Fluoreszenzbildgebung der synaptischen Calciumdynamik in einem in vitro Modell der Amyotrophen Lateralsklerose

0 views • 3:18 min • June 17th, 2025

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Nehmen Sie primäre kortikale Neuronen von Nagetieren, die auf einer beschichteten Glasbodenschale mit Medium kultiviert wurden.

Diese Zellen exprimieren ein genetisch kodiertes ALS-assoziiertes Protein und einen Kalzium-Biosensor.

Ersetzen Sie das Medium durch einen kaliumarmen Chloridpuffer.

Inkubieren, um die neuronale Aktivität im Ruhezustand und den Kalziumspiegel zu erhalten.

Montieren Sie die Schüssel auf einem konfokalen Mikroskoptisch und positionieren Sie den Perfusionsschlauch.

Fokussieren Sie sich mit Hellfeldbeleuchtung auf die Neuronen und wechseln Sie dann zur Fluoreszenzbildgebung.

Stimulieren Sie den Biosensor mit dem Laser des Mikroskops und zeichnen Sie die Fluoreszenzemission auf, um den intrazellulären Kalziumspiegel zu bestimmen.

Als nächstes durchtränken Sie die Schale mit Puffer mit hohem Kaliumchloridgehalt.

Die hohe Kaliumkonzentration depolarisiert die Neuronen und öffnet spannungsgesteuerte Kalziumkanäle an den präsynaptischen Enden. Dies ermöglicht den Kalziumeinstrom, der die neuronale synaptische Aktivität initiiert.

Das erhöhte intrazelluläre Kalzium bindet an den Biosensor und bewirkt eine Konformationsänderung, die die Fluoreszenz verstärkt.

Setzen Sie die Aufzeichnung der Fluoreszenz fort, um Veränderungen des intrazellulären Kalziumspiegels in Echtzeit zu messen und die neuronale synaptische Aktivität aufzudecken.

48 Stunden nach der Transfektion mit GCaMP6m inkubieren Sie die primären kortikalen Neuronen der Nagetiere 15 Minuten lang mit niedrigem Kaliumchlorid-ACSF. Montieren Sie dann die Schüssel auf der Bildgebungsplattform und visualisieren Sie die GCaMP6m-Fluoreszenz mit einem FITC-Filter und einem 20-fachen oder 40-fachen Objektiv. Nachdem Sie das Bildgebungsfeld ausgewählt und den perfekten Fokus eingestellt haben, nehmen Sie ein einzelnes Standbild mit Hellfeld-FITC und Fluoreszenzmarkerkanälen auf, um die neuronalen Grenzen zu markieren.

Initiieren Sie anschließend in der Erfassungssoftware "Jetzt ausführen" und führen Sie die Basalaufzeichnung für drei bis fünf Minuten durch. Dann perfundieren Sie ACSF mit 50 Millimolar Kaliumchlorid an die Neuronen, wie zuvor gezeigt, und zeichnen Sie fünf Minuten lang auf. Wenn die Bildaufnahme beendet ist, speichern Sie das Experiment und fahren Sie mit der Datenanalyse mit der konfokalen Software fort.

Öffnen Sie für die Bildanalyse die Zeitrafferbilder und die Konfokalsoftware und richten Sie die Bilder aus, indem Sie auf Bild klicken, gefolgt von Verarbeitung, gefolgt von Aktuelles Dokument ausrichten. Wählen Sie dann "Am ersten Frame ausrichten" aus. Wählen Sie mit dem ROI-Auswahlwerkzeug interessante Bereiche entlang der Neuriten aus und markieren Sie auch einen ROI, der die Hintergrundfluoreszenzintensität darstellt. Initiieren Sie als Nächstes die Messfunktion über das Zeitmesspanel, um die Rohfluoreszenz über die Zeit für die ausgewählten ROIs zu messen. Exportieren Sie nach der Messung die rohen Fluoreszenzintensitäten in die Tabellenkalkulationssoftware.

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Last updated: 18 July 2026