Name: In ovo Elektroporation in embryonalen Hühnchenretina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-02-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 15 s
Description: Lernen Sie die In-ovo-Elektroporation in der embryonalen Hühnchenretina zur Untersuchung von Genexpression und morphologischen Veränderungen während der Entwicklung. Diese Methode ermöglicht die Visualisierung einzelner retinaler Zelltypen.

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Wir danken Herrn Maaz Enver für die Nutzung seiner HD-Kamera (Cannon VIXIA HFS100) zu danken. Diese Arbeit wurde zum Teil durch Zuschüsse von NIH (EY018738), New Jersey Kommission über die Spinal Cord Research (08 bis 3074-SCR-E-0 und 10-3091-SCR-E-0), und Busch Biomedical Research Award unterstützt.

Da einige Teile des Protokolls durchgeführt werden als zuvor in anderen JoVE Videos 2 und 3 Papiere mit geringen Modifikationen beschrieben werden wir nicht zu diskutieren, die hier im Detail. 1. Egg Handhabung und Zubereitung Needle <ol><li> Eier können in einem Wein gelagert-Kühler werden bei etwa 13 ° C für bis zu 1 Gespräch. Wenn die Temperatur zu hoch ist, werden Embryonen anfangen, abnormal entwickeln, während niedrigere Temperatur bewirkt eine hohe Mortalität. Sobald Sie bereit sind zu bebrüten nehmen Sie die Eier aus dem Weinkühler und legen die Eier senkrecht mit dem größeren Ende auf. Halten Sie die Eier in der Raumtemperatur für mindestens 2 Stunden, bevor sie sie in der 37,5 ° C Inkubator. </li><li> Bebrüten die Eier für 96 bis 100 Stunden, die über embryonalen Tag 4 ist zu Embryonen, die in der Hamburger und Hamilton Stufe 22 sind 5.4 zu erhalten. </li><li> Bereiten Mikropipette Nadeln aus gezogen Glaskapillarrohre und brechen Sie die Spitze unter einem Präpariermikroskop MikroUmfang mit einer Pinzette, um eine Spitze Eröffnung etwa 0,1 &amp;mgr; m im Durchmesser und 20 mm Aufnahme zu bekommen. Nadeln mit größeren Schwierigkeiten haben, Tipps Durchstechen der Dotterhaut, während kleinere Spitzen Schwierigkeiten haben, das Be-und Bereitstellung der DNA-Lösung. </li><li> Befestigen Sie die Nadel auf eine 0,1 ml Hamilton gasdichten Spritze auf einem Mikromanipulator montiert. Verwenden Sie ein kleines Stück Masterplex Silikonschlauch zur Befestigung der Nadel auf die Spritze. Da die Verbindungen dicht sind nicht nötig, Mineralöl hinzufügen, um diese Bindung zu versiegeln. </li><li> Mischen Sie 2 ul-Reporter-Plasmid-DNA-Lösung mit einer Konzentration im Bereich 3-6 ug / ul und 0,2 ul schnell grün (0,025%) auf einem Stück Parafilm. Schnelle grünen Farbstoff wird helfen, die Injektion zu visualisieren. Langsam, laden Sie die Nadel mit der Mischung. </li><li> Um die Dotterhaut von der inneren Membran frei drehen Sie das Ei vorsichtig um 180 ° und warten Sie einige Minuten und drehen Sie ihn zurück in die ursprüngliche Position und stellen Sie ihn für die Elektroporation. </li><li> Wischen Sie die FORCeps und Eierschale mit 70% Ethanol auf eine Infektion des Embryos zu vermeiden. </li><li> Machen Sie ein kleines Loch auf dem Ei unmittelbar über dem Luft-Zelle mit einem Paar der Größe AA Pinzette. Achten Sie darauf, die Eischale zu knacken. Entfernen Sie kleine Stücke ein zu einer Zeit um ein kleines Fenster zu machen. Entfernen Sie vorsichtig die innere Membran mit Hilfe der Pinzette ohne Berührung der Dotterhaut. </li></ol> 2. Injektion und Elektroporation <ol><li> Um eine Beschädigung des Gehirns oder des Herzens, die Position der Nadel kontralateralen der wichtigsten Bündel von Blutgefäßen in das Auge eintritt und weisenden Schnabel zu verhindern. </li><li> Pierce durch die Dotterhaut, Lederhaut, Netzhaut und des Glaskörpers durch einen plötzlichen milden Druck auf die Nadel. Wenn die Nadel sticht durch das andere Ende des Auges sollte es in Ordnung sein, wenn es keine größeren Vene Blut schädigt. </li><li> Langsam nach hinten ziehen Sie die Nadel an der Kante der Öffnung und legen Sie es fast Tangente an der Außenwand des Augapfels. </li><li> Insert die Nadel in den Sub retinalen Raum zwischen der Lederhaut und Netzhaut. </li><li> Spritzen Sie die DNA, bis Sie die grüne Lösung Füllen der Seite des Augapfels und Schieben der Netzhaut nach innen durch die Schaffung einer Ausbuchtung visualisieren können. </li><li> Wenn Ihre Nadel Platzierung nicht korrekt ist dann wirst du sehen die DNA-Lösung Ausbreitung im Inneren des Glaskörpers Auffüllen der Mitte des Augapfels. Auch, wenn Sie die Netzhaut beschädigen zu viel dann werden Sie sehen die DNA-Lösung kommt aus dem Augapfel. </li><li> Langsam entfernen Sie die Nadel und sofort platzieren die Elektroden parallel im Ei nach dem Einweichen in PBS. Drücken Sie die Elektroden zu versenken in das Fruchtwasser in einer Weise, so dass das Auge injiziert zwischen den Elektroden befindet. Berühren Sie keine größeren Blutgefäße oder das Herz mit den Elektroden beim Platzieren sie. Die negative Elektrode sollte an der Injektionsstelle Seite zu sein so dass die DNA von sub retinalen Raum in der Netzhaut in Richtung positive Elektrode transportiert werden kann. ElectroCorporate die Netzhaut mit 5 Impulsen von 15V für 50 ms mit 950 ms Intervallen. </li><li> Entfernen Sie vorsichtig die Elektroden und dichten die Fenster des Eies mit Stücken von klaren Tesafilm. </li><li> Label-und datieren Sie das Ei injiziert, bevor es wieder in den Inkubator. Normalerweise dauert es etwa 3 bis 5 Minuten bis die ganze Elektroporation Vorgang abzuschließen. </li><li> GFP-Expression kann so früh wie 8 Stunden nach der Elektroporation gesehen werden. Allerdings können Sie warten, bis der Embryo auf die gewünschte Stufe vor der Ernte. </li></ol> 3. Repräsentative Ergebnisse In unserer Studie verwenden wir verschiedene Plasmid-Konstrukte, um die Regulation der Genexpression, dass retinalen Zell-Entwicklung beteiligt zu studieren. In diesem Video pCAG-GFP (Transfektion Kontrolle) wurde verwendet, um eine erfolgreiche Injektion und Elektroporation folgen. Es kann jedoch jedes Plasmid Konstrukt mit Reportergen (GFP, RFP usw.) verwendet werden. Auch wenn GFP-Expression kann so früh wie 8 Stunden nach der Ele gesehen werdenctroporation wir in der Regel beginnen die Ernte das Ei am Tag 6 (E6) und weiter. Elektroporiertem Netzhäute wurden aus dem Embryo seziert und analysiert unter fluoreszierendem Dissektionsmikroskop vor Einbetten und Schneiden. Typischerweise kann die Expression des Reportergens zumindest in einem Quartal der Netzhaut nach einer erfolgreichen Elektroporation (Abb. 1) gesehen werden. Die transfizierten retinalen Gewebe wurden durch weitere Schnitte für eine klare Visualisierung von Zellmorphologien analysiert. Immunhistochemie mit Zelltyp-spezifische Marker (Brn3a, Pax6 etc.) erlaubt die Charakterisierung von Zell-spezifischen GFP-Expression (Abb. 2). <img src="/files/ftp_upload/3792/3792fig1.jpg" align="Figure 1" /> Abbildung 1. Erfolgreiche Elektroporation von Reporterplasmid Ergebnisse positiv GFP-Expression. Huhn embryonalen Netzhaut injiziert wurden und an embryonalen Tag 4 elektroporiert und geerntet an embryonalen Tag 6. Mindestens 25% der Netzhaut wurde erfolgreich transfiziert (A = Ansicht von oben, B= Ansicht von unten). Maßstab = 1 mm. <img src="/files/ftp_upload/3792/3792fig2.jpg" align="Figure 2" /> Abbildung 2. Charakterisierung von GFP-exprimierenden Zellen der Netzhaut mittels Immunhistochemie. GFP exprimierenden Netzhautgewebe bei E7 Bühne waren fester und geschnitten. Diese Schnitte wurden dann mit verschiedenen Zell-spezifische Marker gefärbt. Brn3a wurde verwendet, um Ganglienzellen (A) zu bestimmen, während Pax6 wurde verwendet, um horizontale, Amacrin und Ganglienzellen (B) zu bestimmen. Balken = 50 um.

<ol><li>Doh, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+retinal+cell+development+in+chick+embryo+by+immunohistochemistry+and+in+ovo+electroporation+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22BMC.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of retinal cell development in chick embryo by immunohistochemistry and in ovo electroporation techniques.</a> BMC. Dev. Biol. 10, (2010).</li>
<li>Blank, M. C., Chizhikov, V., Millen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Ovo+Electroporations+of+HH+Stage+10+Chicken+Embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In Ovo Electroporations of HH Stage 10 Chicken Embryos.</a> J. Vis. Exp. (9), e408-e408 (2007).</li>
<li>Nakamura, H., Funahashi, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introduction+of+DNA+into+chick+embryos+by+in+ovo+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Introduction of DNA into chick embryos by in ovo electroporation.</a> Methods. 24, 43-48 (2001).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo.+1951%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn.%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo. 1951.</a> Dev. Dyn.. 195, 231-272 (1992).</li>
<li>Hamburger, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+stage+series+of+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">The stage series of the chick embryo.</a> Dev. Dyn. 195, 273-275 (1992).</li>
</ol>

Alle Tierversuche wurden von der Institutional Animal Care und Einrichtungen Ausschuss an der Rutgers University zugelassen.

Gezielte Injektion Netzhaut und in ovo Elektroporation in embryonale Retina bei E4 Bühne können gezielt retinalen Vorläuferzellen was in der Fähigkeit, alle sechs großen Netzhaut Zelltypen auf der Ebene einzelner Zellen sichtbar zu machen. In ovo Elektroporation bei HH10 (~ E1.5), deren Zielgruppe die Augenblase ist in der Lage, Zellen, die um das Auge bilden entwickeln transfizieren. Jedoch haben diese Zellen eine sehr hohe Fluktuation in dieser Zeit und dieses Verfahren ist nicht spezifisch für Zelle...

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td><td> Kommentare </td></tr><tr><td> Befruchteten pathogen-freien (SPF) White Leghorn Hühnereiern </td><td> Sonnenaufgang Bauernhöfe (Catskill, NY) </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Hühnerei Inkubator </td><td> DQR Fertigung, Savannah, GA </td><td> Modell-1550 </td><td> Set zu 60% Luftfeuchtigkeit und 37,5 ° C. </td></tr><tr><td> Glaskapillarrohre </td><td> World Precision Instruments Inc. </td><td> TW150F-4 </td><td></td></tr><tr><td> 0,1-ml-Spritze </td><td> Hamilton Co. Reno, Nevada </td><td> Gasdichte 1710 </td><td> Alternativ 1 ml-Spritze kann ebenso verwendet werden </td></tr><tr><td> Masterflex Silikon (Peroxid) Tubing </td><td> Cole-Parmer </td><td> HV-96400-13 </td&gt; <td> Schneiden Sie ein kleines Stück (1 cm) zum Befestigen das Glas Nadel an der Spritze </td></tr><tr><td> Pinzette </td><td> Dumont </td><td> AA </td><td></td></tr><tr><td> Mikromanipulator </td><td> World Precision Instruments Inc. </td><td> M3301-M3 </td><td></td></tr><tr><td> Plasmid-DNA </td><td></td><td></td><td> pCAG-GFP wurde von Dr. Connie Cepko ausgeliehen </td></tr><tr><td> Fast Green FCF </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> F7252 </td><td> Verdünnen Sie es zu 0,025% mit PBS </td></tr><tr><td> Impulsgeber </td><td> Harvard Apparatus, MA </td><td> BTX ECM 830 </td><td> Rechteckgenerator </td></tr><tr><td> Elektroden </td><td> Harvard Apparatus, MA </td><td> BTX-Modell 514 </td><td> Unsere Elektroden wurden 3-5 mm voneinander beabstandet </td></tr><tr><td> Monochrome Digitalkamera </td><td> Zeiss, Deutschland </td><td> Einxiocam MRM </td><td></td></tr><tr><td> Fluoreszierende Dissektionsmikroskop </td><td> Leica Microsystems, Deutschland </td><td> Leica MZ16FA </td><td></td></tr><tr><td> Aufrechtes Fluoreszenzmikroskop </td><td> Zeiss, Deutschland </td><td> Zeiss Axio Imager A1 </td><td></td></tr></tbody></table>

in ovo elektroporation in embryonalen hühnchenretina

In Ovo Electroporation in Embryonic Chick Retina

Huhn embryonalen Netzhaut ist ein ausgezeichnetes Werkzeug zur Entwicklung der Retina bei höheren Wirbeltieren zu studieren. Aufgrund der Größe und externen Entwicklung ist es vergleichsweise sehr einfach, die Küken embryonalen Netzhaut mittels rekombinanter DNA / RNA-Technologie zu manipulieren. Elektroporation von DNA / RNA-Konstrukte in der embryonalen Retina haben einen großen Vorteil, um Genregulation in retinalen Stammzellen / Vorläuferzellen während der Entwicklung der Retina zu untersuchen. Verschiedene Arten von Assays wie Reportergenassay, Gen-Überexpression, Gen niederschlagen (shRNA) etc. kann mit Hilfe der Elektroporation Technik werden. Dieses Video demonstriert gezielte Einspritz-und Retina-in-ovo-Elektroporation in die embryonale Hühnchenretina in der Hamburger und Hamilton Stadium 22-23, die etwa embryonalen Tag 4 (E4) ist. Hier zeigen wir eines schnellen und komfortablen in-ovo-Elektroporation Technik, bei der eine Plasmid-DNA, die grün fluoreszierendes Protein (GFP) drückt als Marker wird direkt in die gelieferteKükenembryonen subretinalen Raum, gefolgt von elektrischen Impulsen zur DNA-Aufnahme durch Netzhaut-Stammzellen / Vorläuferzellen zu erleichtern. Die neue Methode der retinalen Injektion und Elektroporation auf E4 ermöglicht die Visualisierung der einzelnen retinalen Zelltypen, einschließlich der spätgeborene Neuronen 1, die schwierig gewesen ist mit dem herkömmlichen Verfahren der Injektion und Elektroporation bei E1.5 2.

Das übergeordnete Ziel dieses Videos ist zu zeigen, wie die gezielte Injektion Netzhaut führen und<em&gt; In-ovo-</em&gt; Elektroporation von DNA / RNA-Konstrukten in das Küken embryonalen Netzhaut an der Hamburger und Hamilton Stadium 22-23, die etwa embryonalen Tag 4 (E4) ist. Diese Technik ist sehr nützlich, um die Genexpression, Genregulation und morphologische Veränderung bei der Entwicklung Hühnchenretina studieren.

In ovo Elektroporation in embryonalen Hühnchenretina

Die Netzhaut von Hühnchenembryonen ist ein hervorragendes Instrument zur Untersuchung der retinalen Entwicklung bei höheren Wirbeltieren. Aufgrund der geringen Größe und der externen Entwicklung ist sie ...

Hallo, ich bin Mohammed Islam. Ich bin Doktorand im Labor von Dr. Lee am Fachbereich Biomedizinische Technik der Rutger University. Heute zeige ich Ihnen, wie man eine gezielte Netzhautinjektion und eine in vivo Elektroporation durchführt.Im Chi-Embryo werden wir das embryonale Hühnerretina im Stadium des vierten Embryotages, also etwa 96 Stunden nach der Entzündung, einpflanzen. Diese Technik gilt als neuartige Methode zur Untersuchung der Netzhautentwicklung. Die Methode zielt gezielt auf retinale Vorläuferzellen ab und ermöglicht es, alle Netzhautzelltypen auf Einzelzellniveau sichtbar zu machen.Es kann auch bei Funktionsgewinn- oder Funktionsverlust-Studien angewendet werden, bei denen ein Gen von Interesse gezielt auf die Untersuchung der normalen Entwicklung oder von Erkrankungen der Netzhaut ausgerichtet werden kann. X kann bis zu einer Woche lang in einer Weinkühlung bei etwa 13 Grad Celsius aufbewahrt werden. Wenn die Temperatur zu hoch ist, beginnen sich die Embryonen abnormally zu entwickeln, während eine niedrigere Temperatur eine hohe Sterblichkeit verursacht.Sobald Sie bereit sind, die Inkubation zu beginnen, nehmen Sie die Eier aus dem Weink&uuml;hlschrank und stellen Sie

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Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Küken in ovo Elektroporation ist eine Technik, die genetische Manipulation der Vogelembryo ermöglicht. Typische Anwendungen für diese Technik sind die funktionelle Analyse von Genen und vermeintlichen Enhancer-Elemente. Dieses Video zeigt Neuralrohr Elektroporation in HH 10 Hühnerembryonen. Injektionstechnik und ordnungsgemäße Eibehandlung werden diskutiert.

In Ovo Electroporations von HH Stage 10 Hühnerembryonen

Hier präsentieren wir Ihnen zwei Techniken zur Manipulation der Genexpression in murinen retinalen Ganglienzellen (RGC)...

In utero und ex vivo Elektroporation für die Genexpression in Maus retinalen Ganglienzellen

Eine Methode für die Einbeziehung von Plasmid-DNA in murinen Zellen der Netzhaut zum Zwecke der Durchführung entweder gewinnen oder Verlust der Funktion...

In-vivo-Elektroporation von Entwicklung Maus Retina

Eine Methode, bedingt Knockdown ein Zielprotein Ausdruck in der erwachsenen Zebrafisch Retina beschrieben, das geht intravitreal Injektion antisense Morpholinos und Elektroporation sie in der Netzhaut. Das resultierende Protein ist für mehrere Tage, die Prüfung des Proteins Rolle bei der Regeneration oder intakten Netzhaut ermöglicht klopfte.

In-vivo-Elektroporation von Morpholinos in die Adult Zebrafisch Retina

Um die Funktion und die Regulation von Genen während der Entwicklung der dopaminergen Neurone im Mittelhirn zu bewerten, beschreiben wir eine Methode, die...

In ovo Elektroporation in Mittelhirn-Küken für Studien über Genfunktion in dopaminergen Neuronen Entwicklung

Embryonale Küken Netzhautzellkulturen stellen wertvolle Werkzeuge für das Studium der Photorezeptorbiologie. Wir haben ein effizientes Gentransfertechnik, die auf ex ovo Elektroporation von Plasmid der Netzhaut vor der Kultur entwickelt. Diese Technik wesentlich erhöht Transfektionseffizienzen über derzeit verfügbaren Protokolle, was die genetische Manipulation möglich für dieses System.

Effizienten Gentransfer in Küken Netzhäute für primäre Zellkulturstudien: Eine Ex-ovo Elektroporation Ansatz

Dieses Protokoll beschreibt ein Verfahren, um zu sezieren, experimentell zu manipulieren und Kultur ganze Retina-Explantaten aus Hühnerembryonen. Das Explantat-Kulturen sind nützlich, wenn hohe Erfolgsrate, Wirksamkeit und Reproduzierbarkeit sind notwendig, um die Auswirkungen von Plasmiden für die Elektroporation und / oder Reagenz Substanzen, dh, enzymatischer Inhibitoren zu testen.

Whole Retinal Explantaten aus Hühnerembryonen für die Elektroporation und Reagens-Behandlungen

Wir beschreiben die Methoden für die fluoreszierenden Kennzeichnung von tangential Migration Zellen durch Elektroporation und für Zeitraffer-Aufnahmen von der markierten Zelle Bewegung in einer Wohnung-Mount-Kultur um die Migration zu visualisieren Zelle Verhalten in den Entwicklungsländern Küken optic Tectum .

Visualisierung der tangentialen Zellwanderung in den Entwicklungsländern Küken Optic Tectum

Wir haben einen neuartigen Loss-of-Function-Ansatz entwickelt, der die Einführung und genomische Integration künstlicher Mikro-RNA-Sequenzen in Kükenembryonen unter Verwendung der In-ovo-Elektroporation und des Tol2-Transposon-Systems beinhaltet. Diese Technik bietet eine robuste und stabile Gen-Knockdown-Methode für Studien der Genfunktion während der Entwicklung.

Loss-of-Function-Ansatz in der embryonalen Küken-Netzhaut unter Verwendung von Tol2-Transposon-vermittelter transgener Expression künstlicher microRNAs

Das Küken ist ein kostengünstiger, zugänglicher und weit verbreiteter Modellorganismus für eine Vielzahl von Studien. Hier wird eine Reihe von Protokollen detailliert beschrieben, um die molekularen Mechanismen zu verstehen, die der Entwicklung und Regeneration des Vogelinnenohrs zugrunde liegen.

In Ovo und Ex Ovo Methoden zur Untersuchung der Entwicklung des Vogelinnenohrs

Lernen Sie die In-ovo-Elektroporation in der embryonalen Hühnchenretina zur Untersuchung von Genexpression und morphologischen Veränderungen während der Entwicklung. Diese Methode ermöglicht die Visualisierung einzelner retinaler Zelltypen.

In ovo Elektroporation in embryonalen Hühnchenretina

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