Konfokale Bildgebung der mitochondrialen Bewegung in Oligodendrozyten in organotypischen Hirnschnittkulturen

0 Ansichten4:11 Min. • April 28th, 2025

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Beginne mit einer konfokalen Mikroskop-Badkammer mit einer zirkulierenden Bildgebungslösung und kontrollierter Temperatur.

Nimm eine hydrophile Polymermembran, die eine organotypische Maushirnscheibe enthält, in der die Oligodendrozyten transduziert wurden, um ein mitochondrienspezifisches rot fluoreszierendes Protein und ein zytosolspezifisches grün fluoreszierendes Protein zu exprimieren.

Die duale Fluoreszenz ermöglicht eine klare Visualisierung der mitochondrialen Dynamik innerhalb des Zytosols des Oligodendrozyten.

Tauchen Sie die Scheibe in die Mitte des Bades und sichern Sie sie mit einem Harfenanker.

Senke das Objektiv und wähle einen gesunden Oligodendrozyten zum Scannen aus.

Passen Sie die Laserleistung an, um Zelltoxizität und Photobleiche zu minimieren.

Setze Mikroskopparameter und nimm dann Zeitrafferbilder von fluoreszenzmarkierten Mitochondrien auf.

Nehmen Sie Z-Stapel-Bilder in verschiedenen Tiefen auf, um eine hochauflösende, dreidimensionale Ansicht der gesamten Zelle zu erhalten.

Verarbeiten Sie die Bilder, um die mitochondriale Bewegung innerhalb der Oligodendrozyten zu visualisieren.

Benutze eine Pinzette, um das Konfetti mit der Scheibe aus der Petrischale an die Oberseite der Badewanne zu übertragen. Platzieren Sie dann die beiden Spitzen der Pinzette auf jeder Seite des Konfettis so, dass sie das Konfetti berühren, ohne die Scheibe zu berühren. Und schiebe das Konfetti durch die Lösung auf den Boden der Badewanne. Zentriere das Konfetti in der Mitte der Badewanne.

Benutze eine Pinzette, um den Niederhalteanker oder die Harfe auf das Konfetti zu legen, ohne die Scheibe zu berühren. Schalten Sie dann die Schlauchpumpe wieder ein. Senken Sie das Objektiv bis zur Probe ab. Verwenden Sie dann die Okulare und die Leuchtstofflampe, um schnell einen gesund aussehenden Oligodendrozyten mit fluoreszierender Proteinexpression zu finden.

Verwenden Sie die Live-Funktion in der Software, um die Zelle auf dem Bildschirm zu identifizieren. Und wählen Sie den Interessenbereich aus. Hier wird ein Bereich abgebildet, der mehrere primäre Fortsätze und eine Myelinscheide enthält. Vergrößern Sie das Interessenfeld. Dies erzeugt in der Regel ein Bild mit einer Pixelgröße von 0,14 bis 0,30 Mikrometern.

Wählen Sie das Bereichswerkzeug aus und zeichnen Sie ein Rechteck um den Bereich. Wählen Sie die Option, nur den ausgewählten Bereich zu scannen. Die Scanzeit und damit die Laserbelichtung wird reduziert, indem nur der ausgewählte Bereich gescannt wird.

Passen Sie die Laserleistung und -verstärkung an, um eine gute Sicht auf die Mitochondrien zu erhalten. Verwenden Sie eine geringe Laserleistung und eine hohe Verstärkung, um ein Ausbleichen während der Live-Bildgebung zu vermeiden. Passen Sie bei Bedarf den digitalen Versatz an.

Minimieren Sie die Scanzeit, indem Sie eine schnelle Scangeschwindigkeit auswählen. Legen Sie die Häufigkeit und Dauer der Zeitrafferaufzeichnung für die mitochondriale Bildgebung und Oligodendrozyten fest. Nehmen Sie Bilder alle zwei Sekunden für insgesamt 20 Minuten auf. Starten Sie die Zeitrafferaufnahme.

Der kontinuierliche Fluss der Lösung kann zu einer Bewegung der Scheibe führen. Es lohnt sich, einige Zeit damit zu verbringen, diese Bewegung zu minimieren, indem Sie die Ein- und Auslässe der Badewanne anpassen. Sie können auch die Pumpendrehzahl reduzieren.

Überwachen Sie den Bildschirm kontinuierlich während der Zeitrafferaufnahme, da normalerweise immer noch kleine Änderungen im Fokus auftreten. Passen Sie den Fokus nach Bedarf an. Nach der Zeitraffer-Bildgebung erfassen Sie einen Z-Stapel der gesamten Zelle, um die Zelle und den abgebildeten Prozess später zu identifizieren.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026