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Nehmen Sie einen Objektträger mit fixierten und permeabilisierten Kryosektionen aus koronalem Gewebe der Ratte.
Umrande die Abschnitte mit einem hydrophoben Stift, um eine kontrollierte Färbeumgebung zu schaffen.
Übertragen Sie die Schnitte in eine Feuchtigkeitskammer, um ein Austrocknen von Reagenzien und Gewebe während der nachfolgenden Schritte zu verhindern.
Behandeln Sie die Schnitte mit Serumproteinen, um unspezifische Bindungsstellen zu blockieren.
Mit Puffer abspülen, um überschüssige Serumproteine zu entfernen.
Inkubieren Sie mit Primärantikörpern, die auf spezifische Proteine auf Mikroglia und Neuronen abzielen.
Mit Puffer waschen, um ungebundene Primärantikörper zu entfernen.
Inkubieren Sie mit Fluorophor-konjugierten Sekundärantikörpern, die an die Primärantikörper binden.
Mit Puffer waschen, um ungebundene Sekundärantikörper zu entfernen. Dann mit doppelt destilliertem Wasser abspülen.
Tragen Sie wässrige Eindeckmedien auf, um das Fluoreszenzsignal zu schützen, platzieren Sie ein Deckglas und versiegeln Sie es.
Bilden Sie die Schnitte unter einem Fluoreszenzmikroskop ab, um immunmarkierte Mikroglia und Neuronen sichtbar zu machen.
Trocknen Sie die Ränder der Objektträger und machen Sie mit einem Pap-Stift einen flüssigkeitsabweisenden Rand um den Rand des Objektträgers, um eine gleichmäßige Abdeckung der Flüssigkeit zu gewährleisten und Kanteneffekte zu reduzieren. Blockieren Sie als Nächstes die Abschnitte, indem Sie 300 Mikroliter Serum in PBS zu jedem Objektträger hinzufügen. Das Serum sollte von der Spezies stammen, in der der Sekundärantikörper gezüchtet wurde. In diesem Fall wurde Eselserum verwendet.
Stellen Sie sicher, dass sich die Blockierungslösung bis zum Rand des Objektträgers erstreckt und das Gewebe vollständig bedeckt, um ungleichmäßige Flecken zu vermeiden. Legen Sie die Objektträger in eine Feuchtigkeitskammer, um sie eine Stunde lang bei Raumtemperatur zu inkubieren. Bereiten Sie während der Inkubation die primären Antikörper vor. Verdünnen Sie den IBA1-Antikörper 1 bis 5.000 und den panneuronalen Antikörper 1 bis 500 in eine Mischung aus 1 % Eselsserum in PBS.
Entfernen Sie die Blockierungslösung und fügen Sie 300 Mikroliter der Antikörperlösung hinzu, die beide Antikörper von Interesse enthält. Legen Sie alle Objektträger in eine Feuchtigkeitskammer und inkubieren Sie sie über Nacht bei 4 Grad Celsius. Waschen Sie die Objektträger am nächsten Morgen dreimal für jeweils fünf Minuten in PBS.
Bereiten Sie die fluoreszierende Sekundärantikörpermischung vor, indem Sie beide 1 bis 250 in 1% Eselsserum in PBS verdünnen. Geben Sie 300 Mikroliter der Mischung auf jeden Objektträger. Und legen Sie die Objektträger für 60 Minuten bei Raumtemperatur in eine leichte, dichte Feuchtigkeitskammer. Waschen Sie die Objektträger dann dreimal für jeweils fünf Minuten in PBS. Spülen Sie sie zum Schluss in doppelt destilliertem Wasser ab. Schützen Sie die Objektträger vor Licht, während Sie sie in PBS waschen.
Fügen Sie ein paar Tropfen eines wässrigen Eindeckmediums hinzu, das dazu beiträgt, die Intensität des Fluoreszenzsignals auf jedem Objektträger zu erhalten. Decken Sie dann den Objektträger ab und entfernen Sie alle verbleibenden Luftblasen mit einem Applikator mit Wattespitze. Um die Montagemedien auf den Folien zu versiegeln und ein Austrocknen der Partien zu verhindern, beschichten Sie die Kanten mit Nagellack. Die Objektträger werden eine Stunde lang flach in einer lichtgeschützten Box trocknen gelassen, bevor sie in einem leichten, dichten Behälter gelagert und in Folie eingewickelt bei 4 Grad Celsius gelagert werden.