Identifizierung von Subtypen von retinalen Ganglienzellen der Maus durch Fluoreszenzverfolgung

0 Ansichten3:20 Min. • May 29th, 2025

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Platzieren Sie ein Netzhautgewebe, das von einer transgenen Maus mit fluoreszenzmarkierten retinalen Ganglienzellen (RGCs) isoliert wurde, in einer Aufnahmekammer.

Visuelle Informationen werden an die RGCs weitergeleitet, die von ihren Axonen über den Sehnerv an das Gehirn weitergeleitet werden.

RGC-Subtypen unterscheiden sich durch die Verzweigungsmuster ihrer Dendriten, die sich innerhalb der inneren Netzhautschicht in Unterschichten schichten.

Glätten Sie das Netzhautgewebe und befestigen Sie es mit einem Gewebeanker.

Übertragen Sie die Kammer auf einen Mikroskoptisch und perfundieren Sie eine sauerstoffhaltige Lösung, um die Lebensfähigkeit des RGC zu erhalten.

Identifizieren Sie mit Infrarotbeleuchtung die fluoreszierenden RGCs.

Positionieren Sie eine Pipette mit einem fluoreszierenden Tracer auf einem RGC

und

üben Sie Überdruck aus, um ein Verstopfen zu vermeiden.

Schalten Sie auf Unterdruck um und ziehen Sie die Membran in die Pipette, um eine Versiegelung zu bilden.

Wenden Sie einen Sog an, um die Membran zu brechen, und stellen Sie eine Ganzzellkonfiguration her, die die Tracerdiffusion in die Dendriten erleichtert.

Beobachten Sie die dendritische Morphologie und Schichtung, um die RGC-Subtypen zu identifizieren.

Waschen Sie die Netzhaut in der sauerstoffhaltigen extrazellulären Lösung und übertragen Sie sie mit einer Kunststoff-Transferpipette in eine Aufnahmekammer mit Glasboden. Danach glätten Sie das Gewebe vorsichtig mit einer Pinzette, wobei die Photorezeptorschicht nach unten zeigt. Entfernen Sie überschüssige Flüssigkeit mit einer Pipette. Und verankern Sie das Gewebe mit einem Platinring mit Nylonnetz. Füllen Sie dann die Kammer mit der sauerstoffhaltigen extrazellulären Lösung und montieren Sie sie auf einen Mikroskoptisch. Perfundieren Sie das Gewebe mit der sauerstoffhaltigen extrazellulären Lösung bei 2 bis 4 Millilitern pro Minute.

Um sich auf dieses Verfahren vorzubereiten, ziehen Sie mit einem Mikropipettenabzieher einige Mikropipetten aus Glas für elektrophysiologische Aufzeichnungen. Betrachten Sie die Ganglienzellschicht mit einer IR-DIC-Optik. Identifizieren Sie dann die GFP plus Ganglienzellen mittels Epifluoreszenz bei etwa 480 Nanometern. Suchen Sie als Nächstes die mit intrazellulärer Lösung gefüllte Pipette in DIC. Üben Sie einen leichten Überdruck aus und stellen Sie alle Spannungsversätze am Verstärker auf Null.

Senken Sie anschließend die Glasmikropipette auf eine GFP-positive Zelle ab und wenden Sie Prüfspannungsbefehlsschritte an, um den Dichtungswiderstand zu überwachen. Der Unterdruck sollte eine Giga-Ohm-Dichtung zwischen der Pipette und der Zellmembran bilden. Nachdem Sie eine stabile Versiegelung gebildet haben, brechen Sie die Membran auf, indem Sie kurze Unterdruckimpulse anwenden, um Zugang zur gesamten Zelle zu erhalten. Warten Sie ein bis zwei Minuten, bis sich die Dendriten der Zelle mit fluoreszierendem Tracer gefüllt haben.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026