Nachweis der Kolokalisation von Orexin und Cannabinoidrezeptoren in ernährungsinduzierten adipösen Zebrafischen

0 Ansichten2:31 Min. • July 8th, 2025

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Im Gehirn des Zebrafisches exprimieren Neuronen Orexin- und Cannabinoid-Rezeptoren, die den Stoffwechsel regulieren.

In ernährungsinduzierten adipösen oder DIO-Zebrafischen kolokalisieren diese Rezeptoren zunehmend zu Heteromeren, was die nachgelagerte Signalübertragung verändert und die Stoffwechselregulation beeinflusst.

Entnehmen Sie Kryoschnitte des Hirngewebes sowohl von Kontroll- als auch von DIO-Zebrafischen. Waschen Sie die Abschnitte mit Puffer, um das Einbettmedium zu entfernen.

Mit einem Permeabilisierungs-blockierenden Puffer behandeln, um die Zellmembranen zu permeabilisieren und unspezifische Bindungsstellen zu maskieren. Waschen, um überschüssigen Puffer zu entfernen.

Inkubieren Sie mit einem primären Antikörpercocktail, der auf die Rezeptoren abzielt. Waschen, um ungebundene Antikörper zu entfernen.

Inkubieren Sie mit verschiedenen Fluorophor-markierten Sekundärantikörpern, die an die Primärantikörper binden. Waschen, um ungebundene Antikörper zu entfernen.

Fügen Sie einen fluoreszierenden DNA-bindenden Farbstoff hinzu, um den Zellkern zu markieren. Tragen Sie dann ein Eindeckmedium auf und versiegeln Sie die Abschnitte mit einem Deckglas.

Ermitteln Sie mit einem konfokalen Mikroskop die Fluoreszenz des Antikörpers. Eine erhöhte Co-Lokalisation der Antikörper im DIO-Zebrafisch im Vergleich zu Kontrollen deutet auf eine höhere Rezeptor-Heteromerisierung hin.

Spülen Sie die Abschnitte zunächst dreimal für jeweils 5 Minuten mit 0,1 molaren Phosphatpuffer aus. Geben Sie die Mischung aus Primärantikörpern zu Lutetium-PBT hinzu und inkubieren Sie die Schnitte über Nacht in einer feuchten Box bei Raumtemperatur. Spülen Sie die Schnitte am nächsten Tag dreimal für jeweils 5 Minuten mit 0,1 molaren Phosphatpuffer. Die Schnitte werden 2 Stunden lang bei Raumtemperatur in einer geeigneten Mischung aus in PBT verdünnten Sekundärantikörpern inkubiert.

Spülen Sie die Schnitte dreimal für jeweils 5 Minuten mit 0,1 molaren Phosphatpuffer aus. Lösen Sie 1,5 Mikroliter DAPI in 3 Millilitern Phosphatpuffer, um den Kernfarbstoff DAPI herzustellen. Färben Sie die Abschnitte mit dem Farbstoff gegen, dann verwenden Sie Eindeckmedium, um die Objektträger abzudecken, um das Gewebe zu stabilisieren und für den Langzeitgebrauch zu färben. Fluoreszierende Proben können im Dunkeln bei 4 Grad Celsius gelagert werden.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026