Ex-vivo-Bildgebung der postnatalen zerebellären Körnerzellmigration mittels konfokaler Makroskopie

0 Ansichten3:59 Min. • June 17th, 2025

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Beginnen Sie mit einer Kleinhirnschnitte, die aus dem Gehirn eines postnatalen Rattenwelpen in einer Multi-Well-Platte mit Medium gewonnen wurde.

Entfernen Sie das Medium und inkubieren Sie die Scheibe in einer zytoplasmatischen Fluoreszenzfarbstofflösung, um die Körnerzellen (GCs) zu markieren.

Übertragen Sie die Scheibe auf eine Transwell-Einlegemembran und entfernen Sie überschüssige Farbstoffe.

Entfernen Sie den Einsatz und füllen Sie die Vertiefung mit Medien. Setzen Sie dann den Einsatz wieder ein und fügen Sie Medien hinzu, um das Gewebe zu bedecken.

Inkubieren, damit sich das Gewebe an der Einführmembran festsetzen kann.

Übertragen Sie die Platte in einen Inkubator, der an einem konfokalen Makroskop befestigt ist, und legen Sie eine Glasabdeckung über die Platte.

Legen Sie die Kulturbedingungen fest, inkubieren Sie das Gewebe weiter und beginnen Sie dann mit der Bildgebung.

Bei Laserbeleuchtung fluoreszieren die markierten GCs.

Nehmen Sie Zeitrafferbilder auf, um die radiale Wanderung der GCs durch die molekulare Schicht des Kleinhirns zu visualisieren.

Analysieren Sie mit Hilfe einer Bildgebungssoftware die Migrationsdistanz der GCs.

Nachdem Sie die Probe geschnitten haben, verwenden Sie eine Pipette mit einem weißen Kolbenstumpf, um sie mit etwas HBSS auf eine Sechs-Well-Platte zu übertragen. Laden Sie bis zu drei Scheiben in jede Vertiefung. Nachdem das Medium in jeder geladenen Vertiefung entleert wurde, fügen Sie fünf Milliliter Ladelösung hinzu, die 10 Mikromolar des Fluoreszenzfarbstoffs enthält. Um die Proben vor Licht zu schützen, decken Sie die Platte mit Folie ab. Setzen Sie dann die Platte auf einen Mutator, der auf 35 U/min eingestellt ist. Lassen Sie die Platte 10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, damit der Farbstoff die Zellen markieren kann.

Übertragen Sie nun die Scheiben wie zuvor auf die Membran eines Transwell-Einsatzes, der drei Mikrometer Poren hat. Saugen Sie dann das Lademedium an, so dass nur die Scheiben übrig bleiben. Entfernen Sie nun den Einsatz und die Scheiben, um die Vertiefung mit 1,9 Millilitern DMEM zu füllen. Setzen Sie dann den Einsatz wieder ein und fügen Sie weitere 100 Mikroliter DMEM hinzu, um das Gewebe zu bedecken.

Inkubieren Sie dieses Präparat zwei Stunden lang, danach sind die Körnerzellen sichtbar. Bringen Sie die Platte ohne Deckel in eine Klimakammer mit konstantem Gasfluss auf einem konfokalen Makroskop. Setzen Sie dann eine Glasabdeckung auf den Platteneinsatz des konfokalen Makroskops. Lassen Sie die Zellen für Zeitraffer-Experimente zwei weitere Stunden in der Kammer inkubieren, bevor Sie fortfahren.

Um die Wanderung der Körnerzellen in den Gewebescheiben sichtbar zu machen, beleuchten Sie das Präparat mit 488 Nanometern Licht und verwenden Sie ein 2X trockenes Objektiv. Detektieren Sie Fluoreszenzemissionen von 500 bis 530 Nanometern. Führen Sie mit ImageJ für jedes Bild des Zeitrafferfilms eine Z-Stapelprojektion im Standardabweichungsmodus durch.

Passen Sie den Kontrast und die Helligkeit jedes Bildes so an, dass die beschrifteten Körnerzellen leicht zu erkennen sind. Wählen Sie nun das Plugin "Manuelles Tracking" aus dem Menü "Partikelanalyse". Verwenden Sie das Plugin, um auf den zentralen Punkt jedes beschrifteten Zellkörpers während der Zeitraffer-Bildsequenz zu klicken. Exportieren Sie dann die Tracking-Rohdaten zur weiteren Analyse in eine Tabelle.

Reorganisieren Sie die exportierten Tracking-Rohdaten von ImageJ mit einem Smart-Home-Tool, das jede Zelle und die zugehörigen Positionen identifiziert. Berechnen Sie mit dem Programm die gesamte zurückgelegte Strecke und die durchschnittliche Migrationsgeschwindigkeit für jede Zelle.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026