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Nehmen wir ein chemisch fixiertes Gehirn eines Mäusewelpen mit zerebralen kavernösen Missbildungen oder CCMs – Ansammlungen abnormaler Blutgefäße, die mit stagnierendem Blut gefüllt sind.
Isolieren Sie das Hinterhirn, spülen Sie es mit Puffer und inkubieren Sie es in einer Färbelösung auf Jodbasis.
Jod dringt in die durchlässigen Blutgefäße in CCM-Bereichen ein, bindet an Blutbestandteile und verbessert den Kontrast der Läsionen.
Trocknen Sie das Tuch an der Luft, um die überschüssige Färbelösung zu entfernen.
Legen Sie das Taschentuch in eine Tube und verschließen Sie es, um ein Schrumpfen des Gewebes zu verhindern.
Befestigen Sie das Rohr mit Schwämmen in einem größeren Rohr und montieren Sie es senkrecht in der Micro-CT-Halterung.
Starten Sie den Scan.
Die Röntgenquelle sendet konzentrierte Röntgenstrahlen aus, die das Gewebe durchdringen.
Jodgefärbte Bereiche absorbieren mehr Röntgenstrahlen als das umgebende Gewebe.
Der Detektor zeichnet die transmittierte Röntgenstrahlung auf und erzeugt Bilder, in denen die CCMs heller erscheinen.
Das System dreht das Gewebe und nimmt 2D-Bilder aus mehreren Blickwinkeln auf.
Eine spezielle Software rekonstruiert diese Bilder zu einem 3D-Modell und zeigt so die CCM-Positionen im Gehirn auf.
Beginnen Sie die Probenvorbereitung, indem Sie eine 10-Milliliter-Spritze, die mit einer 29-Gauge-Nadel ausgestattet ist, mit drei Millilitern 2 % Paraformaldehyd in PBS füllen. Führen Sie dann eine intrakardiale Perfusion an einem euthanasierten P8-Welpen durch, indem Sie die Nadel in den Ventrikel des Mausherzens einführen und langsam das volle Volumen an Paraformaldehyd injizieren.
Nachdem Sie den Kopf mit einer Schere abgenommen haben, entfernen Sie die Haut vom Kopf und schälen Sie den Schädel ab, indem Sie mit einer Pinzette das gesamte Gehirn in 4% Paraformaldehyd in PBS zerlegen. Postfixieren Sie das Gehirn über Nacht bei 4 Grad Celsius. Am nächsten Tag wird das Hinterhirn mit einer Pinzette abgetrennt und mit PBS-Lösung gespült.
Inkubieren Sie dann das Hinterhirn 48 Stunden lang in Lugols Jodlösung. Nach der Inkubation das Hinterhirn kurz an der Luft trocknen, um überschüssige Lugolsche Jodlösung zu entfernen. Verpacken Sie dann das jodgefärbte Hinterhirn von Lugol in 0,65-Mikroliter-Mikrozentrifugenröhrchen und verschließen Sie es vollständig mit Kunststoffparaffinfolie, um ein Schrumpfen des Gewebes zu vermeiden. Legen Sie die Mikrozentrifugenröhrchen in Fünf-Milliliter-Kunststoffröhrchen mit Schwämmen, um zu verhindern, dass sie sich während des Scans bewegen.
Montieren Sie das Rohr mit dem Hinterhirn vertikal auf einer Aluminiumhalterung im Mikro-CT-System. Legen Sie die Scan-Parameter fest. Verwenden Sie 540 Projektionen in einer Belichtungszeit von zwei Sekunden mit Quellenbedingungen von 50 Kilovolt und 10 Watt, um die tomographischen Datensätze zu erfassen. Röntgenaufnahmen des Scanners rekonstruieren es automatisch mit Hilfe der hardwarebasierten Projektionsrekonstruktionssoftware, die vom Mikro-CT-System bereitgestellt wird, und erzeugen eine Bildserie von 16-Bit-Axialschnitten.