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Beginnen Sie mit einer transgenen Maus, die in einem stereotaktischen Rahmen gesichert ist, mit einem Schädelfenster, das über der Sehrinde implantiert ist.
Die Maus exprimiert EGFP in den Mikroglia und R-CaMP, einen rot fluoreszierenden Kalziumindikator, in den Neuronen des visuellen Kortex.
Positionieren Sie die Maus unter einem Zwei-Photonen-Mikroskop und stellen Sie die Objektivlinse so ein, dass sie auf die Gehirnoberfläche fokussiert.
Bewegen Sie die Maus mit dem stereotaktischen Rahmen von der Objektivlinse und bringen Sie eine Schattierungsvorrichtung an.
Füllen Sie die Schattierungsvorrichtung mit Wasser und positionieren Sie die Maus unter dem Mikroskop neu.
Decken Sie die Linse mit schwarzer Folie ab.
Die Schattierungsvorrichtung und die Folie blockieren Störungen durch externes Licht und sorgen so für eine genaue Bildgebung.
Platzieren Sie einen LCD-Monitor vor dem Auge der Maus, um eine visuelle Stimulation zu ermöglichen.
Stellen Sie die Bildgebungsparameter ein und beginnen Sie mit der Bildgebung.
Die visuelle Stimulation löst die neuronale Erregung aus, was zu einem Kalziumeinstrom und einer Erhöhung der R-CaMP-Fluoreszenz führt.
In der Zwischenzeit ziehen Mikroglia ihre Prozesse zurück, während sie mit aktivierten Neuronen interagieren, wie durch Live-Bildgebung beobachtet wurde.
Um die maßgefertigte Beschattungsvorrichtung und einen LCD-Monitor für die visuelle Stimulation zu installieren, positionieren Sie zunächst die Linse, um auf die Gehirnoberfläche zu fokussieren. Legen Sie dann diese Objektivposition als ursprüngliche Z-Position fest. Halten Sie die x- und y-Koordinaten konstant und erhöhen Sie die Objektivlinse. Entfernen Sie die Maus und das stereotaktische Instrument von der Objektivlinse. Befestigen Sie eine Beschattungsvorrichtung mit Silikon an der Oberseite der Kopfplatte und stellen Sie sicher, dass der Raum zwischen der Kopfplatte und der Beschattungsvorrichtung gut abgedichtet ist.
Füllen Sie die Beschattungsvorrichtung mit destilliertem Wasser. Befestigen Sie dann die Maus mit dem stereotaktischen Rahmen unter der Objektivlinse. Setzen Sie die Brennebene vorsichtig an der Gehirnoberfläche zurück und überprüfen Sie die Tiefe der Objektivlinse. Decken Sie die Objektivlinse mit schwarzer Aluminiumfolie ab, um Lichtverschmutzung durch den LCD-Monitor zu vermeiden. Stellen Sie einen 10-Zoll-LCD-Monitor auf 12,5 Zentimeter vor die Augen der Maus, um visuelle Reize darzustellen.
Konfigurieren Sie die Fluoreszenzemissionssammelfilter für EGFP und RCaMP und die Anregungswellenlänge auf 1.000 Nanometer. Erfassen Sie Bilder mit einer räumlichen Auflösung von 0,25 Mikrometern pro Pixel. Finden Sie die Bildgebungsregion, in der RCaMP-positive Neuronen und EGFP-positive Mikroglia gleichzeitig in Schicht 2/3 abgebildet werden können.
Nehmen Sie Bilder mit einer Bildrate von 30 Hertz auf. Gleichzeitig mit der Bildaufnahme präsentieren Sie der Maus driftende, gitternde visuelle Reize in 12 Richtungen bei 6 Ausrichtungen von 0 bis 150 Grad in 30-Grad-Schritten.