Messung der Aktivierung von Geruchsrezeptoren mit einem zyklischen Echtzeit-Adenosinmonophosphat-Assay

0 Ansichten3:30 Min. • July 8th, 2025

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Nehmen Sie eine Multiwell-Platte mit transfizierten Säugetierzellen.

Diese Zellen exprimieren den Geruchsrezeptor (OR) des Geruchsneurons, einen G-Protein-gekoppelten Rezeptor, zusammen mit einem cAMP-Biosensor, der eine cAMP-Bindungsdomäne enthält, die mit einer mutierten Luciferase fusioniert ist.

Entfernen Sie das Medium und waschen Sie es mit Puffer, um das restliche Medium zu entfernen.

Fügen Sie einen Puffer hinzu, der ein cAMP-Biosensorsubstrat enthält. Inkubieren, um die Aufnahme des Substrats in die Zellen zu erleichtern.

Messen Sie mit einem Chemilumineszenzplatten-Reader die basale Lumineszenz der Zellen.

Geben Sie steigende Konzentrationen des Testodorierstoffs in die Vertiefungen, wobei eine Vertiefung als Kontrolle unbehandelt bleibt.

Das Odormittel bindet an den OR und löst eine Signalkaskade aus, die cAMP erzeugt.

Dieses cAMP bindet an die Bindungsdomäne des Biosensors und aktiviert die Luciferase, die mit dem Substrat interagiert, um Licht zu emittieren.

Messen Sie die Lumineszenz in Echtzeit. Eine Zunahme der Lumineszenz mit höheren Odoriermittelkonzentrationen deutet auf eine OR-Aktivierung durch den Odorant hin.

Beobachten Sie die transfizierten Zellen vor der Stimulation unter einem Phasenkontrastmikroskop, um eine korrekte Konfluenz von 50 % bis 80 % pro Vertiefung zu gewährleisten, bevor Sie in den Inkubator zurückkehren. Bereiten Sie dann das Stimulationsmedium vor, indem Sie 10 millimolare HEPES und 5 millimolare Glukose zu Hanks ausgewogener Salzlösung hinzufügen. Tauen Sie 55-Mikroliter-Aliquots von zyklischen Echtzeit-AMP-Assay-Substratreagenzien auf Eis auf.

Bereiten Sie eine 2%ige Äquilibrierungslösung her, indem Sie 55 Mikroliter des Substratreagenzes und 2.750 Mikroliter Stimulationsmedium mischen. Nachdem Sie eine dicke Schicht Papiertücher auf der Bank ausgebreitet haben, klopfen Sie die Platte vorsichtig und wiederholt kopfüber auf die Papiertücher, so dass das Transfektionsmedium von den Papiertüchern absorbiert wird. Waschen Sie die Zellen, indem Sie 50 Mikroliter Stimulationsmedium in jede Vertiefung pipettieren.

Klopfen Sie das Stimulationsmedium sanft und wiederholt aus der 96-Well-Platte ab. Pipettieren Sie 25 Mikroliter 2%ige Äquilibrierungslösung in jede Vertiefung und inkubieren Sie 2 Stunden lang bei Raumtemperatur im Dunkeln. Vor Ablauf der Inkubationszeit werden aufgetaute Odorstoff-Stammlösungen auf die Arbeitskonzentration in einem Stimulationsmedium verdünnt.

Verwenden Sie vor der Zugabe von Odorierungsmitteln einen Chemilumineszenzplatten-Reader, um den basalen Lumineszenzgrad der Platte zu messen. Nehmen Sie die Platte schnell aus dem Plattenleser und geben Sie 25 Mikroliter der Odoriermittelverdünnungen in jede Vertiefung. Starten Sie dann sofort die kontinuierliche Lumineszenzmessung aller Wells für 20 Zyklen innerhalb von 30 Minuten.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026