$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Beginnen Sie mit primären hypothalamischen Neuronen vom Wildtyp und CCR5-Knockout-Maus, die auf Poly-D-Lysin-beschichteten Deckgläsern in einer Multi-Well-Platte kultiviert werden.
Diese Neuronen exprimieren im Zytoplasma den grün fluoreszierenden, proteinmarkierten Glukosetransporter-4 (GFP-GLUT4).
Übertragen Sie die Deckgläser auf Objektträger und wischen Sie überschüssiges Medium vorsichtig ab, um die Stabilität während der Bildaufnahme zu gewährleisten.
Legen Sie einen Objektträger mit dem Deckglas nach unten auf den Dekonvolutionsmikroskoptisch.
Visualisiere die Neuronen unter Hellfeldbeleuchtung, dann behandle sie nacheinander mit dem Chemokin CCL5 und Insulin.
Wechseln Sie zur Fluoreszenzbeleuchtung, um GFP-GLUT4-exprimierende Zielneuronen zu identifizieren und passen Sie die Bildgebungsparameter an, um Live-Fluoreszenzbilder aufzunehmen.
In Wildtyp-Neuronen binden Insulin und CCL5 an den Insulinrezeptor bzw. CCR5 und aktivieren so nachgeschaltete Signalwege, die die GFP-GLUT4-Membrantranslokation vorantreiben.
In CCR5-Knockout-Neuronen bindet CCL5 nicht, was zu einer reduzierten GFP-GLUT4-Translokation führt.
Nehmen Sie die Bilder auf und wenden Sie einen Entfaltungsalgorithmus an, um unscharfes Licht zu reduzieren und so die Bildschärfe und -auflösung zu verbessern.
Um die Zellen für die Live-Bildgebung vorzubereiten, entfernen Sie die Deckgläser mit Neuronen vorsichtig mit einer Pinzette und legen Sie sie vorsichtig auf den Objektträger. Entfernen Sie dann überschüssiges Medium mit zarten Arbeitstüchern, indem Sie sie zweimal falten und vorsichtig auf das Deckglas legen, ohne es zu bewegen.
Es ist wichtig, überschüssige Menge an Medium zu entfernen, um unnötige Bewegungen auf dem Deckglas zu vermeiden.
Behandeln Sie anschließend die ausgewählten Zellproben eine Minute lang mit CCL5 bei 10 Nanogramm pro Milliliter oder Insulin bei 10 Einheiten pro Milliliter. Geben Sie anschließend 1,5 Mikroliter verdünntes Insulin auf den Rand der Deckgläser. Geben Sie dann Immersionsöl auf ein Objektiv mit 60-facher Vergrößerung und 1,52 NA
.
Legen Sie anschließend die Deckgläser mit den Deckgläsern nach unten auf den Dekonvolutionsmikroskoptisch, wobei die Deckgläser nach unten zeigen und richtig befestigt sind. Verwenden Sie Hellfeld- oder Fluoreszenzbeleuchtung, um die Zielzellen zu identifizieren. Passen Sie anschließend den Fokus an, bis die Zielzellen deutlich zu erkennen sind. Bewegen Sie die Objektivlinse nicht außerhalb des Deckglasbereichs, um unnötige Kratzspuren zu vermeiden.
Identifizieren Sie als Nächstes GFP-GLUT4 anhand des GFP-Signals. Identifizieren Sie dann die gewünschten Zielzellen für die Bildaufnahme. Stellen Sie anschließend die richtigen experimentellen Parameter für jede Zielzelle ein, einschließlich Pixelzahl, Anregungswellenlänge, Transmissionsprozentsatz, Belichtungszeit, Stapeldicke, Zeitintervall und Gesamtbildgebungszeit. Stellen Sie den Belichtungsparameter auf ca. 2.000 bis 3.000 Zählungen ein, um die maximale Pixelintensität zu erreichen.
Um das Fluoreszenz-Photobleichen zu minimieren, reduzieren Sie den Prozentsatz der Anregungslichtdurchlässigkeit so weit wie möglich und halten Sie die Belichtungszeit auf weniger als 1 Sekunde. Legen Sie die obere und untere Grenze des Z-Stapels für jede Zielzelle fest, indem Sie den Mikroskoptisch so weit bewegen, dass sowohl die Ober- als auch die Unterseite der Zielzelle leicht unscharf sind.