Gewinnung einer Einzelzellsuspension aus gefrorenem Hirngewebe von Ratten

0 Ansichten3:55 Min. • July 8th, 2025

Tauen Sie einen Teil des gefrorenen Gehirngewebes der Ratte auf.

Puffer hinzufügen und das Gewebe fein hacken. Übertragen Sie es dann in ein Röhrchen mit Puffer und Mix.

Die Mischung zentrifugieren und den Überstand verwerfen.

Geben Sie eine proteolytische Enzymlösung in das Gewebe und resuspendieren Sie es mit einer Pipette mit großem Durchmesser.

Inkubieren Sie die Mischung, um die extrazelluläre Matrix aufzubrechen und die Nervenzellen zu lockern.

Die Mischung zentrifugieren und den Überstand verwerfen.

Resuspendieren Sie die Gewebefragmente in einem gekühlten Puffer und pipettieren Sie sie wiederholt, um die Zellen zu dissoziieren.

Lassen Sie die Trümmer und undissoziierten Zellen sich absetzen, und übertragen Sie dann die einzellige Suspension in ein neues Röhrchen.

Die Zellen in eiskaltes Ethanol überführen und mischen. Inkubieren Sie sie, um die Zellen zu fixieren und zu permeabilisieren.

Die Suspension wird zentrifugiert und der Überstand wird verworfen.

Suspendieren Sie die Nervenzellen für die weitere Analyse in einem kalten Puffer.

Um das Gewebe zu zerkleinern, lassen Sie die Proben nicht länger als 1 Minute auf einer kalten Glasplatte auftauen, bevor Sie die Proben mit ein bis zwei Tropfen Puffer-A-Lösung bedecken. Halten Sie dann eine Rasierklinge vollständig senkrecht zur Platte und hacken Sie das Gewebe 100 Mal in jede orthogonale Richtung. Um das Gewebe gründlich zu zerkleinern, ist es wichtig, das Gewebe mit Puffer A feucht zu halten und die angegebenen Zerkleinerungszeiten und -richtungen einzuhalten.

Es ist wichtig, den Großteil der weißen Substanz während der Gewebedissektion zu entfernen und das Gewebe mit Puffer A bedeckt zu halten, um die Zerkleinerungseffizienz zu verbessern und die Gesundheit der Zellen zu erhalten.

Wenn das Gewebe gründlich verarbeitet wurde, übertragen Sie die Stücke mit der Rasierklinge in ein Mikrozentrifugenröhrchen mit 1 Milliliter Kaltpuffer A und drehen Sie das Röhrchen drei- bis fünfmal um, um das gesamte zerkleinerte Gewebe in die Lösung zu tauchen. Um die Gewebefragmente in eine Einzelzellsuspension zu dissoziieren, pelletieren Sie die Proben durch Zentrifugation.

Entsorgen Sie den Überstand, geben Sie dann langsam 1 Milliliter kalte, frisch aufgetaute Enzymlösung in die Innenwand des Mikroröhrchens und verwenden Sie eine Pipette mit großem Spitzendurchmesser, um sofort das gesamte Pellet zu aspirieren und viermal abzugeben, um die zerkleinerten Gewebestücke zu dispergieren. Als nächstes drehen Sie das Mikroröhrchen schnell um, um zu verhindern, dass die Pellets an den Röhrchenböden kleben, und inkubieren Sie die Probe 30 Minuten lang bei 4 Grad Celsius.

Am Ende des Aufschlusses zentrifugieren Sie das Röhrchen erneut und geben 0,6 Milliliter kalten Puffer A in die Zellen. Mit derselben Pipettenspitze die Pellets sofort fünfmal aspirieren und dispensieren, dann eine 1,3-Millimeter-Glaspipette auswählen und damit die Proben 10 Mal sanft titrieren.

Legen Sie die Probe 2 Minuten lang auf Eis, damit sich die Ablagerungen und undissoziierten Zellen am Boden des Röhrchens absetzen können. Übertragen Sie dann den Überstand in ein neues 15-Milliliter-Röhrchen. Übertragen Sie dann 800 Mikroliter Zellen aus dem ersten Röhrchen des gesammelten Überstands in jedes der ersten beiden Röhrchen mit Ethanol.

Drehen Sie die Röhrchen um, um die Proben zu mischen. Legen Sie die Proben dann 15 Minuten lang auf Eis und mischen Sie sie alle 5 Minuten durch Inversion. Am Ende der Inkubation zentrifugieren Sie die Zellen. Berühren Sie dann nur die Wand des Mikroröhrchens und entfernen Sie mit einer Mikropipette langsam alle bis auf die letzten 50 Mikroliter jedes Überstands.

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026