JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurowissenschaften
0 Ansichten • 4:27 Min. • June 17th, 2025
Beginnen Sie mit einem Glycerin-Cleared-Drosophila-Gehirn in Antifading-Einbettmedien.
Das Gehirn enthält Medulla-Neuronen, die in Schichten angeordnet sind, die synaptische Verbindungen organisieren, und Säulen, die neuronale Schaltkreise koordinieren.
Einige dieser Neuronen sind mit grün fluoreszierenden Markern markiert, die im Gegensatz zu den rot fluoreszierenden Photorezeptor-Axonen stehen.
Positionieren Sie die Bauchseite des Gehirns nach oben. Legen Sie ein Deckglas mit kleinen Tonflecken an den Seiten an, um ein Zerquetschen der Gehirnprobe zu verhindern.
Nehmen Sie unter einem Mikroskop den Bildstapel mit der horizontalen Ansicht auf, der das grün markierte Neuron enthält.
Entfernen Sie das Deckglas und positionieren Sie das Gehirn mit der vorderen Seite nach oben.
Erfassen Sie einen Bildstapel der Frontalansicht desselben Neurons.
Kombinieren Sie diese Bilder mit der Software, entfernen Sie den Photorezeptorkanal und visualisieren Sie das 3D-Bild des Neurons.
Verfolgen Sie das Axon und dann die Dendriten, folgen Sie jedem Zweig bis zu seinem Ende, um die dendritische Organisation über die Medullaschichten und -säulen hinweg zu kartieren.
Um das Gehirn in horizontaler Ausrichtung zu montieren, übertragen Sie ein mit Glycerin gereinigtes Gehirn in einen 20-Mikroliter-Tropfen Anti-Fade-Eindeckmedium, das mittig auf dem Objektträger abgeschieden wird. Befestigen Sie dann an einem Deckglas kleine Tonflecken an den vier Ecken, um zu verhindern, dass das Deckglas das Gehirn zerquetscht.
Positionieren Sie nun unter einem Präpariermikroskop das Gehirn in der Bauch-oben-Position. Verwenden Sie die konvexe dorsale Oberfläche des Gehirns als Orientierungspunkt, um die Ausrichtung der Gehirnprobe zu identifizieren. Dies bietet eine horizontale Ansicht des Neurons. Bringen Sie dann das Deckglas an.
Mit einem konfokalen Mikroskop, idealerweise ausgestattet mit GaAsP-Detektoren. Erhalten Sie den Bildstapel mit horizontaler Ansicht mit einem Objektiv mit hoher numerischer Apertur und einem Digitalzoom von 2,5. Erfassen Sie mindestens 180 optische Abschnitte mit 512 quadratischen Pixeln und einer Schrittweite von 0,2 Mikrometern.
Nachdem Sie den ersten Bildstapel aufgenommen haben, entfernen Sie das Deckglas von der Folie und positionieren Sie das Gehirn wieder in der vorderen Position, die eine Frontalansicht ermöglicht. Erstellen Sie dann mit der gleichen Technik einen neuen Bildstapel der Frontalansicht derselben Neuronen, die in der horizontalen Ansicht abgebildet sind. Achten Sie darauf, auch die Position des interessierenden Neurons in Bezug auf das Medulla-Neuropil aufzuzeichnen.
Die Identifizierung der gleichen Neuronen ist bei geringerer Vergrößerung möglich. Wenn jedoch das Signal verloren geht, weil das Gewebe tief ist, stellen Sie sich einfach die ventrale Hälfte des Gehirns vor.
Ziel dieses Verfahrens ist es, Neuriten aufzuspüren und Referenzpunkte für die Registrierung zuzuweisen. Öffnen Sie zunächst die rekombinierte Bilddatei. Gehen Sie dann zu Bearbeiten, dann zu Anzeigeanpassung anzeigen und schalten Sie den Fotorezeptorkanal aus, der rot ist.
Visualisieren Sie als Nächstes das Bild im Surpass-Modus. Wenn der Computer mit dem Stereographie-System ausgestattet ist, schalten Sie Stereo ein und verwenden Sie den Quad-Puffer-Modus, um 3D-Bilder zu visualisieren. Fügen Sie neue Filamente hinzu. Gehen Sie zu Übertreffen und dann zu Filamente. Und klicken Sie auf die Registerkarte "Automatische Erstellung überspringen, manuell bearbeiten". Klicken Sie dann auf die Registerkarte Zeichnen und wählen Sie AutoTiefe.
Wählen Sie als Nächstes Einstellungen aus. Schalten Sie die Option Linie um und geben Sie die entsprechende Pixelzahl für eine bessere Visualisierung ein. Schalten Sie dann Dendriten anzeigen, Anfangspunkt und Verzweigungspunkt um und legen Sie die Renderqualität auf 100 % fest. Wählen Sie nun die Registerkarte Zeichnen und beginnen Sie mit der Verfolgung von Neuriten. Beginnen Sie mit dem Axon und gehen Sie dann zu den Dendriten über. Das Axon und die Dendriten der Transmedulla-Neuronen sollten leicht zu unterscheiden sein.
Nachdem Sie die Neuriten verfolgt haben, gehen Sie zurück zu den Einstellungen und deaktivieren Sie sowohl den Anfangspunkt als auch den Verzweigungspunkt. Gehen Sie dann zu Übertreffen und dann zu Exportieren. Wählen Sie Objekte aus, und speichern Sie das Filament als Inventor-Datei.
In diesem Artikel wird eine Methode zur Abbildung von Neuronen im Gehirn von Drosophila mittels konfokaler Mikroskopie beschrieben. Der Schwerpunkt liegt auf der Visualisierung und Verfolgung der Organisation der Neuropil-Neuronen der Medulla und ihrer synaptischen Verbindungen.
Diese Methode ermöglicht eine hochauflösende 3D-Visualisierung der neuronalen Morphologie in einem genetisch zugänglichen Modellsystem und unterstützt die Zielvalidierung durch detaillierte strukturelle Abbildung neuronaler Schaltkreise. Durch die Bereitstellung quantitativer morphologischer Daten über definierte anatomische Schichten und Säulen hinweg verbessert sie die mechanistische Risikominimierung in der frühen Entdeckungsphase, indem sie Struktur-Funktions-Beziehungen klärt. Der Ansatz stärkt das Vorhersagevertrauen bei der Zielstrukturauswahl, indem er die dendritische Organisation mit synaptischen Konnektivitätsmustern verknüpft, die für Modelle neuropsychiatrischer Erkrankungen relevant sind.
Die Methode integriert sich in den Entdeckungsprozess von der frühen Target-Validierung bis hin zur Leitstruktur-Identifizierung, indem sie strukturelle Phänotypisierungsdaten bereitstellt, die das mechanistische Verständnis und die prädiktive Modellierung unterstützen.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026