Name: Ernte Murine Alveolarmakrophagen und Auswerten zelluläre Aktivierung von Polyanhydrid Nanopartikel Induced (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-08T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 26 s
Description: Lernen Sie die Isolierung muriner Alveolarmakrophagen durch Bronchoalveolarlavage und deren Aktivierung durch Polyanhydrid-Nanopartikel. Diese Methode ermöglicht die Analyse zellulärer Immunantworten mittels Durchflusszytometrie.

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Die Autoren möchten sich an die US Army Medical Research und Materiel Command (Grant Numbers W81XWH-09-1 bis 0386 und W81XWH-10-1-0806) für die finanzielle Unterstützung und danken Dr. Shawn Rigby von der Iowa State University Durchflusszytometrie Facility for seine kompetente technische Unterstützung.

1. Ernte Alveolarmakrophagen (AMɸ) aus der Maus über Lungenlavage <ol><li> Tragen Sie geeignete persönliche Schutzausrüstung (PSA), wie einen Laborkittel, Einweg-Handschuhe und entsprechende Schutzkleidung. </li><li> Bereiten Sie komplette AMɸ (cAMɸ) Medium vor Beginn der Ernte. In 2,5 ml Penicillin / Streptomycin (Penicillin / Streptomycin)-Lösung, 250 ul β-Mercaptoethanol (2-Mercaptoethanol), und 25 ml Hitze-inaktiviertem fetalen Rinderserum (FBS) bis 222,25 ml Dulbelcco-modifiziertem Eagle Medium (DMEM). Filter-sterilisiert cAMɸ Medium unter Verwendung eines 0,2 &amp;mgr; m Porengröße Bottle Top-Filter unter Vakuum. </li><li> Euthanize eine gesunde Maus durch CO 2-Erstickung in einer Nottötung Kammer. Obwohl ein C57BL / 6 Mäuse (6-8 Wochen alt) für die Zwecke des Projekts verwendet wurde, kann diese Lungenspülung Technik, auf jedem Mausstamm durchgeführt werden. Verwendung einer Druckgasflasche, können Gasstrom in die Kammer für 1 min vor dem Platzieren der Maus in der chBernstein, um sicherzustellen, dass die Kammer voll ist mit CO 2 belastet. Platzieren Sie die Maus in der Kammer für mindestens eine Minute, um die Maus einschläfern. Darüber hinaus exsanguinate jede Maus über Herzpunktion als physikalisches Verfahren zur Maus Tod bestätigen, wie unter 1.4 beschrieben. </li><li> Lay Maus auf dem Rücken (dorsal), Spray mit 70% Ethanol, suchen Sie das Brustbein und bei einem Winkel von 30 Grad aus dem Bauch, legen Sie eine 23-Gauge-Nadel (verbunden mit einer 1 ml-Spritze) ca. 50 mm in die Brusthöhle . Bei richtiger Platzierung der Nadel, sollte es möglich sein, zwischen 0,4 und 1 ml Blut in Abhängigkeit von der Größe der Maus erhalten. Untersuchen Sie das Tier für die Einstellung der Vitalfunktionen. </li><li> Bewegen Sie die Maus auf dem Labortisch, so dass sie sich auf den Bauch (Bauchseite) liegen. Spray-Maus mit 70% Ethanol, um die Arbeitsumgebung zu sterilisieren. Pinch Haut etwa auf halbem Weg über den Rücken der Maus. Mit Schere Dissektion, die mit 70% Ethanol sterilisiert wurden, machen einen kleinen Schnitt durch die Haut. &lt;/ Li&gt; <li> Besorgen Sie sich die Haut auf beiden Seiten des Schnittes und ziehen Sie die Haut in entgegengesetzte Richtungen entlang der Schädelbasis-caudale Achse der Maus. Wenn es richtig gemacht, wird die Haut von der darunter liegenden Kadaver entfernt werden. </li><li> Der Hals der Maus sollte jetzt ausgesetzt Muskeln und Drüsen. Schneiden Sie vorsichtig, dass Gewebe und ziehen Sie sie in Richtung der vorderen der Maus mit einer Pinzette, wodurch der Kehlkopf, Luftröhre, Speiseröhre und der Maus. Vermeiden Sie das Schneiden der Halsschlagader oder Halsschlagader. </li><li> Die Luftröhre ist nun sichtbar und erkennbar ist, wenn das Gewebe mit Knorpelringe um ihn herum. Fein halten die Luftröhre mit einer Pinzette und leicht anzuheben und zu trennen die Luftröhre von der Speiseröhre, die auf der dorsalen Seite befindet. </li><li> Machen Sie einen kleinen Schnitt anterior, wo man hält die Luftröhre, sondern hinter dem Kehlkopf. Der Schnitt sollte bei ca. 45 °-Grad-Winkel erfolgen. Auch nicht ganz durchschneiden die Luftröhre, wie diese wird es ab Einfahren verhindern indie Körperhöhle. </li><li> Füllen Sie eine 1-ml-Spritze mit einem Kater Katheter mit sterilem PBS in Vorbereitung, um den Katheter in das Lumen der Luftröhre legen ausgerüstet. Halten Sie die Luftröhre mit einer Pinzette und mit der Hand zu halten, den Katheter in der Nähe der Spitze, um die Kontrolle zu erhöhen und schieben Sie sie vorsichtig in die Luftröhre Inzisionsstelle. Setzen Sie vorsichtig Katheter in Luftröhre etwa 20 mm. Fassen Sie die Luftröhre, die sich um den Katheterschlauch ist, die Befreiung der anderen Seite. </li><li> Mit einer 1 ml Spritze mit dem Katheter angebracht, vorsichtig ziehen 0,75 ml Raumtemperatur, sterilem PBS in die Lunge und dann sanft saugen Sie den PBS zurück in die Spritze aufziehen. Wiederholen Sie diesen Vorgang dreimal, während extern Massieren der Brust. Trennen Sie die Spritze aus dem Katheter und Abgeben der Spülflüssigkeit in eine 15 ml-Zentrifugenröhrchen. Nach dem Befüllen der Spritze mit 0,75 ml frisches PBS und wieder die Spritze an den Katheter, wiederholen Sie die Schritte 1.9 und 1.10 zweimal für jede Maus. Fluidrückgewinnungssystem aber auch nur teilweise erhalten, weniger als die volume infundiert. Wenn das Sammeln Zellen, die aus mehr als einer Maus, legen Sie die 15-ml-Tube mit den geernteten Zellen auf Eis, bis alle Lungen-Lavage durchgeführt wurden. </li></ol> 2. Die Verarbeitung von Lungenlavage AMɸ Ernte <ol><li> Zentrifuge Lungenwasch-Flüssigkeit bei 250 xg für 10 min bei 4 ° C </li><li> Unter Einhaltung steriler Techniken dekantieren in geeignete Abfallbehälter innerhalb einer biologischen Sicherheitswerkbank. Das Zellpellet durch leichtes harken das Zentrifugenröhrchen über den oberen Teil ein Reagenzglas Rack. 1 mL cAMɸ Medium, um die Zellen zu resuspendieren. </li><li> Zählen Sie die Zellen mit Hilfe eines Coulter Particle Counter Z1 durch Pipettieren 20 uL von Zellen in 10 ml Isoton II Diluent im Coulter Counter Fläschchen. In 3 bis 4 Tropfen des Zap-oglobin II Lysereagenz in Fläschchen vorsichtig umdrehen 3 bis 4 mal und legen Sie das Probenfläschchen auf den Tresen, um eine Zelle Konzentration zu erhalten. Achten Sie darauf, um den Zähler mit einem Verdünnungsfaktor von 2 x 10 4 zu programmieren, um die AnzeigeZellkonzentration wie die Anzahl der Zellen pro ml. </li><li> Verdünnte-Zellen zu 2,5 × 10 5 pro ml mit cAMɸ Medium. </li><li> Dosiernadel 2 ml von 2,5 × 10 5 Zellen / ml in jede Vertiefung einer 6-Well-Gewebekulturplatten. </li><li> Um für AMɸ, inkubieren Kulturschalen in einem 37 ° C befeuchteten Inkubator mit 5% CO 2-Atmosphäre für 6 h bereichern zu lassen Zellen auf den Grund des gut haften. Den Überstand vorsichtig absaugen, um nicht zu stören anhaftenden Zellen. </li><li> Spülen Sie die Wells mit sterilem PBS (Calcium und Magnesium kostenlos), um nicht-adhärente Zellen und Ablagerungen zu entfernen. Geben Sie 2 ml cAMɸ Medium in jede Vertiefung. </li><li> Inkubieren Zellen über Nacht in einem 37 ° C befeuchteten Inkubator mit 5% CO 2-Atmosphäre vor der Zugabe von Stimulanzien. Nach diesem Schritt Bereicherung, sind ca. 87% der Zellen positiv für den Makrophagen-Marker CD11b und F4/80 (Abbildung 2c). </li></ol> 3. Die Zugabe von Polyanhydride Nanopartikel und Kontrollbehandlungen <ol><li> Fabrizieren Nanopartikeln über Polyanhydrid Antilösungsmittel Nanoverkapselung 15. Bei diesem Verfahren wird das Polymer in Methylenchlorid gelöst (4 ° C bei einer Konzentration von 25 mg / ml) extrahiert und in Pentan (-20 ° C bei einem Verhältnis von 1:200 Methylenchlorid: Pentan). </li><li> Abwiegen Polyanhydrid Nanopartikel mit Hilfe von sterilisierten wiegen Papier auf einer Waage, die genau messen kann Mikrogramm-Mengen. In Teilchen zu einem 1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen. </li><li> Resuspendieren Sie die Nanopartikel in eiskaltem cAMɸ. Berechnungen werden, so dass nicht mehr als 0,3 ml Medium zu jeder Vertiefung zugegeben, um die gewünschte Konzentration von Nanopartikeln zu erhalten. Halten Sie die resuspendierten Partikel auf Eis, bis die Nanopartikel zur Kultur hinzugefügt gut. </li><li> Vor der Zugabe der Nanopartikel an die AMɸ Kulturen, beschallen Teilchen mit Hilfe eines Ultraschallgeräts Tischgerät mit einer Mikrospitze. Sterilisieren Mikrospitzen durch Besprühen mit 70% Ethanol und wiping mit einer sterilen Kimwipe vor der Beschallung. Beschallen bei 10-20 Joule für 30 bis 45 s, während die Röhrchen auf Eis. Beachten Sie Nanopartikel-Suspension makroskopisch. Wenn Teilchen nicht ausreichend dispergiert werden, damit die Suspension auf Eis für 1 bis 2 min eingestellt, um sicherzustellen, dass die Nanopartikel unterhalb der Glasübergangstemperatur des Polymers vor Beschallen wieder für 30 bis 45 Sekunden. Der Zweck dieses Beschallungsschritt ist ausreichend zu dispergieren die Nanopartikel als 50:50 CPTEG: CPH Nanopartikel neigen dazu, zusammen, wenn sie einer wässrigen Umgebung ausgesetzt. Jedoch können einige kleine Aggregate von Nanopartikeln noch in der Suspension verbleiben. </li><li> Nanopartikel-Suspension (ausreichend dispergiert) sollten auf Eis gehalten werden und sofort verwendet werden, um ein vorzeitiges Oberflächenerosion oder Aggregation zu verhindern. </li><li> Entfernen Sie die Kulturschalen mit dem AMɸ von Inkubator und Platz in der Biosicherheitswerkbank. Tilt Platte ungefähr in einem Winkel von 45 Grad und Pipette aus der Menge der medium aus, der der Nanopartikel-Suspension (es sollte nicht mehr als 0,3 ml) zugesetzt werden. Bitte nicht stören die adhärenten Zellen beim Entfernen des Mediums. </li><li> Vortex Polyanhydrid der Nanopartikel-Suspension kurz vor der Zugabe zu den entsprechenden Vertiefungen. Pipettieren die Menge an Nanopartikel-Suspension (nicht mehr als 0,3 ml) in die auch spezifische (n) jedoch nicht und Abpipettieren zu mischen. Diese Aktion könnte die Anhänger AMɸ lösen aus dem Brunnen. Die Partikel werden an der Unterseite des gut einleben und an die Zellen. Für die Studien in diesem Bericht beschriebenen, war die endgültige Konzentration von Nanopartikeln mit dem AMɸ kokultiviert 125 ug / ml. Fahren Sie mit dem nachfolgenden Brunnen und gewünschte Behandlungsgruppen. Positive und negative Kontrollgruppe, wie nur Medium und 200 ng / ml Lipopolysaccharid (LPS) an bestimmte Vertiefungen. </li><li> Senden Sie die Kulturschalen auf die 37 ° C befeuchteten Inkubator mit 5% CO 2-Atmosphäre für 48 Stunden. Kinetische Untersuchungen in unserem laboratory 48 Stunden haben gezeigt, dass die optimale Kultur Zeitraums für die Bewertung sowohl Zell-Oberflächen-Marker-Expression und Zytokin-Sekretion, da es ausreichend Zeit erlaubt für die Transkription und Proteinsynthese stattfindet sein. Obwohl ein höheres Maß an Zytokinen während eines längeren Zeitraums Kultur (dh 72 Stunden) anfallen, kann die Bewertung Zelloberflächenmarker Ausdruck zu diesem Zeitpunkt durch den Beitrag der erhöhte Spiegel von Zytokinen verwechselt werden. Die Veränderungen der Oberfläche Marker-Expression beobachtet möglicherweise nicht direkt zurechenbaren Stimulation mit den Nanopartikeln selbst. </li></ol> 4. Auswerten AMɸ Aktivierung mittels Durchflusszytometrie <ol><li> Planen Fluoreszenz-aktivierten Zellsortierung (FACS)-Puffer (0,1% Natriumazid und 0,1% Rinderserumalbumin (BSA)) in 0,1 M Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung (pH 7,4) vor dem Ernten der plattierten Makrophagen, die mit Nanopartikeln haben o co-kultiviertr Stimulanzien. </li><li> Planen Arbeitslösungen der Blocking-Puffer und den monoklonalen Antikörpern. Um die Blockpuffer herzustellen, zu verdünnen Ratten-IgG (Sigma) und anti-CD16/32 (eBioscience) auf 1 mg / ml und 10 mg / ml, jeweils in FACS-Puffer. Verdünnen Oberfläche Marker-Antikörper-Panel in FACS-Puffer entweder vom Hersteller empfohlenen Konzentration oder dem Benutzer optimierte Konzentration. Für die Ergebnisse in dieser Arbeit vorgestellten besteht die Oberfläche Marker-Panel von Antikörpern gegen MHC II, CD86, CD40 und CIRE (CD209). Anti-Maus-Antikörper gegen den Makrophagen-Marker F4/80 und CD11b sind auch in der Platte enthalten, um positiv zu identifizieren, der die Makrophagen-Phänotyp bei der Datenanalyse. Ist darauf zu achten bei der Auswahl der Antikörper gegen MHC II-Moleküle, wie Inzucht-Mausstämmen oft in ihren MHC-II-Haplotypen unterscheiden. Die Antikörper ausgewählt werden, müssen mit den spezifischen MHC Alloantigene von der Maus Stamm von Interesse bekundet reagieren. </li><li> Nach 48 h Inkubation mit Nanopartikeln und / oderStimulanzien, Ort Zellkulturschalen auf Eis für 20 min. Um die adhärenten Makrophagen von den Platten entfernen, vorsichtig abkratzen Brunnen mit einem 24 cm Zellschaber. </li><li> Mit einem 5 ml serologische Pipette vorsichtig aspirieren Zellen und Medium nach oben und unten fünf Mal, um eine einzelne Zellsuspension zu generieren. Pipettieren Sie die Inhalte der einzelnen Vertiefungen in separate 5 ml Polystyrol-Röhrchen, um nicht zu vermischen und Zellen aus verschiedenen experimentellen Behandlungen. </li><li> 2 ml FACS-Puffer in jedes Röhrchen. </li><li> Zentrifugenröhrchen von Zellen bei 250 × g bei 4 ° C für 10 min. </li><li> Überstand dekantieren und vorsichtig resuspendieren Zellpellet in Restflüssigkeit durch Rechen die Rohre im oberen Bereich ein Reagenzglas Rack. </li><li> Um unspezifische Bindung der monoklonalen Antikörper zu verhindern, fügen 10 l Blocking-Puffer (hergestellt in 4,2) in jedes Röhrchen von Zellen. Wirbelröhren und inkubieren auf Eis für 30 min. </li><li> Fügen Sie entsprechende Volumen der verdünnten monoklonalen Antikörper in jedes Röhrchen und incubaß im Dunkeln auf Eis für 15 min. Rohre, die Proben enthalten, analysiert werden sollen erhalten die Kombination von Antikörpern der polycromatic Platte (früheren Optimierung der Kombination von Antikörpern sollten von den einzelnen Labors durchgeführt werden). Zusätzliche Kontrollgruppen sollten einbezogen, um korrekte Werte in die Aufnahme-Parameter am Durchflusszytometer, darunter ein Rohr von Zellen, die nicht gekennzeichnet wurden, und Schläuche, die zum Ausgleich markierten Zellen unter Verwendung jedes einzelnen Farbe separat zu entsprechen. Um richtig eingestellt die Tore für die durchflusszytometrische Analyse, die Fluoreszenz Minus One (FMO) Kontrollen sollten während der Erfassung einbezogen werden. FMO Kontrollen sind Zellen, die mit allen Fluorochrom-konjugierten Antikörper, die auf der Platte bis auf eine, die von ihren Isotyp-Kontrolle ersetzt werden markiert. Positive und negative Populationen (dh, unabhängig Aliquots von Zellen mit einer positiven Kontrolle Stimulans und Medium allein behandelt wurden) sollten auch in FMO und Entschädigung Kontrollröhrchen einbezogen werden. </li><li&gt; 2 ml FACS-Puffer in jedes Röhrchen, vortexen und zentrifugieren bei 250 x g bei 4 ° C für 10 min. </li><li> Dekantieren des Überstandes und Resuspendieren Zellpellet in Restflüssigkeit durch Harken die Röhren über die Oberseite eines Reagenzglasständer. </li><li> Wenn der Antikörper-Panel besteht aus einem Antikörper nicht direkt an ein Fluorochrom konjugiert sondern ist an Biotin konjugiert, wird ein Fluorochrom-konjugiertem Streptavidin erforderlich, um die Oberflächen-Marker zu visualisieren. In diesem Schritt fügen Sie eine entsprechende Volumen des verdünnten Fluorochrom-konjugiertem Streptavidin und Inkubation im Dunkeln für 15 Minuten auf Eis. Wie in 4.2 wird die Streptavidin in einer Konzentration vom Hersteller empfohlen oder einem durch den Benutzer optimiert verdünnt werden. Dieser Schritt ist nur für Platten, die biotinylierte Primärantikörper benötigt. </li><li> Führen Sie ein Waschschritt wie in 4.10 beschrieben. </li><li> Verdünnen Sie ein entsprechendes Volumen von BD Stabilisierung Fixativ 1:3 in entionisiertem Wasser. Je 100 ul verdünnte Fixativ in jedes Röhrchen, während sanft vortexing Verklumpen zu verhindern von Zellen. Markierte und fixierten Zellen kann stabil in der Dunkelheit bei 4 ° C für etwa eine Woche vor der Übernahme mit einem Durchflusszytometer. </li></ol> 5. Repräsentative Daten Nanopartikel in Schritt 3.1 hergestellt hatten einen mittleren Durchmesser von 163 ± 24 nm und eine Morphologie mit dem von früheren Studien 5,16 erhalten. Nanopartikel in Lösung vor und nach der Beschallung sind in 1 gezeigt, um die Notwendigkeit für die Beschallung zeigen, um eine angemessene Verteilung der Partikel zu gewährleisten. Die durchflusszytometrische Analyse der geernteten AMɸs über Lungenlavage erhalten wird, in Abbildung 2 dargestellt. Markieren von Zellen mit einer Kombination von Anti-Maus-CD11b und anti-Maus-Antikörper F4/80 sowie die entsprechenden FMO Steuerelemente können zum Herstellen Hintergrundmarkierung, Identifizieren AMɸs und Gating für die weitere Analyse. Die Behandlung von Alveolarmakrophagen mit PolyanhydridNanopartikel erhöht Aktivierung durch die erhöhte mittlere Fluoreszenzintensität von MHC II, CD40, CD86 und CIRE (Abbildung 3). <img alt="1" src="/files/ftp_upload/3883/3883fig1.jpg" /> . Abbildung 1 50:50 CPTEG: CPH-Nanopartikel vor (a) und nach (B) 30 s Beschallung. <img alt="2" src="/files/ftp_upload/3883/3883fig2.jpg" /> 2. Die durchflusszytometrische Analyse geerntet alveolären Makrophagen, die mit (A) Alexa Fluor 700 anti-CD11b und der PE-Cy7 FMO Kontrolle, (B) Alexa Fluor 700 FMO sowie der PE-Cy7 anti-F4/80 markiert und (C ) Alexa Fluor 700 anti-CD11b-und PE-Cy7 anti-F4/80. Die Zahl in der oberen rechten Ecke stellt den Prozentsatz der doppelt-positiven Zellen. <img alt="Abbildung 3" src="/files/ftp_upload/3883/3883fig3.jpg" /> 3. Histogramme zeigen eine Zunahme der Fluoreszenz Absichtensität für die Oberflächenexpression von MHC-II (A), CD40 (B), CD86 (C) und CIRE (D) nach Co-Kultur von alveolaren Makrophagen mit 50:50 CPTEG: CPH Polyanhydrid Nanopartikel für 48 Stunden. Histogramme zeigen Ergebnisse für AMɸ als FMO Kontrollen beschriftet ( <img alt="Graph-Linie 1" src="/files/ftp_upload/3883/3883line1.jpg" /> ), Unbehandelt AMɸ beschriftet mit Antikörpern gegen alle Zelloberflächenmarker ( <img alt="Graph-Linie 3" src="/files/ftp_upload/3883/3883line3.jpg" /> ) Und AMɸ kultiviert mit Nanopartikeln und beschriftet mit Antikörpern gegen alle Zelloberflächenmarker ( <img alt="Graph-Linie 2" src="/files/ftp_upload/3883/3883line2.jpg" /> ).

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Keine Interessenskonflikte erklärt.

Polyanhydrid Nanopartikel-Impfstoff-Plattformen haben die Wirksamkeit gezeigt, wenn intranasal in einzelnen Dosierungen 5 verwaltet. Messung der Aktivierung der ansässigen phagozytischen Zellpopulationen in der Lunge durch diesen Impfstoff induziert Delivery-Plattform ermöglicht eine Bewertung der potenziellen Fähigkeit, letztlich in der adaptiven Immunantwort. Insbesondere Ernte Alveolarmakrophagen aus Lungenlavage und behandelt sie mit verschiedenen Formulierungen der Nanopartik...

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td><td> Kommentare </td></tr><tr><td> cAM Medien </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Cellgro </td><td> 15 bis 013-CV </td><td></td></tr><tr><td> 50 mM 2-Mercaptoethanol </td><td> Sigma </td><td> M3148-25ML </td><td></td></tr><tr><td> Penicillin / Streptomycin 10000 ug / ml Lösung </td><td> Cellgro </td><td> 30-002-CI </td><td></td></tr><tr><td> Fötalem Rinderserum </td><td> Atlanta Biologicals </td><td> S11150 </td><td></td></tr><tr><td> FACS-Puffer </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Kochsalz </td><td> Fisher Scientific </td><td> S671-500 </td><td></td></tr><tr><td> Natriumphosphat </td><td> Fisher Scientific </td><td> MK7868500 </td><td></td></tr><tr><td> Kaliumchlorid </td><td> Fisher Scientific </td><td> P217500 </td><td></td></tr><tr><td> Kaliumphosphat </td><td> Fisher Scientific </td><td> P288-200 </td><td></td></tr><tr><td> BSA (Bovine Serum Albumin) </td><td> Sigma </td><td> A7888 </td><td></td></tr><tr><td> Natriumazid </td><td> Sigma </td><td> S2002 </td><td></td></tr><tr><td> Antikörper </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ratten-IgG </td><td> Sigma </td><td> I4341 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Frau CD16/32 </td><td> eBioscience </td><td> 16-0161 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Frau MHC II Haplotyp IA / IE, Klon M5/114.15.2, konjugiert mit Fluoresceinisothiocyanat (FITC) </td><td> EBIOSissenschaft </td><td> 11-5321 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Maus-CD86, Klon GL-1, konjugiertes Allophycocyanin (APC)-Cy7 </td><td> BioLegend </td><td> 105030 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Maus-CD40, Klon 1C10, konjugiert mit APC </td><td> eBioscience </td><td> 17-0401 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Maus-CD209, Klon 5h10, konjugiert mit Biotin </td><td> eBioscience </td><td> 13-2091 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Maus-CD11b, Klon M1/70, konjugiert mit Alexa Fluor 700 </td><td> eBioscience </td><td> 56-0112 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Maus F4/80, Klon BM8, konjugiert mit Phycoerythrin (PE)-Cy7 </td><td> eBioscience </td><td> 25-4801 </td><td></td></tr><tr><td> PE-Texas-Rot konjugierten Streptavidin </td><td> BD Biosciences </td><td> 551487 </td><td></td></tr><tr><td> Sonstiges Zubehör und Reagenzien </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ethanol </td><td> Fisher Scientific </td><td> A405-20 </td><td> Wird als 70% (v / v) </td></tr><tr><td> Komprimiertem CO 2 </td><td> Linweld </td><td> 16000060 </td><td></td></tr><tr><td> 1 ml-Spritze </td><td> BD Biosciences </td><td> 309659 </td><td></td></tr><tr><td> Sovereign 3 ½ &quot;Fr Tom Catcatheter </td><td> Kendall </td><td> 703021 </td><td></td></tr><tr><td> Biosicherheitswerkbank </td><td> NuAire </td><td> Serie 22 </td><td></td></tr><tr><td> Dissection Schere </td><td> Fischer </td><td> 138082 </td><td></td></tr><tr><td> Zange </td><td> Roboz </td><td> RS-8254 </td><td></td></tr><tr><td> PBS, 1x ohne Calcium und Magnesium </td><td> Cellgro </td><td> 21 bis 040-CM </td><td></td></tr><tr><td> 15 ml Zentrifugenröhrchen mit Schraubverschluss </td><td> VWR International </td><td> 21008-216 </td><td></td></tr><tr><td> Sechs-Well-Platten Zellkulturbehandelt </td><td> Costar </td><td> 3516 </td><td></td></tr><tr><td> Kunststoffrohr Racks </td><td> Nalgene </td><td> 5970 </td><td></td></tr><tr><td> Zellschaber 24 cm </td><td> TPP </td><td> 99002 </td><td></td></tr><tr><td> 5 ml Polystyrol Rundboden-Röhrchen </td><td> Falke </td><td> 352008 </td><td></td></tr><tr><td> Pipet-Hilfe-XL </td><td> Drummond </td><td> 4-000-105 </td><td></td></tr><tr><td> 10, 5, und 2 ml-Pipetten </td><td> Fischer </td><td> 13-675 </td><td></td></tr><tr><td> 200 und 10 ul Mikroliterpipetten </td><td> Gilson Pipetman </td><td> F123601 </td><td></td></tr><tr><td> 200 und 10 ul Pipettenspitzen </td><td> Fischer </td><td> 02-707 </td><td></td></tr><tr><td> BD StabilisierendeFixativ </td><td> BD Biosciences </td><td> 338036 </td><td></td></tr><tr><td> Isoton II Diluent </td><td> Beckman-Coulter </td><td> 8546719 </td><td></td></tr><tr><td> Zap-oglobin II-Lysereagenz </td><td> Beckman-Coulter </td><td> 7546138 </td><td></td></tr><tr><td> Coulter Counter Vials Polystyrol </td><td> Beckman-Coulter </td><td> 14310-684 </td><td></td></tr><tr><td> Reagenzgläser </td><td> BD Biosciences </td><td> 352008 </td><td></td></tr><tr><td> Ausrüstung </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Kühlzentrifuge </td><td> Labnet </td><td> 50075040 </td><td></td></tr><tr><td> Befeuchteten Inkubator CO 2 </td><td> NuAire </td><td> Modell Autoflow 8500 </td><td></td></tr><tr><td> FACSCanto Durchflusszytometer </td><td> BD Biosciences </td><td> 338960 </td><td></td></tr><tr><td> Coulter Particle Counter Z1 </td><td> Beckman-Coulter </td><td> WS-Z1DUALPC </td><td></td></tr><tr><td> Sonicator Liquid Processing Equipment mit Mikrospitzen </td><td> Misonix </td><td> Modell Nr. S-4000 </td><td></td></tr></tbody></table>

ernte murine alveolarmakrophagen und auswerten zelluläre aktivierung von polyanhydrid nanopartikel induced

Harvesting Murine Alveolar Macrophages and Evaluating Cellular Activation Induced by Polyanhydride Nanoparticles

Biologisch abbaubare Nanopartikel als vielseitige Plattform für die Konzeption und Umsetzung von neuen intranasale Impfstoffe gegen respiratorische Infektionskrankheiten aufgetaucht. Insbesondere Nanopartikel Polyanhydrid aus der aliphatischen Sebacinsäure (SA), das aromatische 1,6-Bis (p-carboxyphenoxy) hexan (BER), oder die amphiphilen 1,8-Bis (p-carboxyphenoxy) -3,6-dioxaoctan (CPTEG) haben einzigartige Masse und Oberflächenerosion Kinetik 1,2 und kann genutzt werden, um langsam freisetzen funktionelle Biomoleküle (zB Protein-Antigene, Immunglobuline, usw.) sind in vivo 3,4,5 werden. Diese Nanopartikel besitzen auch intrinsische Adjuvans-Aktivität, so dass sie eine ausgezeichnete Wahl für einen Impfstoff-Delivery-Plattform 6,7,8. Um die Mechanismen für die Aktivierung der angeborenen Immunität nach intranasaler Schleimhaut Impfung aufzuklären, muss man beurteilen, die molekularen und zellulären Reaktionen des Antigens pübelnehmend Zellen (APC) verantwortlich für die Initiierung Immunantworten. Dendritische Zellen sind die wichtigsten APCs in leitenden Atemwege vor, während Alveolarmakrophagen (AMɸ) im Lungenparenchym 9,10,11 überwiegen. AMɸ sind hoch effizient bei der Räumung in die Lunge von mikrobiellen Krankheitserregern und Zelltrümmer 12,13. Darüber hinaus spielt dieser Zelltyp eine wertvolle Rolle bei der Beförderung von mikrobiellen Antigenen zu den Lymphknoten, die ein wichtiger erster Schritt bei der Initiation einer adaptiven Immunantwort 9 ist. AMɸ auch zum Ausdruck bringen erhöhte Werte von angeborenen Mustererkennung und Scavenger-Rezeptoren, sezernieren pro-inflammatorischen Mediatoren und prime naiven T-Zellen 12,14. Ein relativ reine Population von AMɸ (z. B. größer als 80%) kann ebenfalls in Lungenspülung für Studie im Labor erhalten werden. Wohnhaft AMɸ von immunkompetenten Tieren geerntet werden einen repräsentativen Phänotyp der Makrophagen, wird encounter die Partikel-basierten Impfstoff in vivo. Hier beschreiben wir die Protokolle verwendet werden, um Ernte und Kultur AMɸ von Mäusen zu untersuchen und die Aktivierung der Makrophagen-Phänotyp nach Behandlung mit Polyanhydrid Nanopartikel in vitro.

Hier beschreiben wir Protokolle zum Ernten von murinen Alveolarmakrophagen, die ihren Sitz angeborenen Immunsystems Zellen in der Lunge und Prüfung ihrer Aktivierung in Reaktion auf Co-Kultur mit Polyanhydrid Nanopartikel.

Ernte Murine Alveolarmakrophagen und Auswerten zelluläre Aktivierung von Polyanhydrid Nanopartikel Induced

Biologisch abbaubare Nanopartikel haben sich als vielseitige Plattform für das Design und die Implementierung neuer intranasaler Impfstoffe gegen respiratorische ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Fähigkeit von Polyanhydrid-Nanopartikeln zu bewerten, gereinigte alveoläre Makrophagen zu aktivieren. Zunächst wird die Trachea der Maus chirurgisch freigelegt und eine Bronchoalveoläre Lavage durchgeführt, um Zellen aus dem Respirationstrakt zu gewinnen. Anschließend werden die alveolären Makrophagen abzentrifugiert, um sie zu isolieren, und über Nacht kultiviert. Es wird dann eine Suspension aus Polyanhydrid-Nanopartikeln hergestellt und den alveolären Makrophagen zugegeben. Die Makrophagen werden inkubiert, um nach 48 Stunden eine Aktivierung zu ermöglichen. Die Expression von Zelloberflächenmarkern wird mittels Durchflusszytometrie analysiert.Die Analyse der Daten ermöglicht die Identifizierung von Formulierungen aus Polly-Anhydrid-Nanopartikeln, die spiegelnde alveoläre Makrophagen aktivieren können. Dieses Metall kann helfen, Fragen in den Bereichen Biomaterialien und Immunologie zu beantworten. Insbesondere können wir Biomaterialien mit intrinsischer Adjuvansaktivität identifizieren, wie durch die Fähigkeit zur Aktivierung der antigenpräsentierenden Zellen – einschließlich alveolärer Makrophagen – belegt wird.Die Idee, diese Methode in unserer Forschung anzuwenden, entstand zunächst, als wir entdeckten, dass eine nanostrukturierte Polyanhydrid-Impfstoffplattform gegen Atemwegserreger einen vollständigen Schutz vor bakterieller Pneumonie bot. In der vorliegenden Arbeit wollten wir die spezifischen Wechselwirkungen der Impfstoffplattform mit Immunzellen der Atemwege untersuchen. Beginnen Sie dieses Verfahren, indem Sie eine getötete Maus auf den Rücken legen.Sprühen Sie die Maus mit 70 % Ethanol ab. Obwohl hier eine sechs bis acht Wochen alte C57BL/6-Maus verwendet wird, kann diese Technik an jeder Mauslinie durchgeführt werden. Lokalisieren Sie das Sternum und führen Sie eine 23-Gauge-Nadel mit einer Ein-Milliliter-Spritze in einem Winkel von 30 Grad zur Bauchseite etwa 50 Millimeter in die Brusthöhle ein. Sammeln Sie dort im Allgemeinen 0,4 bis 1 Milliliter Blut.Bei Durchführung dieses Verfahrens wird es schwierig sein, eine Freigabe für ihre Experimente zu erhalten. Deshalb ist es äußerst wichtig, sorgfältig wie hier gezeigt vorzugehen. Um die Lavage durchzuführen, drehen Sie die Maus auf den Bauch und besprühen Sie sie mit 70 %igem Ethanol.Pinzieren Sie dann die Haut etwa auf halber Höhe der Wirbelsäule mit anatomischen Scheren, die mit 70 % Ethanol sterilisiert wurden. Führen Sie einen kleinen Schnitt durch die Haut durch. Greifen Sie die Haut auf beiden Seiten der Inzision und ziehen Sie in entgegengesetzte Richtungen entlang der kranial-kaudalen Achse der Maus.Wenn die Muskeln und Drüsen des Halses freigelegt sind, vorsichtig das Muskelgewebe durchtrennen. Anschließend mit einer Pinzette das Gewebe in Richtung Anterior des Mäuses ziehen, um den Kehlkopf, die Luftröhre und die Speiseröhre freizulegen.Vermeiden Sie es, die Vena jugularis oder die Arteria carotis zu durchtrennen. Die Luftröhre ist an dem Gewebe mit knorpeligen Ringen um sie herum erkennbar. Greifen Sie mit der Pinzette vorsichtig die Luftröhre an, heben Sie sie leicht an und trennen Sie sie behutsam von der Speiseröhre, die sich auf der dorsalen Seite befindet.Befüllen Sie eine Ein-Kubikzentimeter-Spritze, die mit einem Tomcat-Katheter ausgestattet ist, mit steriler PBS-Lösung. Danach unter einem Winkel von 45 Grad. Führen Sie einen kleinen Schnitt in die Trachea vor den Pinzetten, aber hinter dem Kehlkopf ein.Vermeiden Sie es, die Luftröhre vollständig zu durchtrennen, da dies verhindern würde, dass sie sich in die Körperhöhle zurückzieht. Halten Sie die Luftröhre mit einer Pinzette fest und schieben Sie den Katheter vorsichtig etwa 20 Millimeter in die Luftröhrenschnittstelle hinein. Greifen Sie dann die Luftröhre um den Katheterschlauch herum, um die andere Hand freizubekommen, während gleichzeitig von außen die Brust massiert wird. Verwenden Sie eine Ein-Milliliter-Spritze, die mit dem Katheter ausgestattet ist, um vorsichtig 0,75 Milliliter sterilem PBS bei Raumtemperatur in die Lungen einzuspülen. Danach saugen Sie den PBS vorsichtig wieder in die Spritze zurück. Wiederholen Sie diesen Vorgang dreimal.Trennen Sie die Spritze vom Katheter und geben Sie die Spülflüssigkeit in ein 15-Milliliter-Zentrifugenröhrchen ab. Füllen Sie die Spritze mit 0,75 Millilitern frischem PBS, verbinden Sie die Spritze erneut mit dem Katheter und wiederholen Sie die Spülung. Die Flüssigkeitsrückgewinnung kann unvollständig sein, sodass weniger Volumen als das applizierte Volumen erhalten wird.Wenn Zellen von mehr als einer Maus gesammelt werden sollen. Stellen Sie das 15-Milliliter-Röhrchen mit den gewonnenen Zellen auf Eis, bis alle Lungenlavagevorgänge durchgeführt wurden. Um die Population der alveolären Makrophagen in den gewonnenen Zellen anzureichern, zentrifugieren Sie die Lungenlavageflüssigkeit bei 250 × g für 10 Minuten bei vier Grad Celsius.Unter Verwendung steriler Technik das Überstand in einen geeigneten Abfallbehälter innerhalb eines Biosicherheitswerks abgießen. Den Zellpellet durch vorsichtiges Reiben des Zentrifugenröhrchens an der Oberkante eines Reagenzglasgestells resuspendieren. Ein Milliliter vollständiges Alveolarmakrophagen-Medium hinzufügen, um die Zellen zu resuspendieren und zu zählen.Pipettieren Sie 20 Mikroliter Zellen in 10 Milliliter Isotone Two-Verdünnungslösung in ein Kulturzählföhrchen. Geben Sie drei bis vier Tropfen Zog Globin, zwei lytisches Reagenz in das Föhrchen und invertieren Sie es vorsichtig drei bis vier Mal. Danach laden Sie das Probenröhrchen in einen Coulter-Partikelzähler Z1-Zähler.Stellen Sie sicher, dass der Zähler mit dem Verdünnungsfaktor zwei mal 10 hoch vier programmiert wird, um die Zellkonzentration als Anzahl von Zellen pro Milliliter anzuzeigen. Sobald die Zellkonzentration bestimmt wurde, verdünnen Sie die Zellen auf 2,5 mal 10 hoch fünf pro Milliliter mit vollständigem Alveolarmakrophagen-Medium in einem 15-Milliliter-Röhrchen. Geben Sie anschließend zwei Milliliter der Lösung in jede Vertiefung einer sechswelligen Zellkulturschale. Um die alveolären Makrophagen anzureichern, die Kulturschalen sechs Stunden lang in einem feuchten Inkubator bei 37 Grad Celsius mit einer 5 %igen CO2-Atmosphäre inkubieren. Während der Inkubation heften sich die Makrophagen an den Boden der Vertiefung an; nach der Inkubation vorsichtig den Überstand abpipettieren, wobei darauf geachtet werden muss, die anhaftenden Zellen nicht zu stören. Anschließend die Vertiefungen mit steriler, calcium- und magnesiumfreier PBS spülen.Um nicht-ankereende Zellen und Zelltrümmer zu entfernen, zwei Milliliter vollständiges Alveolarmakrophagen-Medium zu jedem Ansatz geben und die Zellen dann über Nacht bei 37 Grad Celsius inkubieren. Nach diesem Anreicherungsschritt werden etwa 87 % der Zellen positiv für den Makrophagen-Marker CD11b und F4/80 sein.Nachdem die Population der alveolären Makrophagen angereichert wurde, besteht der nächste Schritt des Verfahrens darin, Polyanhydrid-Nanopartikel hinzuzufügen, die zuvor mittels Antis-Lösungsmittel-Nano-Einschließung von Poly-anhydrid hergestellt wurden. Bei diesem Verfahren wird das Polymer in Methylenchlorid gelöst und in Pentan ausgefällt. Wiegen Sie die geeignete Menge an Poly-anhydrid-Nanopartikeln unter Verwendung von sterilisiertem Wägepapier ab.Hier werden 125 Mikrogramm Partikel pro Milliliter Kultur hinzugefügt. Geben Sie die Partikel in ein 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen, resuspendieren Sie die Nanopartikel in der entsprechenden Menge eiskaltem, vollständigem Alveolarmakrophagen-Medium und stellen Sie es auf Eis. Danach sterilisieren Sie die Mikrotip einer Tischsondiergerätspitze.Sprühen Sie es mit 70 % Ethanol ein und wischen Sie es mit einem sterilen Kim-Tuch ab, wobei das Röhrchen auf Eis gehalten wird. Sonifizieren Sie bei 10 bis 20 Joule für 30 bis 45 Sekunden. Überprüfen Sie die Nanopartikelsuspension makroskopisch, falls die Partikel nicht ausreichend dispergiert sind.Stellen Sie die Suspension für eine bis zwei Minuten auf Eis, um sicherzustellen, dass sich die Nanopartikel unterhalb der Glastemperatur des Polymers befinden. Anschließend erneut für 30 bis 45 Sekunden beschallen. Der Zweck des Beschallungsschritts besteht darin, die Nanopartikel ausreichend zu dispergieren, wie es dem 50 50 CCP-Tag entspricht.CPH-Nanopartikel neigen dazu, sich in wässriger Umgebung zu aggregieren. Es können jedoch dennoch einige kleine Aggregate von Nanopartikeln in der Suspension verbleiben. Die Nanopartikelsuspension sollte auf Eis gehalten und sofort verwendet werden, um eine vorzeitige Oberflächenerosion oder Aggregation zu verhindern.Entfernen Sie die Kulturschalen mit den alveolären Makrophagen aus dem Inkubator und stellen Sie sie in den Sicherheitswerkbank. Kippen Sie die Platte, wobei darauf geachtet werden muss, die anhaftenden Zellen nicht zu stören, und pipettieren Sie die Menge an Medium ab, die der Nanopartikelsuspension zugegeben wird. Vortexen Sie die Polyanhydrid-Nanopartikelsuspension kurz und pipettieren Sie anschließend bis zu 0,3 Milliliter der Nanopartikelsuspension in die entsprechenden Vertiefungen.Erneut darauf achten, die anhaftenden Zellen nicht zu stören. Die Partikel setzen sich auf den Boden der Vertiefung und kommen mit den Zellen in Kontakt. Fahren Sie mit den folgenden Vertiefungen und den gewünschten Behandlungsgruppen fort.Stellen Sie positive und negative Kontrollgruppen wie Medium allein und 200 Nanogramm pro Milliliter Lipopolysaccharid in die dafür vorgesehenen Vertiefungen ein und inkubieren Sie 48 Stunden bei 37 Grad Celsius. Nach der Inkubation kann die alveoläre Aktivierung mittels Durchflusszytometrie wie in dem begleitenden Dokument beschrieben beurteilt werden.Alveoläre Makrophagen wurden aus C57BL/6-Mäusen gewonnen und wie in dem Videoartikel beschrieben angereichert, um die zelluläre Aktivierung zu bewerten. 125 Mikrogramm pro Milliliter 50:50 CPT:CPH-Polyanhydrid-Nanopartikel wurden 48 Stunden lang fünf mal 10 hoch fünf angereicherten alveolären Makrophagen pro Milliliter zugesetzt. Die Expression der alveolären Makrophagen-Marker MHC II, CD40, CD86 und SIRPα wurde anschließend mittels Antikörperfärbung und Durchflusszytometrie analysiert, wie in diesem Histogramm dargestellt.Alveoläre Makrophagen, die mit Nanopartikeln inkubiert wurden (angegeben durch die durchgezogene blaue Linie), zeigten eine erhöhte Oberflächenexpression von MHC zwei, einem Molekül, das für die Präsentation von Antigenen an CD vier T-Zellen erforderlich ist, verglichen mit unbehandelten Zellen, wie erwartet. Niedrigere Färbungsintensitäten wurden in den Fluoreszenz-minus-eins-FMO-Kontrollen beobachtet, was darauf hinweist, dass das detektierte Signal nicht auf Autofluoreszenz beruht. Alveoläre Makrophagen, die mit Nanopartikeln inkubiert wurden (angegeben durch die durchgezogene blaue Linie), verstärkten die Expression von CD 40, einem kostimulatorischen Molekül, das für die angemessene Aktivierung von T-Zellen notwendig ist, verglichen mit unbehandelten Zellen.Die Expression eines weiteren T-Zell-Kostimulationsmoleküls, CD86, war ebenfalls nach der Behandlung mit Polyanhydrid-Nanopartikeln über 48 Stunden erhöht. Die Expression von CyaC, einem C-Typ-Lektinrezeptor, der Kohlenhydratmotive erkennt, die auf der Oberfläche von Pathogenen vorkommen, ist auf alveolären Makrophagen nach der Behandlung mit Poly-anhy-Nanopartikeln stark erhöht. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man eine Lungenlavage durchführt, um alveoläre Makrophagen zu gewinnen, wie man diese Zellen kultiviert und wie man sie stimuliert, um die zelluläre Aktivierung dieser Zellen mittels Polyhydro-Nanopartikeln zu messen oder zu bewerten.Bei der Durchführung dieses Verfahrens ist es wichtig, sterile Labortechniken anzuwenden, um eine Kontamination der gewonnenen primären Zellen zu verhindern und um die Einführung von Kontaminanten in die Behandlungen auszuschließen.

harvesting-murine-alveolar-macrophages-evaluating-cellular-activation

Research

Forschung

JoVE Journal

Bioengineering

Biotechnik

Ein Verfahren, um die Fähigkeit der isolierten Maus-Alveolarmakrophagen, um das Wachstum von phagozytierten Aspergillus-Sporen durch konfokale Mikroskopie Steuerung auszuwerten.

Beurteilung der Anti-Pilz-Aktivität von isolierten Alveolarmakrophagen durch konfokale Mikroskopie

Knochenmarkzellen, die mit dem Granulozyten-Makrophagen-Kolonie-stimulierenden Faktor (GM-CSF) kultiviert wurden, erzeugen eine heterogene Kultur, die Makrophagen und dendritische Zellen (DCs) enthält. Diese Methode konzentriert sich auf die Verwendung von MHCII- und Hyaluronan (HA)-Bindung zur Unterscheidung von Makrophagen von den DCs in der GM-CSF-Kultur. Makrophagen in dieser Kultur haben viele Ähnlichkeiten mit Alveolarmakrophagen.

Erzeugung und Identifizierung von GM-CSF Abgeleitet Alveolare ähnlichen Makrophagen und dendritische Zellen aus Knochenmark der Maus

Hier beschreiben wir das Modell und den Ansatz zur Untersuchung der Funktionen von Lungenalveolarmakrophagen bei der Metastasierung von Krebs. Um die Rolle dieser Zellen bei der Metastasierung zu demonstrieren, wurde das syngene (4T1) Modell des Brustkrebses in Verbindung mit der Depletion von Alveolarmakrophagen mit Clodronat-Liposomen verwendet.

Untersuchung der Rolle von Alveolarmakrophagen in Metastasierung von Brustkrebs

Der Gesundheitszustand der Lunge spiegelt sich in der Art und Anzahl der Immunzellen, die in den Bronchiolen der Lunge vorhanden sind. Wir beschreiben eine bronchoalveoläre Lavagetechnik, die die Isolierung und Untersuchung von nichtadhärenten Zellen und löslichen Faktoren aus dem unteren Atemtrakt der Mäuse ermöglicht.

Bronchoalveoläre Lavage von murinen Lungen zur Analyse der entzündlichen Zellinfiltration

Diese Mitteilung beschreibt Methoden zur Isolierung und Kultur der alveolären Makrophagen aus Menschen und murinen Modellen zu Versuchszwecken.

Isolation und In-vitro- Kultur von murinen und menschlichen alveoläre Makrophagen

Hier berichten wir über gemeinsame Methoden für die Analyse der phagocytic Funktion der murinen alveolären Makrophagen und bakterielle Freiraum aus der Lunge. Diese Methoden studieren in-vitro-Phagozytose von Fluorescein Herstellung Perlen und in-vivo Phagozytose von Pseudomonas Aeruginosa Green Fluorescent Protein. Wir beschreiben auch eine Methode für das clearing von p. Aeruginosa bei Mäusen.

Alveolären Makrophagen Phagozytose und Bakterien-Clearance bei Mäusen

Wir beschreiben eine Methode zur Verarbeitung von bronchoalveolarer Spülflüssigkeit und abgestimmtem peripherem Blut von chronisch HIV-infizierten Personen auf antiretrovirale Therapie zur Beurteilung von lungenen HIV-Reservoirs. Diese Methoden führen zum Erwerb von hochreinen CD4-T-Zellen und Alveolar-Makrophagen, die anschließend zur Immunphenotypisierung und HIV-DNA/RNA-Quantifizierungen durch ultraempfindliche Polymerase-Kettenreaktion eingesetzt werden können.

Verarbeitung von Bronchoalveolar Lavage Fluid und Matched Blood für Alveolar Macrophage und CD4+ T-Zell Immunophenotypisierung und HIV Reservoir Assessment

Dieses Manuskript beschreibt ein Protokoll zur Bestimmung, ob die Exposition gegenüber Ozon, einem Kriterium des Luftschadstoffs, die Alveolarmakrophagen-Efferozytose in vivo beeinträchtigt. Dieses Protokoll verwendet häufig verwendete Reagenzien und Techniken und kann an mehrere Modelle von Lungenverletzungen angepasst werden, um Die Auswirkungen auf die Alveolar-Makrophagen-Efferozytose zu bestimmen.

In Vivo Bewertung der Alveolar Makrophagen-Efferozytose nach Ozon-Exposition

Dieses Protokoll bietet Forschern eine schnelle, indirekte Methode zur Messung der TLR-abhängigen NF--B/AP-1-Transkriptionsfaktoraktivität in einer murinen Makrophagenzelllinie als Reaktion auf eine Vielzahl von polymeren Oberflächen und adsorbten Proteinschichten, die die Mikroumgebung des Biomaterials Implantate modellieren.

Ein Makrophagen-Reporter-Zell-Assay zur Untersuchung der toll-like Receptor-vermittelten NF-kB/AP-1-Signalisierung auf adsorbierten Proteinschichten auf polymeren Oberflächen

Präsentiert wird hier ein Protokoll zur primären monozyten Isolation des menschlichen Blutes sowie deren Differenzierung in Makrophagen und dendritische Zellen und die Zusammenstellung mit Epithelzellen zu einem mehrzelligen menschlichen Lungenmodell. Biologische Reaktionen von Kokulturen, die sich aus Immunzellen zusammensetzen, die sich entweder von frisch isolierten oder aufgetauten Monozyten unterscheiden, werden bei Exposition gegenüber proinflammatorischen Reizen verglichen.

Multizelluläres humanes Alveolarmodell bestehend aus Epithelzellen und primären Immunzellen zur Gefahrenbeurteilung

Lernen Sie die Isolierung muriner Alveolarmakrophagen durch Bronchoalveolarlavage und deren Aktivierung durch Polyanhydrid-Nanopartikel. Diese Methode ermöglicht die Analyse zellulärer Immunantworten mittels Durchflusszytometrie.

Ernte Murine Alveolarmakrophagen und Auswerten zelluläre Aktivierung von Polyanhydrid Nanopartikel Induced

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