Name: Bridging the Bio-elektronische Schnittstelle mit Biofabrication (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 38 s
Description: Erfahren Sie die Biofabrication bioelektrischer Filme aus stimuli-responsiven Polysacchariden an vorgespannten Elektroden. Diese Methode ermöglicht die Funktionalisierung mit Proteinen und Zellen für Lab-on-a-Chip-Anwendungen.

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Wir erkennen aus DTRA Mittel für die Unterstützung dieses Manuskripts und aus ONR, DTRA und NSF zur partiellen Unterstützung der zugrunde liegenden Forschung.

1. Alginat Elektrodeposition <ol><li> Schließen Sie eine Stromversorgung zu den individuell gefertigte Elektroden über Patchkabel mit Krokodilklemmen. Ein mit Indium-Zinn-Oxid (ITO) abgedeckt Objektträger wird als Anode wirken (Arbeitselektrode) und Platinfolie wird als Kathode (Gegenelektrode) dienen. Positionieren der Elektroden, so dass die ITO-Oberfläche funktionalisiert werden gegen die Gegenelektrode und entweder vertikal positioniert ist, um in eine Lösung oder horizontal, so daß die Abscheidung auf die Oberfläche enthalten eingetaucht werden. </li><li> Planen ein Alginat Abscheidungslösung durch Mischen von 1% Alginat und 0,5% CaCO 3 (nach Gewicht) in destilliertem Wasser und dann die Lösung Autoklavieren. Es wird empfohlen, ständig rühren die Lösung, wenn nicht in Gebrauch ist. </li><li> Tauchen beide Elektroden in der Abscheidungslösung. Das Alginat verwendet werden kann fluoreszierend mit FluoroSpheres (Invitrogen) tragen, nach Cheng et al. 14, um zu ermöglichen Fluoresce Abbildung des resultierenden Films. </li><li> Tragen Sie eine konstante Stromdichte (3 A / m 2) für 2 Minuten; Spannung wird im Bereich von 2-3 verschieben V. </li><li> Trennen Sie die Elektrode und entfernen Sie die Nicht-Lösung hinterlegt. Vorsichtig spülen Sie den Film mit NaCl (0,145 M) für überflüssig Alginat zu entfernen. </li><li> Inkubieren Sie den Film kurz (~ 1 min) in CaCl 2 (0,1 M), um das Gel zu stärken. Spülen Sie mit NaCl (0,145 M) und Inkubation in einer gewünschten Lösung mit CaCl 2 (1 mM) ergänzt. </li><li> Bild mit einem Fluoreszenzmikroskop (1B). </li></ol> 2. Mitabscheidung Kommunikation Zellpopulationen in Alginat <ol><li> Ein Signal-Sender Zellkultur (W3110 Gew. E. coli), in LB-Medium gewachsen, und ein Signal-Empfänger Zellkultur (MDAI2 + pCT6-LSRR - amp r + pET-DsRed - kan r), in LB-Medium gezüchtet + 50 pg / mL jeweils Kanamycin und Ampicillin, müssen über Nacht ein angebaut werdenRunde für Wachstum auf eine optische Dichte (bei 600 nm) von 1 geimpft. Stellen optische Dichte des Empfängers Zellkultur 0,4-0,6 mit LB vor der Verwendung. </li><li> Vorbereiten einer Abscheidung Lösung von 2% Alginat und 1% CaCO 3 und mischen sich Zellkultur in einem Verhältnis von 1:1 bis zu einer Endkonzentration von 1% Alginat, 0,5% CaCO 3, wobei die Zellen verdünnt auf eine Dichte von etwa der Hälfte das Kultivieren Dichte. </li><li> Mit einem Glas-Objektträger mit zwei ITO-Elektroden durch eine Polydimethylsiloxan (PDMS) und (hergestellt nach Anspruch Sylgard Anweisungen und auf die gewünschte Größe geschnitten) und einer Platin-Gegenelektrode enthalten strukturiert. Schließen Sie das eine ITO-Elektrode an eine Stromversorgung mit dem Platin-wie in Verfahren 1 (Alginat Elektroabscheidung) beschrieben. </li><li> Die Elektroden in einer Lösung, die die Abscheidung Empfängerzellen. Stellen Sie die Stromversorgung auf einen konstanten Strom bei einer Dichte von 3 A / m 2, wobei die Oberfläche Dimension der einzelnen Elektrode definiert ist, auf dem Deposition auftreten wird. </li><li> Anwenden des aktuellen für 2 Minuten, um Co-Abscheidung der Zellen in der Alginat-Matrix zu ermöglichen. </li><li> Spülen der Folie wie in Schritt 1.5 beschrieben. </li><li> Schalten der anodischen Verbindung mit dem zweiten, benachbarten, ITO-Elektrode. </li><li> Wiederholen Sie den Vorgang Deposition (Schritte von 2,4 bis 2,7), aber dieses Mal die Einführung der Lösung, welche die Absender-Zellen. </li><li> Inkubieren Sie die 2-Elektroden-Chip mit abgeschieden Zellen und Calcium-Alginat über Nacht bei 37 ° C in Phosphat-gepufferter Salzlösung (PBS) mit 10% LB-Medium und 1 mM CaCl 2 ergänzt. </li><li> Nach der Inkubation Bildes unter Verwendung eines Fluoreszenz-Mikroskop (2B). </li></ol> 3. Chitosan Elektrodeposition <ol><li> Schließen Sie das Netzteil an den Elektroden über Krokodilklemmen. Eine Gold-beschichteten Silizium-Chip wird als Kathode (Arbeitselektrode) zu handeln und eine Platin-Folie wird als Anode (Gegenelektrode) dienen. Positionieren der Goldelektrode die Oberfläche so thbei er sich gegen die Gegenelektrode und beide entweder vertikal in eine Lösung oder horizontal, so dass die Abscheidungslösung auf der Oberfläche enthalten ist getaucht positioniert werden. </li><li> Bereiten Sie eine Chitosan-Lösung durch Mischen von Chitosan Flocken in Wasser und langsame Zugabe von 2 M HCl zu den Polysacchariden (End-pH 5,6) lösen und sicherstellen, das Verfahren von Meyer et al. 15 zu befolgen. </li><li> Platzieren Sie die Elektroden in eine Chitosan-Lösung (0,8%), Notlaufeigenschaften den gewünschten Bereich für die Abscheidung. Das Chitosan verwendet werden können fluoreszierend markiert werden mit 5 - (und-6)-Carboxyrhodamin 6G-succinimidylester (Invitrogen), nach Wu et al 8, ein Bild des elektrisch abgeschiedenen Films durch Fluoreszenzmikroskopie.. </li><li> Anwenden einer konstanten Stromdichte (4 A / m 2) für 2 Minuten. Die Spannung wird im Bereich von 2-3 zu verschieben V. Berechnen der Stromdichte als Funktion der Goldoberfläche der Arbeitselektrode Elektrode tritt in den Deposition Lösung. </li><li> Spülen Sie die Elektrode mit VE-Wasser für überflüssig Chitosan zu entfernen. Der Chip kann in Wasser oder PBS (10 mM, pH 7,0) gespeichert werden. </li><li> Bild mit einem Fluoreszenzmikroskop (3C). </li></ol> 4. Elektrochemische Transduktion mit einem funktionalisierten Chitosanfolie <ol><li> Codeposit Chitosan und Glucose-Oxidase (GOx) aus einer Lösung (1% Chitosan, 680 U / ml GOx, pH 5,6) bei einer Stromdichte von 4 A / m 2 auf einer strukturierten Elektrode nach der Prozedur 3 (Chitosan Elektrotauchlackier). Ein Film in Chitosan GOx eingeschlossen erzeugt. </li><li> Befestigen des behandelten Elektrode mit einem Drei-Elektroden-System nach der Arbeitselektrode, einen Platindraht als Gegenelektrode und eine Ag / AgCl als Referenzelektrode, wie in 4A beschrieben. </li><li> Tauchen der Elektroden in einer Phosphat-Pufferlösung (0,1 M, pH 7,0), NaCl (0,1 M). </li><li> Elektrochemisch Konjugat des Proteins an den ChitosanFilm durch Anlegen einer konstanten Spannung (0,9 V) für 60 mit Chronoamperometrie 10. </li><li> Platzieren Sie den Chip in Phosphatpuffer (0,1 M, pH 7,0) waschen und für 10 Minuten auf einem Schüttler, um nicht umgesetztes NaCl und unkonjugiertes GOx entfernen. </li><li> Der Drei-Elektroden-System wieder befestigen, wie in Schritt 4.2 und Tauchen in eine Lösung von 5 mM Glucose beschrieben. Mit Cyclovoltammetrie, fegen das Potenzial in eine positive Richtung zu 0,7 V. Verwenden Sie eine Kontrolle, die kein Film Glucose-Oxidase als Vergleich für die Höhe der Oxidation in der Sweep gesehen (Abbildung 4B). </li><li> Die Elektroden aus der Glukose-Lösung und Spülen mit Phosphatpuffer (0,1 M, pH 7,0), dann stellen die Elektroden in einen 10-ml-Becherglas mit 8 ml Phosphat-Puffer (0,1 M, pH 7,0). Bias des GOX-funktionalisierten Chip bis 0,6 V als Arbeitselektrode (4C) dienen. </li><li> In Aliquots von Glucose zu dem Puffer (jedes Aliquot erhöht die Glucosekonzentration durch4 mM). </li><li> Generieren einer Standardkurve zwischen dem stationären Strom und der Glukose-Konzentration für die GOx-funktionalisierten Chitosanfilm. </li></ol> 5. Protein-Funktionalisierung mit Enzymatische Vollversammlung <ol><li> Verwenden Sie einen Objektträger aus Glas mit einem benachbarten Gold-und ITO-Elektrode innerhalb eines PDMS gut enthielt gemustert. Bias der Goldelektrode mit einem kathodischen Potential, Chitosan elektrochemisch wie zuvor gezeigt. Spülen Film kurz in DI-Wasser und dann mit einer Pipette PBS. </li><li> Eine Lösung von 3 &amp;mgr; M blau fluoreszierend markierten &quot;AI-2-Synthase&quot; 16 (mit einem DyLight Labeling Kit) + 100 U / ml Tyrosinase in PBS. </li><li> Inkubation für 1 h bei Raumtemperatur, dann spülen Sie den Film mit PBS. </li><li> Anwenden einer anodischen Potential der ITO-Elektrode, um eine Lösung mit Alginat-Deposition-Empfänger-Zellen (wie in den Schritten von 2,1 bis 2,2) hergestellten codeposit. Folgen Sie den Schritten von 2,3 bis 2,6 der Geschäftsordnung 2 (Mitabscheidung Zellpopulationen in Alginat). </li><li> So generierendas übertragene Signal (AI-2) enzymatisch nach dem Spülen die Filme eine Lösung von 500 pM S-Adenosyl-Homocystein (SAH) in PBS mit 10% LB-Medium und 1 mM CaCl 2 ergänzt. Decken Sie die Elektroden, um die Verdampfung der Lösung zu verhindern und über Nacht bei 37 ° C Dies wird für einen Empfänger Zell-Antwort durch Erzeugen eines rot fluoreszierendes Protein (DsRed) zu ermöglichen. </li><li> Aneinander angrenzende Elektroden können mit Fluoreszenzmikroskopie durch Anpassung der Filter können Sie die blaue Fluoreszenz der AI-2-Synthase und rote Fluoreszenz von den Zellen abgeschieden Empfänger (Abbildung 5B) zum Ausdruck zu erfassen abgebildet werden. </li></ol> 6. Repräsentative Ergebnisse Auferlegt elektrischen Signale können lokalisierten Mikroumgebungen (z. B. Felder und Gradienten) in der Nähe einer Elektrodenoberfläche und diese Stimuli können die Selbstorganisation der Polysaccharide wie Alginat und Chitosan als Hydrogel-Film auf der Elektrode abzuscheiden auszulösen. Weil tseine Sol-Gel-Übergang an der Elektrodenoberfläche, der resultierende Film wird electroaddressed, mit entsprechenden Geometrie der Elektrodenstruktur (1B, 3C). Biokompatible Filmen wie Alginat und Chitosan bereitzustellen Oberflächen, die mit biologischen Komponenten zu funktionalisieren. Durch Verwendung von Alginat, haben einzigartige Zellpopulationen an getrennten Adressen wurden abgeschieden. Beweise für ihre electroaddressment basiert auf der Interaktion zwischen Sender und Empfänger-Zell-Population beobachtet. Das Molekül Autoinduktions-2 (AI-2) diffundiert aus den Sender-Zellen und wird von den Zellen aufgenommen Empfänger, was zur Expression des dsRed rot fluoreszierendes Protein (2A). In 2B ist rote Fluoreszenz nur auf der Elektrode, wo Empfänger gerichtet beobachtet. Die Amin-Gruppen an Chitosan das sie in die pH-Ansprechverhalten für die elektrolytische Abscheidung sowie eine geeignete Oberfläche für eine Funktionalisierung erforderlich. Wirausgenutzt Diese einzigartigen Eigenschaften von elektrochemisch Konjugation des Biosensor-Enzym Glucose-Oxidase (GOx), um galvanisch Chitosanfilme. Dieses Enzym liefert dann die Fähigkeit zum Nachweis von Glukose durch eine enzymatische Reaktion (4A) Herstellung von Wasserstoffperoxid, die dann elektrochemisch oxidiert werden kann erzeugen einen Ausgangsstrom. Auf diese Weise kann ein chemisches Signal in elektrische. 4B zeigt, dass transduziert werden Filme, in denen GOx elektrochemisch konjugierten erzeugen ein starkes Signal anodischen in Gegenwart von Glucose, um die Filme, die keine GOx gegenüberliegenden war. Diese Ergebnisse zeigen, GOx auf einen abgeschiedenen Film Chitosan zusammengesetzt werden kann und die katalytische Aktivität beibehalten. Darüber hinaus zeigt 4C ein Schritt-Anstieg im anodischen Strom in Reaktion auf zunehmenden Glucosekonzentrationen hergestellt. Die Standardkurve auch in 4C zeigt, dass die Schritt-Erhöhungen in einer nahezu linearen fas ginghion abhängig von der Menge an Glucose zugegeben. Diese Ergebnisse zeigen, dass das Enzym behält auch seine Empfindlichkeit zu erhöhen Glucosekonzentrationen nach Konjugation mit dem Chitosan-Film. Die untere Nachweisgrenze wurde hier nicht, wie es zuvor für dieses System in der Arbeit von Meyer et gekennzeichnet untersucht. al. Wir haben auch die kovalente Immobilisierung eines Enzyms von Interesse, entwickelt, um eine individuelle Penta-Tyrosin-Tag, zu Chitosan in einer enzymatisch gesteuert enthalten gezeigt. Insbesondere wird dieses Verfahren durch das Enzym Tyrosinase vermittelt. Wie durch die Regelung in 5A (obere), ein Enzym dargestellt, umfasst AI-2-Synthase ein Penta-Tyrosin-Tag. Tyrosinase wirkt auf die Tyrosin-Tag, Oxidieren der Rückstände &quot;Phenolgruppen zu o-Chinonen, die dann kovalent an das Chitosan Amine binden. Der Nachweis von Chitosan Film Funktionalisierung mit dem AI-2-Synthase durch Tyrosinase Montage ist in 5B beobachtet </strong&gt;, wo die AI-2-Synthase wurde fluoreszierend markiert wurde blau. Da AI-2-Synthase erzeugt AI-2 von dem Substrat S-Adenosyl-Homocystein (SAH) in der gleichen Weise wie die Sender Zellen, die Nähe zu abgeschieden Empfänger-Zellen in Gegenwart von SAH auch bewirkt, dass die Empfänger Zellen Fluoreszenz durch Expression dsRed reagieren (5A (niedriger)). Rot-Fluoreszenz der Empfänger-Zellen (5B) zeigt erneut Wechselwirkung zwischen Adressen aufgrund der Diffusion von AI-2 von einem zum anderen und gibt des Weiteren, dass die Enzyme zu Chitosan erhalten Aktivität einmal kovalent gebunden immobilisiert. <img alt="1" src="/files/ftp_upload/4231/4231fig1.jpg" /> Abbildung 1. Alginat Elektroabscheidung. (A) Mechanismus der Elektrotauchlackier Alginat: Als anodisch vorgespannt wird, tritt Wasserelektrolyse an seiner Oberfläche, Erzeugen eines lokalisierten niedrigen pH-Wert. Calciumcarbonat-Teilchen reagieren mit dem Überschussvon Protonen, der Freisetzung von Kalzium-Kationen als die Partikel zu lösen. In Gegenwart von Alginat Polymerketten werden die Ionen in einer &quot;Eierkarton&quot; Netzwerk chelatisierte Bildung eines vernetzten Hydrogels an der Elektrode. Da die Entfernung von der Elektrode zu, weist eine größere Tendenz Alginat in der Lösung aufgrund der reduzierten Gegenwart von Calciumionen bleiben. (B) eine L-förmige gemusterten ITO-Elektrode wurde galvanischen Alginat verwendet. Ein PDMS Vertiefung wurde mit der Elektrode befestigt, um eine grüne Fluoreszenz-markierten Alginat (1%) und CaCO 3 (0,5%) Abscheidungslösung enthalten. Nach galvanischen für 2 min. bei einer Stromdichte von 3 A / m 2 wurde die electroaddressed Alginat-Hydrogel durch Fluoreszenzmikroskopie abgebildet. <img alt="2" src="/files/ftp_upload/4231/4231fig2.jpg" /> Abbildung 2. Mitabscheidung Zellpopulationen. (A) Schematische Darstellung Interaktion zwischen zwei E. coli-Stämme: Eine Population produziert Autoinduktions-2 (AI-2), Ein Signalmolekül wird und als &quot;AI-2 Absender.&quot; Die andere Population, als &quot;AI-2-Empfänger,&quot; ist ein Reporter von AI-2, nach Erhalt der AI-2 durch Diffusion aus dem Absender, so drückt es der rot fluoreszierenden Proteins DsRed. (B) Red Fluoreszenzbild Elektrodenpaar mit dem AI-2 Absender Bevölkerung abgeschieden mit Alginat auf der linken Elektrode und AI-2-Empfänger Bevölkerung abgeschieden mit Alginat auf der rechten Elektrode. Vergrößerte Ansicht zeigt die DsRed-Expression von nur den AI-2-Empfängern. <img alt="Abbildung 3" src="/files/ftp_upload/4231/4231fig3.jpg" /> Abbildung 3. Chitosan Elektroabscheidung. (A) Schematische Darstellung des pH-abhängigen Elektrotauchlackier Chitosan. Die Elektrolyse von Wasser bei einer kathodisch vorgespannt Elektrode verursacht eine lokalisierte hohen pH-Wert (dargestellt durch eine lokalisierte Farbänderung eines pH-Indikator-Farbstoff in der Nähe der Kathode in-Aufnahme), die die Sol-Gel-Übergangstemperatur von Chitosan stimuliert in diesem Bereich. (B) Die Amine präsentieren auf Chitosan geben it pH-responsive Eigenschaften. Oberhalb eines pH-Wert von 6,3 (pKa von Chitosan) die Amine deprotoniert sind, erleichtern den Übergang von seiner protonierten löslicher Form in seine unlösliche Gel-Form. (C) eine strukturierte Goldelektrode wurde galvanischen Chitosan. Die Elektrode kathodisch mit der Stromversorgung verbunden ist, wurde in eine grüne Fluoreszenz-markierten Chitosan (0,8%) Abscheidung getaucht. Nach galvanischen für 2 min. bei einer Stromdichte von 4 A / m 2 wurde die electroaddressed Chitosanfilm durch Fluoreszenzmikroskopie abgebildet. <img alt="Abbildung 4" src="/files/ftp_upload/4231/4231fig4.jpg" /> 4. Elektrochemische Transduktion mit einem funktionalisierten Chitosanfilm. (A) Schematische Darstellung der Aufbau einer Drei-Elektroden-System. Funktionalisierte Chitosan-Film dient als Arbeitselektrode, einen Platindraht als Gegenelektrode und eine Ag / AgCl Referenzelektrode. Elektrochemische Transduktion von Glukose verläuft über the enzymatische und elektrochemische Reaktionen gezeigt, wo hergestellt Wasserstoffperoxid oxidiert und an der Arbeitselektrode detektiert werden. (B) cyclische voltammagram (CV) an der Elektrode mit einem Chitosan-Film, die elektrochemisch konjugierten Glucoseoxidase (GOx) zeigt eine starke anodische Signal in einem 5 mM Glucose-Lösung. Ein Film, der keine GOx diente als Kontrolle und angezeigt kein Signal in der gleichen Lösung. (C) eine Standardkurve zwischen der anodischen Strom und der Glucosekonzentration zeigt eine nahezu lineare Beziehung (jeweils Aliquote erhöhte die Glucose-Konzentration von 4 mM und erhöhte auch die Stromamplitude in der eingesetzten Grafik in einer stufenweise). <img alt="Abbildung 5" src="/files/ftp_upload/4231/4231fig5.jpg" /> Abbildung 5. Protein-Funktionalisierung mit enzymatischen Montage. (A, oben) Schematische Darstellung Tyrosin-Tag &quot;AI-2-Synthase&quot; kovalent an ein Chitosan-Film durch die Tyrosinase Anordnung gebunden. Die Tyrosinreste geworden oxidMeerwasser mit einem O-Chinonen durch Tyrosinase verantwortlich und gegebenenfalls mit Amin-Gruppen auf dem Chitosan-Film zu reagieren, wobei eine kovalente Bindung. (A, unten) Das AI-2-Synthase erzeugt AI-2 von einem Substrat (SAH), die Empfängerzellen berichten die erzeugte KI-2 durch Fluoreszenz dsRed Expression. (B) Fluoreszenz-Bilder, die eine Chitosan-Film auf Gold, mit blau-markierten AI-2-Synthase funktionalisiert. Nebeneinander, werden AI-2-Empfänger-Zellen mit Alginat auf ITO abgeschieden. Nach Zugabe des enzymatischen Substrats zum Brunnen und Inkubation exprimieren die AI-2-Empfänger-Zellen dsRed.

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Produktion und freien Zugang zu diesem Artikel wird von der United States Defense Threat Reduction Agency gefördert.

Unsere Verfahren demonstrieren die galvanische Abscheidung und Funktionalisierung von Biopolymer-Filme, ein Prozess, den wir biofabrication Begriff. Durch Funktionalisierung mit Zellen und Biomolekülen schaffen wir biologischen Oberflächen, die miteinander interagieren und der Elektrode Adresse, die sie auf zusammengesetzt werden. Der erste Schritt, Elektroabscheidung, erfolgt durch die ausgelöst Selbstorganisation von Biopolymeren, Alginat und Chitosan in unseren Studien, in Reaktion auf ein elektrisches Signal. Wie bereits erwähnt ein pH-Gradient erzeugt wird, welches durch die Stromdichte und Abscheidung gesteuert werden, eine zusätzliche Kontrolle über die Folie Abmessungen und Eigenschaften 6,17. Wir haben gefunden, dass eine Vielzahl von Stromdichte und Abscheidung Zeit-Kombinationen für die Elektroden in Tabelle 1 angegeben verwendet werden. Obwohl die Verwendung von anderen Elektroden möglich ist, damit eine Angleichung des Verfahrens erforderlich sein. Im Vergleich mit anderen Techniken der Filmbildung der Prozess der electrodeposition ist einfach, schnell und ohne Reagenz. Es gibt keine Notwendigkeit für eine umfangreiche Repertoire von teurer Ausrüstung und mühsam Zubereitungen. Wichtig ist, dass der Prozess standhalten geringfügige Abweichungen experimentellen und kann einfach gestartet werden, falls ein Problem auftritt. Chitosan ist der Lage, auf einem hohen kathodischen pH-Gradienten durch wichtige funktionelle Eigenschaften verliehen, um es durch einen hohen Gehalt an primären Aminen. Bei hohen pH-Wert (größer als ihre pKa-Wert von ~ 6,3) die Amine deprotoniert und Chitosan wird unlöslich, so dass für die Filmbildung. Nach der Abscheidung wird die Filme bleiben an der Elektrode. Es besteht jedoch die Möglichkeit, sie zu delaminieren, falls gewünscht. Die Filme werden bleiben, solange der pH-Wert der Lösung nicht unterhalb des pKa-Drop stabil. Saure Lösungen protonieren die Amine und die anschließende elektrostatische Abstoßung schwellen des Gels bis 18 löst sich auf. Das heißt, ist die Montage / Demontage Prozeß reversibel on-Demand und allows zum Entfernen der abgeschiedenen Filme und Wiederverwendung von Elektroden. Zweckmäßigerweise ist der pH-Bereich mit dem das Sol-Gel-Übergang erfolgt in der Nähe, in dem die meisten biologischen Komponenten optimal funktionieren. Dies macht das Verfahren ideal für die Beibehaltung der Funktionalität bei der Montage 6. Alginat Filmbildung durch die anodische Elektrolyse von Wasser sowie die Gegenwart von Calciumcarbonat 7 erleichtert. Die lokalisierte niedrigen pH-Wert an der Anode löst das Calciumcarbonat, die zur Freilassung Calciumkationen. Diese Ionen werden von Alginat Chelat bilden ein vernetztes Netzwerk auf der Elektrodenoberfläche. Alginat Filme sind insbesondere reversibel Wettbewerb für Calciumionen aus anderen Chelatbildner wie Citrat oder EDTA, die verwendet werden, um die Filme gelöst werden kann, so dass für die Weiterverwendung der zugrunde liegenden Elektroden. So sind Alginat-Filme relativ zerbrechlich, wenn sie physiologischen Bedingungen ausgesetzt, da Calcium-Ionen sind leicht scavenged aus der Gelmatrix, schwächt seine Struktur und die Förderung der Film Delamination oder Wiederauflösung. Um diese Einschränkung zu überwinden, haben wir einen Inkubationsschritt für den Film in 1 M CaCl 2, um das Gel zu verstärken enthalten. Darüber hinaus empfehlen wir, dass der Film Inkubationslösung (Zelle Medien, etc.) mit CaCl 2 in einer Konzentration von 500 uM-3 mM ergänzt werden. Die zweite wichtige Verfahren ist die Funktionalisierung des abgeschiedenen Films mit relevanten biologischen Komponenten. Dies kann auf zwei Arten, wobei die erste elektrochemische Konjugation, eine Strategie, die für eine schnelle, reagenzienfreien Zusammenbau von Proteinen mit außergewöhnlichen räumlichen Steuerung 10 ermöglicht erzielt werden. Jedoch ist Funktionalisierung auf diese Weise durch die Diffusion von Cl beschränkt - Ionen durch den Film an die Elektrode als auch die Diffusion von HOCl das erzeugte reaktive Zwischenprodukt, zurück in die Lösung. Die Fähigkeit des elektrochemisch aktiven Moleküle passierendurch den Film ermöglicht die Transduktion von chemischen und biologischen Signale in leicht zu lesen elektrische Signale 15. Wir haben Tyrosinase-vermittelte Kupplung als zweite Strategie für die Enzym-Funktionalisierung zu Chitosan gezeigt, nachgewiesen durch kovalente Bindung AI-2-Synthase. Diese Strategie ermöglicht die Funktionalisierung Prozess zu sein kontrollierten und selektiven - abhängig von einer spezifischen Reagenz, Tyrosinase, die discriminately wirkt auf Proteine, die eine Tyrosin-Tag 9. Wir zeigen die Nützlichkeit und die Biokompatibilität von Multi-Adresse Systeme durch die Replikation natürliche Wege auf einem Chip. Zuerst organisierten wir zwei Zellpopulationen (dh &quot;Absender&quot; und &quot;Empfänger&quot;) an unterschiedliche Adressen, und zeigten, dass sie über benachbarte Elektroden interagiert, um AI-2 liefern und erzeugen eine Fluoreszenz-Antwort. Dieses Konzept wurde auch von Cheng et al nachgewiesen. in einem mikrofluidischen Chip 14. Wir haben auch die Interaktion nachgeahmt, sondern verwendetein Enzym, um AI-2 für die Lieferung zu synthetisieren. Auf diese Weise wurde ein synthetisches intrazellulären Weg, AI-2-Synthese durch biofabrication repliziert und funktioniert gut wie wäre es in Lösung. In beiden Fällen zeigt Anordnung einer Vielzahl Adressen der Herausforderung Vermeidung nicht-spezifische Bindung zwischen den Adressen, da jede Abscheidungslösung auf die gesamte Elektrodenanordnung eingeführt werden muss, obwohl Elektrotauchlackier nur an einer Adresse bestimmt. Sanfte und doch gründliches Waschen entfernen können den Großteil der verbleibenden Lösung aus Nicht-lastigen Elektroden, die Verwendung von Strömung in mikrofluidischen Kanälen kann weiter zu minimieren Nicht-Spezifität. Insbesondere für die benachbarten biofabrication von Chitosan und Alginat-Adressen, empfehlen wir Abscheiden der Chitosan-Film zuerst im Anschluß daran mit Biofunktionalisierung Schritte, und danach, galvanisches Alginat. Obwohl wir nicht getan haben, hier haben wir festgestellt, dass die Blockierung der Chitosan-Film mit inerten Proteinen (z. B. milk, BSA, etc.) stark vermindert nicht-spezifische Bindung von unerwünschten Molekülen aminiert Oberfläche der Chitosan. Wir haben bei der Einrichtung Dienstprogramm gemusterten Elektroden, die oft in bioMEMS Geräte gefunden, als die &quot;Blaupausen&quot; für eine komplexe Anordnung von Zellen und Biomolekülen gefunden. Die Verwendung von Chitosan in galvanisch bioMEMS Geräte können weit über die hier genannten Beispiele gehen 19. Wie in Mikrokanälen und auf nicht-planaren Oberflächen 20,15 - Chitosan kann auf verschiedenen Geometrien Mikromaßstab abgeschieden werden. Die Filme können auch mit anderen Polymeren und einer Vielzahl von Proteinen, DNA, Nanopartikel und Redox-aktive Moleküle für neuartige Eigenschaften 21,22,23 modifiziert werden. In bioMEMS Geräte haben Chitosanfilme für Drug-Delivery-, Redox-und Small Molecule-Erkennung, Biokatalyse und Zell-Studien 20,23,24,25 verwendet worden. In ähnlicher Weise wird allgemein als Alginat Zell-Matrix verwendet, das Einfangen für reversible fluidischen Eindämmung erforschtZellpopulationen und in Film-Immunoanalyse 26,27,28. Verbundfolien für das Tissue Engineering-Anwendungen wurden unter Verwendung von Alginat Elektroabscheidung, mit Komponenten wie mit Hydroxyapatit für orthopädische Implantate 29. In unseren Demonstrationen der biofabrication haben wir gezeigt, sowohl die Wechselwirkungen zwischen biologischen Komponenten und über die bio-elektronische Schnittstelle zu sein, in gleicher Weise anwendbar, dies bringt in erreichen die Aussicht auf die Integration aller Arten von Interaktionen für anspruchsvolle Leistung in On-Chip-Signalübertragung. Dementsprechend kann biofabrication die Herstellung von Bauelementen mit reduzierter &quot;minimalen Strukturgrößen&quot;, wie erleichtert der direkte Nachfolger auf die rasante Entwicklung in der Mikrofertigung, wie oft von Unterhaltungselektronik motiviert. Das heißt, sie könnten neben Geräten der nächsten Generation, gehören tatsächlich labilen biologischen Komponenten, die Natur zu exquisiten Montage und Anerkennung Fähigkeiten bei noch kleineren Länge SCA bietenles als Menschen verursachten Systeme. Wir sehen in naher Zukunft Anwendungen in der instrumentellen Analytik, Umwelt-Sensoren, und sogar biokompatiblen Implantaten.

<table border="1"><tbody><tr><td> Name der Komponente </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Power Supply </td><td> Keithley </td><td> SourceMeter 2400 </td></tr><tr><td> Drei Elektrode Potentiostaten </td><td> CH Instruments </td><td> Potentiostat / Galvanostat 600D </td></tr><tr><td> RE-5B Ag / AgCl-Referenzelektrode mit Flexible Anschluss </td><td> BASI </td><td> MF-2052 </td></tr><tr><td> Gold-beschichteten Silizium-Wafer, 500um Si, Cr 12nm, 120nm Au, SiO 2 zur Isolierung </td><td> individuell gefertigter </td><td></td></tr><tr><td> Indium-Zinn-Oxid beschichteten Objektträger, rechteckig, 8-12 Ohm Widerstand </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 578274 </td></tr><tr><td> Platinum Blatt / Folie (0,002 in) </td><td> Surepure Chemetals </td><td> 1897 </td></tr><tr><td> Slim Line 2 &quot;Krokodilklemmen </td><td> RadioShack </td><td> 270-346 </td></tr> &lt;tr&gt; <td> Multi-Stacking Banana Plug Patch Cord </td><td> TSElectronic </td><td> B-36-02 B-24-02 </td></tr><tr><td> SYLGARD 184 Siliconelastomer Kit </td><td> Dow Corning </td><td> NC9020938 Von Fischer </td></tr><tr><td> Fluorescecence Stereomikroskop </td><td> Olymp </td><td> MVX10 MacroView </td></tr><tr><td> CEllSens Norm </td><td> Olymp </td><td> Version 1.3 </td></tr></tbody></table> Tabelle 1. Elektrochemische Abscheidung und Fluoreszenz Visualisierung Ausrüstung. <table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Chitosan mit mittlerem Molekulargewicht </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 448877 </td></tr><tr><td> Salzsäure, ARISTAR. ACS, NF, FCC-Qualität </td><td> VWR </td><td> BDH3030 </td></tr><tr><td> Natriumhydroxidlösung. 10.00N </td><td>VWR </td><td> VW3247 </td></tr><tr><td> Alginsäure, Natriumsalz </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 180947 </td></tr><tr><td> Multifex-MM Gefällte Calciumcarbonat, 70-nm-Partikel </td><td> Speciality Minerals Inc. </td><td> 100-3630-3 </td></tr></tbody></table> Tabelle 2. Chitosan und Alginat-Lösung Reagenzien. <table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Calciumchlorid-Dihydrat </td><td> JT Baker </td><td> 0504 </td></tr><tr><td> Natriumchlorid, Certified ACS kristallinen </td><td> Fischer Wissenschaftlich </td><td> S271 </td></tr><tr><td> Einbasischem Kaliumphosphat, wasserfrei </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P9791 </td></tr><tr><td> Dibasisches Kaliumphosphat, wasserfrei </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P3786 </td></tr><tr><td> Phosphate Buffered Saline </td><td> Sigma- Aldrich </td><td> P4417 </td></tr></tbody></table> Tabelle 3. Andere Lösungskomponenten und Puffer-Reagenzien. <table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Unternehmen / Quelle </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Glucose-Oxidase aus Aspergillus niger </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G2133 </td></tr><tr><td> Tyrosinase aus Pilzen </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T3824 </td></tr><tr><td> LB-Brühe, Miller (granuliert) </td><td> Fischer Scientific </td><td> BP9723-2 </td></tr><tr><td> &quot;AI2-Synthase&quot; (HGLPT) </td><td> Lab Lager 16 </td><td></td></tr><tr><td> W3110 Wildtyp-Zellen </td><td> Lab Lager 30 </td><td></td></tr><tr><td> MDAI2 + pCT6-LSRR - amp r + pET- <em&gt; dsRed - kan r Zellen </td><td> Lab Lager 30 </td><td></td></tr><tr><td> FluoroSpheres: 1 &amp;mgr; Durchmesser, Ex / Em: 505/515 </td><td> Invitrogen </td><td> F8765 </td></tr><tr><td> 5 - (und-6)-Carboxyrhodamin 6G-succinimidylester, Ex / Em: 525/560 </td><td> Invitrogen </td><td> C-6157 </td></tr><tr><td> DyLight Antikörpermarkierung Kit, 405 </td><td> Thermo Scientific </td><td> PI-53.020 </td></tr></tbody></table> Tabelle 4. Enzyme, Zellen und anderen Reagenzien Funktionalisierung.

bridging the bio-elektronische schnittstelle mit biofabrication

Bridging the Bio-Electronic Interface with Biofabrication

Fortschritte in der Lab-on-a-Chip-Technologie versprechen, um sowohl Forschung und Medizin durch niedrigere Kosten, bessere Empfindlichkeit, Portabilität und einen höheren Durchsatz zu revolutionieren. Die Einbeziehung der biologischen Komponenten auf biologische mikro-elektromechanische Systeme (bioMEMS) hat ein großes Potenzial für die Erreichung dieser Ziele dargestellt. Mikrofabrizierte elektronische Chips ermöglichen eine Mikrometer-Skala Features sowie eine elektrische Verbindung für Sensoren und Schaltfunktionen. Funktionelle biologischen Komponenten geben dem System die Fähigkeit zum spezifischen Nachweis von Analyten, enzymatischen Funktionen und Whole-Cell-Funktionen. Standard-Mikrofabrikation Prozesse und bio-analytische Techniken haben seit Jahrzehnten erfolgreich in den Computer und biologische Industrie genutzt, beziehungsweise. Deren Kombination und Schnittstellen in einem Lab-on-a-Chip-Umgebung, jedoch bringt neue Herausforderungen. Es ist ein Aufruf für Techniken, die eine Schnittstelle zwischen der Elektrode und biologischen Kompo aufbauen könnenHNO, der mild ist und leicht herzustellen und Muster. Biofabrication, hier beschriebene, ist ein solcher Ansatz, der viel versprechend für seine einfach zu montieren Einbeziehung von biologischen Komponenten mit Vielseitigkeit in den On-Chip-Funktionen, die aktiviert sind gezeigt hat. Biofabrication nutzt biologische Materialien und biologischen Mechanismen (self-assembly, enzymatische Montage) für Bottom-up-hierarchischen Aufbau. Während unseren Labors, diese Konzepte in vielen Formaten 1,2,3 unter Beweis gestellt haben, hier zeigen wir die Montage auf Elektroabscheidung von mehreren Anwendungen des Signal-basierten Interaktionen gefolgt basiert. Die Anordnung besteht aus der elektrolytischen Abscheidung von biokompatiblen stimulierbaren Polymerfilmen auf Elektroden und ihre anschließende Funktionalisierung mit biologischen Komponenten wie DNA, Enzymen oder lebenden Zellen 4,5. Elektrochemische nutzt die pH-Gradienten an der Oberfläche eines vorgespannten Elektrode aus der Elektrolyse erzeugtWasser 6,7,. Chitosan und Alginat sind auf äußere Reize reagieren biologischen Polymeren, die in Hydrogelfilme Selbstorganisation als Reaktion auf elektrische Signale auferlegten 8 ausgelöst werden können. Die Dicke dieser Hydrogele durch den Umfang, in dem der pH-Gradient erstreckt sich von der Elektrode bestimmt. Diese lassen sich über unterschiedliche Stromdichten und Ablagerung mal 6,7 sein. Dieses Protokoll wird beschrieben, wie Chitosanfilme abgelegt werden und die kovalente Bindung biologischen Komponenten des starken primären Aminogruppen auf dem Film entweder durch enzymatische oder elektrochemische Methoden 9,10 funktionalisiert. Alginat-Filme und deren Einschluss von lebenden Zellen wird auch 11 angesprochen werden. Schließlich ist die Anwendbarkeit biofabrication anhand von Beispielen der Signal-Interaktion, einschließlich chemischer Elektrisch-, Zell-Zell-, sowie Enzym-zu-Zell-Signalübertragung gezeigt. Sowohl das galvanischeund Funktionalisierung kann unter nahezu physiologischen Bedingungen ohne Reagenzien durchgeführt werden und somit ersparen labilen biologischen Komponenten aus rauen Bedingungen. Darüber hinaus haben beide Chitosan und Alginat lange für biologisch-relevante Zwecke 12,13 benutzt worden. Insgesamt kann biofabrication, ein schnelles Verfahren, die einfach auf einem Tischgerät durchgeführt werden kann, zum Erstellen Mikrometerbereich Muster der funktionellen biologischen Komponenten auf Elektroden verwendet werden und kann für eine Vielzahl von Lab-on-a-Chip eingesetzt werden.

Dieser Artikel beschreibt eine biofabrication Ansatz: Abscheidung von stimulierbaren Polysacchariden in Gegenwart des vorgespannt Elektroden, biokompatible Folien, die mit Zellen oder Proteine ​​funktionalisiert werden können, zu schaffen. Wir zeigen eine Tisch-Strategie für die Generation der Filme sowie ihre grundlegenden Verwendungen für die Erstellung interaktiver Oberflächen biofunktionalisierten für Lab-on-a-Chip-Anwendungen.

Bridging the Bio-elektronische Schnittstelle mit Biofabrication

Fortschritte in der Lab-on-a-Chip-Technologie versprechen, sowohl die Forschung als auch die Medizin durch geringere Kosten, eine bessere Sensitivität, Portabilität und ... zu revolutionieren.

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, biopolymerische Filme elektrisch abzuscheiden und sie mit biologischen Komponenten wie Proteinen und Zellen zu funktionalisieren. Die Elektroabscheidung wird erreicht, indem man den lokal auftretenden pH-Wert-Wechsel an einer vorgespannten Elektrode in Kombination mit einer pH-empfindlichen Polysaccharidlösung nutzt. Nach Auswahl einer kathodischen oder anodischen Abscheidungsstrategie wird die Elektrode vorgespannt, um einen Sol-Gel-Übergang auszulösen, der einen dünnen Film erzeugt, dessen Muster durch die Elektrodengeometrie definiert ist.Außerdem können während des Elektrodenabscheidungsprozesses biologische Komponenten wie Proteine und Zellen eingeführt werden. Um die Filme biologisch funktional zu gestalten, werden Ergebnisse erhalten, die zeigen, dass die biologischen Komponenten aufgrund von Fluoreszenzbildgebung in den Filmen lokalisiert sind. Zusätzlich sind die Komponenten funktionsfähig und können mit ihrer Umgebung interagieren, was durch die elektrochemische Detektion enzymatischer Aktivität und die Verwendung von Reporterzellantworten belegt wird.Die Biofabrikation stellt eine neuartige Werkzeugkiste zur Schaffung der Schnittstelle zwischen Biologie und Elektronik bereit. Wir sind der Ansicht, dass ihre Hauptvorteile in der Einfachheit und der Fähigkeit zur Montage unter annähernd physiologischen Bedingungen liegen. Die Biologie beherrscht die Herstellung im Nanomaßstab durch Selbstorganisation und enzymatische Prozesse. Indem wir diese Fähigkeiten nutzen, umgehen wir komplexe, gefährliche und zeitaufwändige Synthesemethoden, wie sie von anderen Montagetechniken eingesetzt werden.Unser gemeinsames Team kam auf die Idee, die BioD-Geräteschnittstelle unter Verwendung biologischer Materialien und Mechanismen aufzubauen, als wir beobachteten, dass sich ihre Drachen in einer elektrodenabscheidbaren Form befinden könnten. Kitan ist ein pH-empfindlicher, filmgebildender Polysaccharid, der elektrische Signale des Geräts erkennen und sich als dünner Film ablagern kann. Nachdem wir erkannt hatten, dass Kitan elektrodenabscheidbar ist, wurde uns bewusst, dass wir auf ein breiteres Spektrum an Werkzeugen aus der Biochemie und Molekularbiologie zugreifen könnten, um eine BioD-Geräteschnittstelle zu konstruieren.Die Anwendung einer solchen Technik erstreckt sich auf Lab-auf-Chip-Systeme, bei denen funktionelle biologische Komponenten erforderlich sind, da sie eine kostengünstige und einfache Möglichkeit bieten, solche Komponenten auf einer Elektrode zu lokalisieren, wo sie lebensfähig bleiben können. Eine visuelle Demonstration dieser Methode ist entscheidend, da ein biofabrizierter Film empfindlich und leicht beschädigt werden kann. Daher ist Vorsicht geboten, um beim Waschen oder Aufbringen des Films nicht zu grob vorzugehen.Da der Film leicht gestört werden könnte. Als Vorteil lässt sich der Elektroden jedoch wiederverwenden, da der Film leicht entfernt werden kann. Um dieses Protokoll zu beginnen, schließen Sie eine Stromversorgung über Steckerkabel mit Krokodilklemmen an die selbstgefertigten Elektroden an.Eine mit Indium-Zinn-Oxid oder ITO beschichtete Glasplatte dient als Anode oder Arbeitselektrode; Platinfoil dient als Kathode oder Gegenelektrode. Positionieren Sie die Elektroden so, dass die zu funktionalisierende Oberfläche des ITO der Gegenelektrode gegenübersteht, wobei die ITO-Oberfläche entweder vertikal zum Eintauchen in die Lösung oder horizontal ausgerichtet ist, sodass die Lösung auf der Oberfläche gehalten werden kann. Bereiten Sie anschließend eine Alginatelektroabscheidungslösung vor, indem Sie 1 % Alginate und 0,5 % Calciumcarbonat in destilliertem Wasser mischen und das Gemisch autoklavieren. Markieren Sie das Alginate anschließend fluoreszenzfarben mit Fluorosphären durch Mischen und Wirbeln.Dies ermöglicht die Fluoreszenz-Bildgebung des resultierenden Films. Nach der Autoklavierung wird die Lösung hergestellt, beide Elektroden in die vorbereitete Abscheidungslösung getaucht und eine konstante Stromdichte von drei Ampere pro Quadratmeter für zwei Minuten angelegt. Die Spannung verschiebt sich im Bereich von zwei bis drei Volt. Nach zwei Minuten wird die Elektrode abgetrennt und die nicht abgelagerte Lösung entfernt. Der Film wird vorsichtig mit Natriumchlorid gespült, um überschüssiges Alginsäure-Natrium zu entfernen.Das Film kurz in 0,1-molarer Calciumchloridlösung inkubieren, um das Gel zu verstärken. Anschließend den Film in der gewünschten Lagerungslösung inkubieren. Danach den Film mittels Fluoreszenzmikroskopie abbilden, bevor eine gleichzeitige Abscheidung erfolgt.Züchten Sie eine Signal sendende Zellkultur und eine Signal empfangende Zellkultur gemäß der schriftlichen Anleitung, die diesem Video beiliegt. Bereiten Sie anschließend eine Depositionslösung aus Alginate und Calciumcarbonat vor. Mischen Sie die Lösung im Verhältnis 1:1 mit jeder Zellkultur, sodass eine Endkonzentration von 1 % Alginate und 0,5 % Calciumcarbonat erreicht wird, wobei die Zellen auf etwa die halbe Kulturdichte verdünnt werden.Verwenden Sie einen Glasobjektträger, der mit zwei ITO-Elektroden ausgestattet ist und von einem Polydimethylsiloxan-Gefäß umgeben ist, sowie eine Platinkounter-Elektrode. Schließen Sie eine ITO-Elektrode und die Platinelektrode an eine Stromquelle an. Tauchen Sie die Elektroden wie zuvor in die Abscheidungslösung, die die Empfängerzellen enthält, ein.Stellen Sie die Stromversorgung auf einen konstanten Strom mit einer Dichte von drei Ampere pro Quadratmeter ein, wobei die Oberflächendimension durch die einzelne Elektrode definiert ist, auf der die Abscheidung erfolgen soll. Leiten Sie den Strom zwei Minuten lang, um eine gleichzeitige Abscheidung der Zellen in der Alginate-Matrix zu ermöglichen. Spülen Sie den Film wie zuvor mit Natriumchlorid ab und wechseln Sie die Stromzuführung zur benachbarten ITO-Elektrode.Wiederholen Sie den Abscheideprozess, diesmal jedoch unter Zugabe der Lösung, die die Senderzellen enthält. Inkubieren Sie den zwei-Elektroden-Chip mit den gemeinsam abgeschiedenen Zellen und Calciumargenat über Nacht bei 37 Grad Celsius in phosphatgepufferter Salzlösung.Versetzt mit 10 % LB-Medium und einem Millimolar Calciumchlorid. Nach der Inkubation das Chip mit einem Fluoreszenzmikroskop abbilden, um die Abscheidung der Chitosan-Elektrode zu beginnen. Die Stromversorgung mit den Elektroden verbinden.Feuer-Alligatorclips. Eine mit Gold beschichtete Siliziumchip fungiert als Kathode und eine Platinfoilie dient als Anode. Positionieren Sie die goldene Elektrodenoberfläche so, dass sie die Gegenelektrode wie zuvor abscheidet.Bereiten Sie eine Kato-Sand-Lösung vor, indem Sie Kato-Sand-Flakes in Wasser geben und langsam zweimolares Salzsäure hinzufügen, um die Polysaccharide aufzulösen. Wie im Text beschriebene Verfahren befolgend, kann die Kato-Sand-Lösung fluoreszenzmarkiert werden, um den auf der Elektrode abgeschiedenen Film mittels Fluoreszenzmikroskopie abzubilden. Anschließend werden die Elektroden vollständig in die Kaizan-Lösung getaucht, wobei der gewünschte Bereich für die Abscheidung vollständig untergetaucht sein muss.Wenden Sie zwei Minuten lang einen konstanten Strom an, der anhand einer Stromdichte von vier Ampere pro Quadratmeter, bezogen auf die Oberfläche der Arbeitselektrode, berechnet wird. In diesem Fall wird ein Strom von 16 Mikroampere auf eine vier Quadratmillimeter große Goldelektrode angelegt; die Spannung verschiebt sich im Bereich von zwei bis drei Volt. Spülen Sie anschließend die Elektrode mit entionisiertem Wasser, um überschüssiges Chitosan zu entfernen. Fahren Sie fort, den Film mittels Fluoreszenzmikroskopie abzubilden, und ko-ponieren Sie Chitosan und Glucose-Oxidase aus einer Lösung bei einer Stromdichte von vier Ampere pro Quadratmeter auf eine strukturierte Elektrode.Gemäß dem Abscheidungsverfahren für Chitosan-Elektroden wird ein Kaizan-Film, der Glucose-Oxidase einschließt, erzeugt. Befestigen Sie die behandelte Elektrode an einem Dreielektrodensystem als Arbeitselektrode, einen Platindraht als Gegenelektrode und Silber, Silberchlorid als Bezugselektrode. Tauchen Sie die Elektroden in eine Phosphatpufferlösung, die Natriumchlorid enthält. Koppeln Sie das Protein elektrochemisch an den Kaizan-Film, indem Sie mittels Chronoamperometrie eine konstante Spannung für 60 Sekunden anlegen, nach der Koppellung.Legen Sie den Chip in Phosphatpuffer und waschen Sie ihn 10 Minuten lang auf einem Rotationserschütterer, um nicht umgesetztes Natriumchlorid und nicht konjugierte Glucose-Oxidase zu entfernen. Befestigen Sie das Dreielektrodensystem erneut und tauchen Sie es in eine Lösung mit fünf Millimolar Glucose. Stellen Sie dann die gewünschten Parameter für die zyklische Voltammetrie ein, um das Potential in positiver Richtung auf 0,7 Volt zu erhöhen.Entfernen Sie die Elektroden aus der Glucoselösung und spülen Sie sie mit Phosphatpuffer ab. Danach platzieren Sie die Elektroden in einem 10-Milliliter-Becher, der acht Milliliter Phosphatpuffer enthält, auf einer magnetischen Rührplatte. Legen Sie am GOX-funktionellisierten Chip 0,6 Volt an, um ihn als Arbeitselektrode zu verwenden.Nachdem die gewünschten Parameter eingestellt wurden, nehmen Sie eine Basislinienaufnahme vor. Geben Sie Aliquote von Glukose zum Puffer hinzu, um die Glukosekonzentration um jeweils vier Millimolar zu erhöhen. In diesem Experiment werden 400-Mikroliter-Aliquote einer 80-Millimolar-Glukoselösung zum Puffer hinzugefügt. Korrelieren Sie das Stromausgangssignal mit jeder Glukosekonzentration, um eine Standardkurve zu erstellen. Zur Durchführung der Protein-Funktionalisierung verwenden Sie einen Glasobjektträger, der mit benachbarten Gold- und ITO-Elektroden in A-P-D-M-S strukturiert ist.Biase die Gold-Elektrode mit einem kathodischen Potential, um Tizen wie zuvor gezeigt elektrochemisch abzuscheiden. Nach dem Spülen des Films füge eine Lösung aus blau fluoreszenzmarkierter Autoinduktor-2-Synthase, angereichert mit Tyrosinase, hinzu. Anschließend einestündige Inkubation bei Raumtemperatur.Spülen Sie den Film wie zuvor mit PBS, und legen Sie ein anodisches Potential an die in eine Alginate-Abscheidungslösung getauchte ITO-Elektrode an, die Empfängerzellen enthält. Fahren Sie mit den gleichen Schritten fort, die unter der Co-Abscheidung von Zellpopulationen in Alginate beschrieben sind, um das übertragene Signal enzymatisch zu erzeugen. Nach dem Spülen der Filme geben Sie eine Lösung aus fünf Mikromolar SAH in PBS, ergänzt mit 10 % LB-Medien und einem Millimolar, hinzu.Calciumchlorid bedeckt die Elektroden, um die Verdunstung der Lösung zu verhindern, und inkubiert über Nacht bei 37 Grad Celsius. Dies ermöglicht eine Antwort der Empfängerzellen durch die Expression des roten fluoreszierenden Proteins DS-Red. Angrenzende Elektroden können mittels Fluoreszenzmikroskopie abgebildet werden, indem die Filter angepasst werden, um die blaue Fluoreszenz des Induktors Two Synthase sowie die rote Fluoreszenz der umprogrammierten Empfängerzellen einzufangen. Angelegte elektrische Signale können lokalisierte Mikroumgebungen nahe der Elektrodenoberfläche erzeugen, und diese Stimuli können die Selbstassemblierung von Polysacchariden wie Alginate und Razan auslösen, die sich als Hydrogelschicht auf der Elektrodenoberfläche ablagern.Da dieser Sol-Gel-Übergang an der Elektrodenoberfläche stattfindet, wird der resultierende Film elektrisch adressiert, wobei seine Geometrie dem Elektrodenmuster entspricht. Mithilfe von Alginate wurden bereits einzelne Zellpopulationen an separaten Adressen gemeinsam abgeschieden. Hinweise auf ihre elektrische Adressierung zeigen sich beim Zusammenspiel zwischen der sendenden und der empfangenden Zellpopulation.Das Molekül Autoinduktor zwei diffundiert aus den Senderzellen heraus und wird von den Empfängerzellen aufgenommen, was zur Expression des DS-red-Fluoreszenzproteins führt. Hier wird rote Fluoreszenz nur an der Elektrode beobachtet, an der die Empfänger adressiert sind. Umgekehrt verleiht das Biosensor-Enzym Glucose-Oxidase die Fähigkeit zur Glukosedetektion durch eine enzymatische Reaktion, bei der Wasserstoffperoxid gebildet wird, das anschließend elektrochemisch oxidiert werden kann, um einen Ausgangsstrom zu erzeugen.Auf diese Weise kann ein chemisches Signal in ein elektrisches umgewandelt werden. Diese Darstellung zeigt, dass Filme, in denen Geo X chemisch konjugiert wurde, ein starkes Antisignal in Gegenwart von Glukose erzeugen, im Gegensatz zu Filmen ohne Geo X. Diese Ergebnisse deuten darauf hin, dass Geo X auf einem abgeschiedenen Zam-Film angeordnet werden kann und dabei katalytische Aktivität behält. Darüber hinaus wird eine stufenförmige Zunahme eines otischen Stroms als Reaktion auf steigende Glukosekonzentrationen erzeugt.Die ebenfalls dargestellte Standardkurve zeigt, dass die Anstiege nahezu linear verliefen und von der Menge des zugegebenen Glukoses abhängig waren. Diese Ergebnisse zeigen, dass das Enzym auch nach der Konjugation an den Razza-Film seine Empfindlichkeit beibehält, wie hier dargestellt; die I-zwei-Synthase enthält ein Penta-Tyrosin-Tag. Tyrosinase wirkt auf das Tyrosin-Tag ein und oxidiert die Phenolgruppen der Reste zu o-Chinonen, die dann kovalent an die Amingruppen von Kazam binden. Ein Hinweis auf die Funktionalisierung des Kazam-Films innerhalb der a-i-zwei-Synthase durch die Tyrosinase-Assembly ist in diesem Fluoreszenzbild zu erkennen, das einen Kaza-Film auf Gold zeigt, wobei die funktionalisierte I-zwei-Synthase blau fluoreszenzmarkiert wurde. Da die I-zwei-Synthase aus dem Substrat SAH I-zwei auf die gleiche Weise wie die Senderzellen erzeugt, führt ihre Nähe zu gekoppelten Empfängerzellen in Gegenwart von SAH ebenfalls dazu, dass die Empfängerzellen fluoreszierend reagieren, indem sie ds exprimieren.Die erneute rote Fluoreszenz der Empfängerzellen zeigt die Wechselwirkung zwischen den Adressen aufgrund der Diffusion von ai-2 von einer zur anderen an und weist zudem darauf hin, dass die an Titanzioxid immobilisierten Enzyme ihre Aktivität nach kovalenter Bindung beibehalten. Nach dem Anschauen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Polysaccharidfilme elektrochemisch abscheidet und wie man sie mithilfe einer Vielzahl von Methoden funktionalisiert. Wir haben die Vielseitigkeit dieser Funktionalisierungsschritte demonstriert, wodurch wir mit einer Vielzahl biologischer Komponenten in weiteren Untersuchungen arbeiten können.Wenn diese Technik einmal beherrscht ist, kann sie in nur wenigen Minuten durchgeführt werden, um gut definierte Filmstrukturen herzustellen, auf die biologische Komponenten präzise aufgepfropft werden können. Auf diese Weise können wir sehr einfach biologisch strukturierte und aktive Oberflächen auf bestimmten Elektroden erzeugen, alles auf organisierte Weise und dennoch in der Lage, komplexe biologische Wechselwirkungen zu erzielen. Nach diesem Verfahren kann sowohl bei der Gestaltung des Elektrodenarrays als auch bei der Auswahl der biologischen Komponenten Kreativität angewendet werden, um die gewünschte Wechselwirkung zu erreichen.Unsere Hoffnung ist, dass die Biofabrikationswerkzeuge zwei unterschiedliche Bereiche – die Biotechnologie und die Mikroelektronik – miteinander verbinden werden, von denen jeder für sich genommen unser Leben revolutioniert hat. Durch die Vernetzung dieser beiden Bereiche glauben wir, neue Lösungen für einige der dringendsten Probleme der Gesellschaft schaffen zu können. Beispielsweise stellen wir uns vor, dass die Biofabrikation einfache und vielseitige Methoden für neuartige Sensormethoden bieten könnte, für die Anwendung direkt am Patienten, die Diagnose von Krankheiten sowie die Detektion biologischer und chemischer Gefahrenstoffe.Ein weiterreichendes Beispiel könnte sein, dass der arterielle Stent der nächsten Generation nicht nur Ihre Arterie offen hält, sondern auch in der Lage ist, Ihr metabolisches Profil zu überwachen.

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