium durch konditionierte Medien. Ausbrüten.
Die Zytokine binden an Rezeptoren auf hypothalamischen Neuronen und aktivieren so Signalwege, die den neuronalen Tod induzieren.
Resazurin zugeben und inkubieren.
In lebenden Zellen reduzieren Dehydrogenase-Enzyme das schwach fluoreszierende Resazurin zu fluoreszierendem Resorufin.
Messen Sie die Fluoreszenz.
Eine verminderte Fluoreszenz deutet auf einen erhöhten neuronalen Tod des Hypothalamus hin, was auf eine durch Nanopartikel induzierte Neurotoxizität hindeutet.
Sammeln Sie zunächst 200 Mikroliter überstehendes Medium aus jeder Plattenvertiefung und laden Sie es auf einen Filter, der die Nanopartikel entfernt, und legen Sie es über ein Mikrozentrifugenröhrchen.
Es ist wichtig, daran zu denken, dass bei der Filterung der Nanopartikel deren Größe, Form und Konzentration die Filtrationseffizienz beeinflussen, daher ist es ratsam, die Filtration vorher zu testen.
Schleudern Sie nun die Röhrchen bei 14.000 g bei Raumtemperatur 15 Minuten lang herunter. Entsorgen Sie dann den Durchfluss, der die Nanopartikel enthält, und legen Sie die Filter kopfüber in neue Auffangröhrchen. Drehen Sie die Filter zwei Minuten lang bei 1.000 g auf den Kopf, um konzentriertes, konditioniertes Medium mit Zytokinen zu sammeln.
Erhöhen Sie anschließend das Volumen der Sammlung auf 400 Mikroliter mit frisch hergestelltem ergänztem DMEM und lagern Sie die Röhrchen auf Eis. Für diesen Assay werden hypothalamische Zellen aus gefrorenen Beständen unter Verwendung der gleichen Methoden hergestellt, die für die Etablierung von Mikrogliakulturen beschrieben sind. Verwenden Sie sie schließlich, um schwarzwandige Platten mit klarem Boden mit 5.000 Zellen pro Vertiefung in 200 Mikroliter supplementiertes DMEM zu säen.
Entfernen Sie nach 24 Stunden Kultivierung 100 Mikroliter Medium und ersetzen Sie es durch 100 Mikroliter gefiltertes und konzentriertes Medium, das aus den aktivierten Mikroglia-Zellkulturen gesammelt wurde. Inkubieren Sie die Platte dann 24 Stunden lang unter Standardbedingungen. Geben Sie am nächsten Tag 22 Mikroliter Resazurin-Reagenz in jede Vertiefung und setzen Sie die Inkubation für 20 Minuten fort. Nehmen Sie dann mit einem Multimode-Spektralphotometer eine Fluoreszenzmessung vor, um die Lebensfähigkeit der Zelle in Bezug auf relative Fluoreszenzeinheiten abzuschätzen.