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$$\longrightharp{xx}$$,
Beginnen Sie mit einem isolierten Mäusegehirn in einem eiskalten Puffer.
Übertragen Sie das Gehirn in eine Gehirnmatrix, wobei die Bauchseite nach oben zeigt.
Führen Sie Rasierklingen ein, um den vorderen Teil des Gehirns nacheinander zu schneiden.
Hebe die Scheiben an, indem du die Klingen zusammenhältst und den hinteren Teil zurücklässt. Trennen Sie die Rasierklingen und legen Sie sie mit den Hirnscheiben nach oben auf eine gekühlte Oberfläche.
Wählen Sie das gewünschte Segment aus und extrahieren Sie den gewünschten Bereich.
Das Gewebe teilen und fein hacken.
Übertragen Sie das zerkleinerte Gewebe in ein Röhrchen mit Liquor, das mit der Chemikalie BS3 versetzt ist.
Drehen Sie das Röhrchen um und mischen Sie es, um das Gewebe in kleinere Stücke zu brechen, und inkubieren Sie es dann mit Rotation.
BS3, eine zellmembranundurchlässige Chemikalie, vernetzt neuronale Oberflächenproteine wie GABA-Rezeptoren, während interne GABA-Rezeptoren unverändert bleiben.
Fügen Sie Glycin hinzu, um die Vernetzungsreaktion zu löschen.
Die Probe ist bereit für die Bewertung der GABA-Rezeptorspiegel an der Oberfläche.
Entfernen Sie zunächst schnell das Gehirn aus dem Schädel der euthanasierten C57 black 6J-Maus. Tauchen Sie es für 10 bis 15 Sekunden in eine Petrischale mit eiskaltem PBS. Platzieren Sie das gekühlte Gehirn in der Gehirnmatrix auf Eis mit der Bauchseite nach oben. Um das Gehirn koronal zu schneiden, führen Sie die erste Rasierklinge durch die Grenze zwischen dem Riechkolben und dem Riechstiel. Schneiden Sie mit drei bis vier zusätzlichen Rasierklingen den vorderen Teil des Gehirns in Abständen von 1 Millimeter koronal durch.
Halten Sie die eingeführten Rasierklingen zusammen, um die koronalen Schnitte von der Gehirnmatrix abzuheben, wobei der hintere Teil zurückbleibt. Trennen Sie die Rasierklingen mit einer Pinzette voneinander und legen Sie sie mit der Hirnscheibe nach oben auf die flache, gekühlte Oberfläche.
Um den präfrontalen Kortex zu beproben, wählen Sie die zweite und dritte Scheibe hinter der ersten Scheibe, die den Riechstiel enthält. Entfernen Sie mit einem Gewebestempel oder einer Pinzette die gewünschte Region. Lege das Taschentuch auf die gekühlte Rasierklinge und teile es gleichmäßig in zwei Stücke. Verwende die feine Spitze der Pinzette, um jedes Taschentuch auf der Rasierklinge mit mehreren vertikalen Bewegungen in Stücke zu zerkleinern. Spießen Sie das vorgekühlte, markierte Röhrchen mit künstlicher Zerebrospinalflüssigkeit mit 30 Mikrolitern BS3-Lösung. Übertragen Sie dann sofort das zerkleinerte Gewebe in das gewünschte Röhrchen.
Für eine Vernetzungsreaktion drehen Sie das Röhrchen mit dem Gewebe und der Lösung um, um die Gewebestücke in kleine Stücke zu brechen. Inkubieren Sie die Proben auf dem Röhrchenrotator bei 4 Grad Celsius für 30 Minuten bis 2 Stunden und notieren Sie die Startzeit der BS3-Inkubation für jedes Röhrchen. Dann wird die Reaktion mit 78 Mikrolitern 1 molaren Glycin abgeschreckt. Inkubieren Sie weiter 10 Minuten lang bei 4 Grad Celsius mit konstanter Rotation und notieren Sie die Start- und Endzeit des Abschreckens.