Bildgebung von Amyloid-beta-Plaques in Hirngewebeschnitten durch Immunmarkierung und Curcumin-Färbung

0 Ansichten3:14 Min. • May 29th, 2025

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Beginnen Sie mit Gehirnschnitten aus einem neurodegenerativen Mausmodell.

Inkubieren Sie mit einer mit Detergenzien angereicherten Blockierungslösung, um die Gewebepermeabilität zu erhöhen und unspezifische Bindungen zu blockieren. Verwerfe die Lösung.

Einführung von Primärantikörpern gegen Amyloid-Beta-Plaques. Inkubieren Sie unter Rühren, damit Antikörper mit Amyloid-Beta-Plaques interagieren, und waschen Sie sie.

Fügen Sie rote Fluorophor-markierte Sekundärantikörper hinzu und inkubieren Sie im Dunkeln, damit die Antikörper interagieren können.

Waschen, um ungebundene Antikörper zu entfernen, gefolgt von einer Alkoholwäsche.

Fügen Sie Curcumin hinzu, das beta-Faltblatt-reiche Amyloide mit hoher Affinität bindet, und waschen Sie es dann.

Als nächstes behandeln Sie mit steigenden Alkoholkonzentrationen, wodurch die Gehirnabschnitte dehydriert werden. Fügen Sie Xylol hinzu, um alle Spuren von Reagenzien zu entfernen.

Montieren Sie einen Schnitt auf einen Objektträger und beobachten Sie ihn unter einem Fluoreszenzmikroskop.

Verwenden Sie einen Laser mit einer Wellenlänge von 590 Nanometern, um die roten Fluorophore auf den Sekundärantikörpern anzuregen. Nehmen Sie das Bild auf.

Schalten Sie auf einen Laser mit einer Wellenlänge von 480 Nanometern um, um das Curcumin anzuregen und grüne Fluoreszenz zu emittieren.

Überlagern Sie die Bilder; die Kolokalisation von roter und grüner Fluoreszenz bestätigt Amyloid-Beta-Plaque im Hirngewebe.

Für die Markierung von Kryostaten-Schnittproben mit Anti-A-Beta-Antikörpern waschen Sie die Proben dreimal mit frischem PBS pro Waschgang in einzelnen Vertiefungen einer 12-Well-Platte, bevor Sie eine unspezifische Bindung mit 10 % normalem Ziegenserum in PBS und 0,5 % Triton x-100 für eine Stunde bei Raumtemperatur blockieren.

Am Ende der Inkubation verwerfen Sie die Blockierungslösung und inkubieren Sie die Proben über Nacht bei 4 Grad Celsius und 150 Umdrehungen pro Minute mit einem Beta-spezifischen Antikörper. Am nächsten Morgen waschen Sie die Schnitte mit drei 10-minütigen Wäschen in frischem PBS pro Waschgang, gefolgt von einer Inkubation mit einem geeigneten Sekundärantikörper, der mit einem roten Fluorophor konjugiert ist, für eine Stunde bei Raumtemperatur, geschützt vor Licht.

Am Ende der Inkubation waschen Sie die Abschnitte dreimal mit PBS, gefolgt von einer Wäsche mit 70% Alkohol. Nach der Alkoholwäsche inkubieren Sie die Schnitte mit 10 mikromolaren Curcumin für 10 Minuten bei Raumtemperatur, gefolgt von drei einminütigen Waschgängen mit 70 % Alkohol.

Nach dem letzten Waschen dehydrieren Sie die Schnitte eine Minute lang mit 90 % und 100 % Alkohol pro Konzentration und reinigen Sie die Schnitte zweimal fünf Minuten lang pro Eintauchen mit frischem Xylol pro Inkubation. Mounten Sie dann die Abschnitte wie gezeigt, und erstellen Sie ein Image.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026