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Neurowissenschaften
0 Ansichten • 3:28 Min. • April 28th, 2025
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p style='background-color:#ffffff;line-height:1.799999999999999999;margin-bottom:0pt;margin-top:0pt;padding:0pt 0pt 12pt;' dir='ltr'>Nehmen Sie eine Multi-Well-Platte mit Mikroglia-ähnlichen Zellen mit phagozytärer Aktivität.Inkubieren Sie mit einem Kernfleck, um Kerne zu markieren.
Fügen Sie der Negativkontrollvertiefung einen Aktinpolymerisationsinhibitor hinzu.
Während der Inkubation bindet der Inhibitor an Aktinfilamente und hemmt so die Aktinpolymerisation und Phagozytose.
Halten Sie die Platte auf niedrigen Temperaturen und fügen Sie pH-empfindliche Farbstoff-markierte menschliche Synaptosomen hinzu - isolierte Fragmente neuronaler synaptischer Enden.
Zentrifugieren Sie die Platte bei niedrigen Temperaturen, um Zell-Synaptosomen-Wechselwirkungen zu fördern, aber eine vorzeitige Aufnahme zu verhindern.
Übertragen Sie die Platte an ein Lebendzell-Bildgebungssystem.
In der Testvertiefung werden Synaptosomen phagozytiert und verschmelzen mit Lysosomen, die Phagolysosomen bilden. Das lysosomale saure Milieu aktiviert den Farbstoff, was zu seiner Fluoreszenz führt.
Im Laufe der Zeit werden in der Testvertiefung mehr Synaptosomen verschlungen, was zu einer weiteren Zunahme der Fluoreszenz führt.
In der Vertiefung der Negativkontrolle wird jedoch die Aktinpolymerisation gehemmt, wodurch die Aufnahme von Synaptosomen verhindert wird. Die daraus resultierende minimale Fluoreszenz bestätigt die Fluoreszenzabhängigkeit von der Aktin-vermittelten Phagozytose.
Am Tag des Assays entfernst du 40 Mikroliter Medium pro Vertiefung und fügst 10 Mikroliter der nuklearen Färbelösung hinzu. Inkubieren Sie die Platte zwei Stunden lang. Tauen Sie die markierten Synaptosomen auf Eis auf und beschallen Sie sie eine Minute lang vorsichtig mit einem Wasserbeschallungsgerät. Auch hier legen Sie die Synaptosomen sofort auf Eis. Verdünnen Sie die markierten Synaptosomen und das IMG-Komplettmedium mit 1 Mikroliter Synaptosomen pro 50 Mikroliter Medium.
Für die Negativkontrolle bereiten Sie 60 mikromolare Cytochalasin D im IMG-Komplettmedium vor, um die Aktinpolymerisation und damit die Phagozytose zu hemmen. Geben Sie dann 10 Mikroliter dieser Lösung in jede Vertiefung für eine Endkonzentration von 10 Mikromolaren und inkubieren Sie sie 30 Minuten lang. Nehmen Sie die Platte aus dem Inkubator und inkubieren Sie sie 10 Minuten lang bei 10 Grad Celsius. Halten Sie die Platte auf Eis und fügen Sie 50 Mikroliter Medium hinzu, das Synaptosomen enthält.
Zentrifugen Sie die Platte drei Minuten lang bei 10 Grad Celsius bei 270 mal g und halten Sie die Platte bis zur Bildaufnahme auf Eis. Setzen Sie die Platte in ein Live-Cell-Imaging-Lesegerät ein und wählen Sie die zu analysierenden Wells aus. Wählen Sie dann ein 20-fach-Objektiv aus. Passen Sie als Nächstes die Fokus-, Leuchtdioden- oder LED-Intensitätsintegrationszeit und die Verstärkung des Hellfelds und der Blaukanäle an. Die Fluoreszenz der Synaptosomen sollte zum Anfangszeitpunkt vernachlässigbar sein.
Wählen Sie die Anzahl der einzelnen Kacheln aus, die in einer Montage pro Vertiefung erfasst werden sollen. Erfassen Sie 16 Kacheln in der Mitte des Bohrlochs, die etwa 5 % der gesamten Bohrlochfläche darstellen. Stellen Sie die Temperatur auf 37 Grad Celsius und das gewünschte Zeitintervall für die Bildgebung ein.
Diese Studie untersucht die phagozytische Aktivität mikrogliaähnlicher Zellen mithilfe eines Live-Cell-Imaging-Systems. Die Auswirkungen der Hemmung der Aktinpolymerisation auf die Aufnahme von Synaptosomen werden analysiert, um die Mechanismen der Phagozytose zu verstehen.
Quantitative Live-Cell-Phagozytose-Assays unter Verwendung menschlicher Synaptosomen und mikrogliaähnlicher Zellen bieten eine robuste Plattform zur Untersuchung neuroimmuner Mechanismen, die für neurodegenerative Erkrankungen relevant sind. Dieser Ansatz ermöglicht die mechanistische Risikominderung und Zielvalidierung, indem er die Aktin-abhängige phagozytotische Funktion in einem für den Menschen relevanten System isoliert. Der Assay unterstützt eine vorhersagbare Zuverlässigkeit für Entscheidungen im frühen Stadium bei der Forschung zu Neuroinflammation und synaptischer Homöostase.
Dieser Live-Cell-Assay ist in den frühen Entdeckungsprozess bis hin zur Identifizierung von Leitsubstanzen eingebettet und liefert aussagekräftige Daten für die Zielvalidierung sowie mechanistische Untersuchungen in der Neurobiologie.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026