Name: Methoden zur Selbst Integration von Megamolecular Biopolymere auf der Trocknungsluft-LC-Schnittstelle (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-07T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 6 s
Description: Erfahren Sie die Methode zur Selbstintegration von Megamolekularen Biopolymeren an der Trocknungsluft-LC-Grenzfläche. Diese Technik ermöglicht die Visualisierung dynamischer Verhaltensweisen von Biopolymeren im Millimeterbereich.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Diese Arbeit wurde durch Gewährung-in-Hilfe für junge Wissenschaftler (16K17956) vom Ministerium für Bildung, Kultur, Sport, Wissenschaft und Technologie von Japan, der Kyoto-Techno Center und The Mitani Stiftung für Forschung und Entwicklung unterstützt.

1. Instrumente <ol><li> Polarisationsvorrichtung <ol><li> Um eine Polarisationsvorrichtung zu konstruieren, liefert eine Lichtquelle mit einer Halogenlampe, eine Lichtführung, Polarisatoren, ein Probentisch, ein optischer Schiene, Stange steht und eine digitale Spiegelreflexkamera (siehe Abbildung 1C und Liste für die Polarisations Geräteteile). </li></ol></li></ol> 2. Herstellung der Biopolymer-Lösung <ol><li> Polysaccaridlösungen <ol><li> Löst sacran 7 (0,5 g) in reinem Wasser (100 ml) durch Rühren bei ~ 80 ° C für mehr als 12 h. Während der Auflösung, decken sie die Behälter mit Plastikfolie, um Verdunstung zu verhindern. Bereiten einer wäßrigen Lösung von Xanthangummi in der gleichen Weise. </li><li> Kühlen Sie die Lösung auf ~ 25 ° C 0,5 Gew% ige wässrige Lösungen zu erhalten. </li><li> Zentrifugiere die sacran Lösung zu entfernen Verunreinigungen (48.400 xg, 4 ° C, 1 h, 3 timn). </li></ol></li><li> MT - Lösung <ol><li> Vorbereiten eine 0,5 wt% Tubulin - Lösung (1 ml) in einem Britton-Robinson - Puffer (80 mM Piperazin- N, N &#39;-Bis (2-ethansulfonsäure) (PIPES), 1 mM Ethylenglycol-bis (β-aminoethylether) - N, N, N &#39;N&#39; -tetraessigsäure (EGTA) und 5 mM MgCl 2, pH 6,8) auf Eis 8. </li><li> Verwenden 0,5 wt% Tubulin-Lösung (50 ul) und Guanosin-5&#39; - [(α, β) -methyleno] triphosphat (GpCpp) (5 &amp; mgr; l), um eine GpCpp Tubulin enthaltenden Lösung hergestellt (50 ul). bei 37 ° C inkubieren 3 h einen stabilen Kern MT zu erhalten. HINWEIS: Die Rolle der GpCpp ist MT Bildung zu unterstützen und vollständig die Depolymerisation von MT an Tubulin zu unterdrücken. </li><li> Mischen Sie die 0,5 wt% Tubulin-Lösung (950 ul) und die GpCpp enthaltenden Tubulin-Lösung (50 ul) bei ~ 25 ° C für 1 Tag eine stabile 0,5 wt% MT-Lösung zu erhalten. </li></ol></li><li> DNA - Lösung<ol><li> Vorbereiten eine 0,5 wt% DNA-Lösung (1 ml) in Tris-EDTA-Pufferlösung (10 mM Tris, pH 8,0, mit 1 mM EDTA). </li></ol></li><li> Halten Sie die 0,5 wt% Biopolymer Probenlösungen bei 25 ° C für die Trocknung Experiment. </li></ol> 3. Trocknen Experimente und Beobachtung unter Kreuz-polarisiertes Licht <ol><li> Lösungen in einer einseitig offenen Zellen (1A) <ol><li> Geschnitten , um eine Silizium - Platte (siehe Materialliste) in eine geeignete Form mit einer Dicke von 1 mm (Innenmaß von 5-15 mm, 1 mm, und ~ 20 mm; 1A). <ol><li> Zubauen eine einseitig offene Zelle eines Siliziumabstandshalters zusammengesetzt mit Innenmaß von 5-15 mm, 1 mm, und ~ 20 mm und zwei nicht-modifizierten Glas-Objektträger (76 mm × 1 mm × 26 mm). Fix beide Seiten der Zelle mit Doppel Clips im Voraus, um die Probenlösung zu halten austritt. </li></ol></li><li> Langsam jede der 0,5 Gew% Biopolymer-Lösung (100-300 ul) eine ~ 1 mm Porengröße Pipettete Spitze jeder Zelle bei ~ 25 ° C. Entfernen von Luftblasen aus den Zellen unter Verwendung einer Spritzennadel. </li><li> Platzieren Sie die Zellen in einem Ofen mit einer Luft Zirkulator bei 60 ° C unter Atmosphärendruck für die Verdampfung; die Verdampfungsrichtung, die der Schwerkraft entgegengesetzt. </li></ol></li><li> Beobachtungen unter kreuzpolarisiertem Licht (1B-1C) <ol><li> Bietet gerade sichtbares Licht über eine 100 W Halogenlampe mit einer flachen Oberflächen-Lichtquelle über einen breiten Bereich (80 mm x 80 mm). Stellen Sie die Polarisatoren 45 ° und 135 ° , um den Halter (Abbildung 1C). </li><li> Fix die Positionen der Lichtquelle, Polarisatoren, Probentisch, und eine optische Kamera Schiene und Stange steht (1C) verwendet wird . Platzieren Sie den Probentisch zwischen den beiden Polarisatoren (der Abstand zwischen den Polarisatoren sollte ~ 5 cm). Stellen Sie die Kamera ~ 20 cm von dem Probentisch Fokussierung zu ermöglichen. </li><li> Zu bestimmten Zeiten, legen Sie die Proben aus Schritt 3.1.3 zwischen dem polarizers auf der Bühne parallel zu der XZ-Ebene und die Vorrichtung mit einem schwarzen Vorhang bedecken; die eigentliche Vorrichtung ist in 1C gezeigt. </li><li> Fotografieren Sie die Proben durch lineare gekreuzten Polarisatoren eine digitale Spiegelreflexkamera mit einem Standard-Zoomobjektiv (siehe Materialliste). Steuern Sie die Kamera-Einstellungen, wie Brennweite, Computer-Software (siehe Materialliste). </li></ol></li><li> Räumlich-zeitliche Analyse der durchgelassenen Lichtintensität (1C) <ol><li> Um die Änderung des Orientierungsordnungsparameters in dem Trocknungsprozess zu bewerten, sammeln Fotografien stündlich für 24 h. </li><li> Messen Sie die übertragene Lichtintensität entlang der Mittellinie in der Z-Richtung als Grauwert eines Bildverarbeitungsprogramms unter Verwendung von (zB ImageJ). </li><li> Eine Grafik mit dem Grauwert in Abhängigkeit von dem Abstand von der oberen offenen Seite. </li></ol></li><li> Mikroskopische Beobachtungen unter kreuzpolarisierten light (1D) <ol><li> Um die Methoden zu überprüfen, machen mikroskopische Beobachtungen mit einem Polarisationsmikroskop mit einer CCD - Kamera ausgestattet 9. Halten erster Ordnung Verzögerungsplatte im Strahlengang. Kontrollieren Sie die Bedingungen für die Fotos eine PC-Software. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Flemming, H. -C., Wingender, J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20676145">The biofilm matrix.</a> Nat. Rev. Microbiology. 8 (9), 623-633 (2010).</li>
<li>Osada, Y., Kawamura, R., Sano, K. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aOsada%2C+Y+%22Hydrogels+of+cytoskeletal+proteins%22">Hydrogels of cytoskeletal proteins</a>. , Springer. (2016).</li>
<li>Rothemund, P. W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Folding+DNA+to+create+nanoscale+shapes+and+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Folding DNA to create nanoscale shapes and patterns.</a> Nature. 440, 297-302 (2006).</li>
<li>Okeyoshi, K., Okajima, M. K., Kaneko, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Milliscale+self-integration+of+megamolecule+biopolymers+on+a+drying+gas-aqueous+liquid+crystalline+interface%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Milliscale self-integration of megamolecule biopolymers on a drying gas-aqueous liquid crystalline interface.</a> Biomacromolecules. 17 (6), 2096-2103 (2016).</li>
<li>De Gennes, P. G., Prost, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDe+Gennes%2C+PG+%22The+physics+of+liquid+crystals%22">The physics of liquid crystals</a>. , Oxford University Press. Oxford, UK. (1993).</li>
<li>De Gennes, P. G., Brochard-Wyart, F., Quere, D. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDe+Gennes%2C+PG+%22Capillarity+and+wetting+phenomena%3A+drops%2C+bubbles%2C+pearls%2C+waves%22">Capillarity and wetting phenomena: drops, bubbles, pearls, waves</a>. , Springer. (2003).</li>
<li>Okajima, M. K., Kaneko, D., Mitsumata, T., Kaneko, T., Watanabe, J. <a target="_blank" href="http://pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/ma802829x">Cyanobacteria that produce megamolecules with efficient self-orientations.</a> Macromolecules. 42 (8), 3058-3062 (2009).</li>
<li>Okeyoshi, K., Kawamura, R., Yoshida, R., Osada, Y. <a target="_blank" href="http://pubs.rsc.org/en/content/articlelanding/2014/%E2%80%8Btb/c3tb21242d">Thermo- and photo-enhanced microtubule formation from Ru(bpy)32+-conjugated tubulin.</a> J. Mater. Chem. B. 2, 41-45 (2014).</li>
<li>Olympus. Support BX51P. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.olympus-ims.com/microscope/bx51p/">http://www.olympus-ims.com/microscope/bx51p/</a> (2016).</li>
<li>Matsuo, E. S., Tanaka, T. <a target="_blank" href="http://aip.scitation.org/doi/abs/10.1063/1.455115">Kinetics of discontinuous volume-phase transition of gels.</a> J. Chem. Phys. 89, 1695-1703 (1988).</li>
<li>Okajima, K., Mishima, R., Amornwachirabodee, K., Mitsumata, T., Okeyoshi, K., Kaneko, T. <a target="_blank" href="http://pubs.rsc.org/en/Content/ArticleLanding/2015/RA/C5RA18585H">Anisotropic swelling in hydrogels formed by cooperatively aligned megamolecules.</a> RSC Adv. 5, 86723-86729 (2015).</li>
<li>Joshi, G., Okeyoshi, K., Okajima, M. K., Kaneko, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directional+control+of+diffusion+and+swelling+in+megamolecular+polysaccharide+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Directional control of diffusion and swelling in megamolecular polysaccharide hydrogels.</a> Soft Matter. 12, 5515-5518 (2016).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Es war manchmal schwierig, für die Kamera auf der Probe zu konzentrieren, aufgrund der durchgelassenen Lichtintensität zu gering zu sein. In solchen Fällen auf der Bühne eine erweiterte transparenten Kunststoffilm Platzieren half, den Fokus zu arrangieren. Die Begrenzung der beobachtbaren Auflösung war abhängig von der Kameralinse, ~ 10 &amp; mgr; m in diesem Fall. Die beobachtbare Begrenzung der Probendicke, &amp; Delta; y, waren abhängig von der maximalen Lichtintensität der Lampe, ~ 10 mm in diesem Fall. <p class...

Durch die Fokussierung auf den starren, stabförmigen Strukturen von Biopolymeren, dynamisch weichen Materialien wurden für verschiedene Anwendungen, einschließlich Polysaccharids Biofilm Matrices 1 „aktiven Gele“ bestehend aus Zytoskelett - Proteinen 2 und „DNA origami“ gewünschten Formen 3 verwendet. Um zu klären, haben die strukturellen Eigenschaften, viele Strategien wurden untersucht, wie die Transmissionselektronenmikroskopie, Rasterelektronenmikroskopie, Rasterkraftmikroskopie und konfokale Fluoreszenzmikroskopie. Da jedoch diese Methoden meist in einem ausgetrockneten oder statischen Zustand durchgeführt werden, ist es schwierig, die dynamischen Verhalten in der makroskopischen Ebene zu erklären, wie es in der tatsächlichen lebenden Systemen gesehen. Vor kurzem haben wir beobachtet , erfolgreich das dynamische Verhalten von Biopolymeren auf die wässrige Luft-LC - Schnittstelle durch polarisiertes Licht 4. Bei der Visualisierung der Struktur ausgerichtet, während das Trocknen des BiopolymersLösung zeigten die zeitlichen Veränderungen Selbst Integration von Biopolymeren auf der instabilen Luft-LC-Schnittstelle. Hier beschreiben wir ein Protokoll für die Trocknung von LC-Biopolymer-Lösungen an der Luft-LC-Schnittstelle unter Verwendung von polarisiertem Instrumenten. Durch Auswertung des Orientierungsordnungsparameters in der Seitenansicht der Fluidphase in einer offenen einseitiges-Zelle im Gegensatz Phase auf andere Analysen der LC , dass 5 nicht die Ansicht , Trocknen, 6 wurde die LC Dynamik während des Trocknungsvorganges hier untersucht . Die Kombination der Zelle der Verdampfung und die Verwendung von polarisiertem Instrumenten zur makroskopischen Überwachung mit einer kontrollierten Verdampfungsrichtung erlaubt. Darüber hinaus war es möglich , die Trocknungs Aufzeichnungen durch die Konzentration auf den kristallinen Strukturen der adsorbierten Mikrodomänen zu validieren, die durch das Molekulargewicht beeinflußt wurde, Konzentration, usw. Um die Wirksamkeit des Verfahrens wird die Trocknung Pro zu demonstrierenzesse basischer Biopolymeren mit starren Stabformen, wie Polysaccharide, Mikrotubuli (MTs), und DNA, wurden untersucht. Wir haben uns für diese Biopolymere, weil sie typische Beispiele für hierarchische Makromoleküle mit megamolecular Gewichte sind, und ihre intermolekularen Wechselwirkungen ermöglichen ihnen LC Staaten zu bilden.

<table><tbody><tr><td>sacran</td><td>Green Science Materials Inc., Japan</td><td></td><td>Von Aphanothece sacrum. Mw = 1,9 &times 107 g mol-1</td></tr><tr><td>xanthan</td><td>Gum Taiyo Kagaku Co., Japan</td><td>Neosoft XC</td><td>Von Xanthomonas campestris. Mw = 4,7 & mal 106 g mol-1</td></tr><tr><td>tubulin</td><td>Cytoskeleton, Inc., USA</td><td>T240</td><td>Aus dem Schweinehirn.</td></tr><tr><td>GpCpp</td><td>Jena Bioscience, Deutschland</td><td>NU405L</td><td></td></tr><tr><td>Piperazin-N,N&prime; -bis(2-ethansulfonsäure)</td><td>Sigma-Aldrichi, Co. LLC.</td><td>P6757-500G</td><td>PIPES</td></tr><tr><td>Ethylenglykol-bis(&beta;-aminoethylether)-N,N,N',N',n'-tetraessigsäure</td><td>Dojindo Molecular Technologies, Inc.</td><td>342-01314</td><td>EGTA</td></tr><tr><td>MgCl2-6H2O</td><td>Wako Pure Chemical Industries, Ltd.</td><td>135-15055</td><td></td></tr><tr><td>KOH</td><td>Wako Pure Chemical Industries, Ltd.</td><td>162-21813</td><td>Pellet</td></tr><tr><td>DNA</td><td>Sigma-Aldrich, Co. LLC.</td><td>D1626</td><td>Aus Lachshoden Mw = 1,3 & mal 106 Da (~2.000 bp)</td></tr><tr><td>Tris-EDTA-Pufferlösung</td><td>Sigma-Aldrich, Co. LLC.</td><td>T9285-100ML</td><td>10 mM Tris, pH 8,0, mit 1 mM EDTA-Objektträgerglas</td></tr><tr><td></td><td>Matsunami Glass Ind., Ltd., Japan</td><td>S1111</td><td></td></tr><tr><td>Silikonkautschukplatte</td><td>Asone Co.</td><td>6-611-32</td><td>Dicke: 1 mm</td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>Beckman-Coulter, Inc., USA</td><td>Avanti J-25</td><td>bestückt mit einer JA-20</td></tr><tr><td>Rotorlichtquelle</td><td>Sumita Optical Glass, Inc., Japan</td><td>LS-LHA</td><td></td></tr><tr><td>Lichtleiter</td><td>Sumita Optical Glass, Inc., Japan</td><td>GF7.2-1-L1500R-M80 (AAAR-015M)</td><td>80 mm &fach 80 mm</td></tr><tr><td>Halogenlampe</td><td>Ushio Inc., Japan</td><td>JCR 15V150WBN</td><td></td></tr><tr><td>Halter</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>KMH-80</td><td></td></tr><tr><td>Probentisch</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>TARW-25503L</td><td></td></tr><tr><td>Probenhalter</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>SHA-25RO</td><td></td></tr><tr><td>Stab</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>ROU-12-40</td><td></td></tr><tr><td>Pfostenhalter</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>RS-6-40</td><td></td></tr><tr><td>Pfostenhalter</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>RS-12-60</td><td></td></tr><tr><td>Pfostenhalter</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>RS-12-80</td><td></td></tr><tr><td>Pfostenhalter</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>RS-12-130</td><td></td></tr><tr><td>Träger</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>CAA-25LS</td><td></td></tr><tr><td>Kamerahalter</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>CMH-2</td><td></td></tr><tr><td>mittlere optische Schiene</td><td>Sigmakoki, Co., Ltd.</td><td>OBA-500SH</td><td></td></tr><tr><td>Objektivrohr</td><td>Tomytech, BORG</td><td>Objektivrohr BK</td><td>80&phi;, L25 mm&nbsp;</td></tr><tr><td>Lenstube</td><td>Tomytech, BORG</td><td>Lenstube BK</td><td>80&phi;, L50 mm&nbsp;</td></tr><tr><td></td><td>Multiband Tomytech, BORG</td><td></td><td>80&phi; &nbsp;</td></tr><tr><td>V-Platte</td><td>Tomytech, BORG</td><td>V-Platte 60S</td><td></td></tr><tr><td>Plattenhalter</td><td>Viexen, Co.,Ltd.</td><td>Plattenhalter SX</td><td></td></tr><tr><td>EOS Kiss X7i&nbsp;</td><td>Canon Inc., Japan</td><td>8594B001</td><td>mit einem Standard-Zoomobjektiv&nbsp; EFP 18-55 mm</td></tr><tr><td>Fotosoftware</td><td>Canon Inc., Japan</td><td>EOS Utility</td><td></td></tr><tr><td>PC</td><td>Microsoft</td><td></td> Oberflächenpolarisationsmikroskop <td></td></tr><tr><td></td><td>Olympus</td><td>BX51</td><td></td></tr><tr><td>Retardierungsplatte erster Ordnung</td><td>Olympus</td><td>U-TP530</td>&<td>lambda; = 530 nm</td></tr><tr><td>CCD-Kamera</td><td>Olympus</td><td>DP80</td><td></td></tr><tr><td>Fotosoftware</td><td>Olympus</td><td>cellSens Standard</td><td></td></tr><tr><td>Java-basiertes Bildverarbeitungsprogramm</td><td>der National Institutes of Health</td><td>ImageJ</td><td></td></tr></tbody></table>

methoden zur selbst integration von megamolecular biopolymere auf der trocknungsluft-lc-schnittstelle

Methods for the Self-integration of Megamolecular Biopolymers on the Drying Air-LC Interface

Lebende Organismen, die Wasser verwenden, sind immer anfällig in der Umwelt zu trocknen. Ihre Aktivitäten werden angetrieben von Biopolymer-basierten Mikro- und Makrostrukturen, wie in den Fällen gesehen Wasser in Leitbündel bewegten und feuchtigkeitsspendende Wasser in Hautschichten. In dieser Studie haben wir ein Verfahren zur Bewertung der Wirkung von wässrigem flüssigkristallinen (LC) Lösungen von Biopolymeren beim Trocknen zusammen. Als LC Biopolymere megamolecular Gewicht haben, wählten wir Polysaccharide, Cytoskelett-Proteine ​​und DNA zu untersuchen. Die Beobachtung von Biopolymer-Lösungen während zeigt aus der instabilen Luft-LC-Schnittstelle beginnend milliscale Selbstintegration unter polarisiertem Licht trocknet. Die Dynamik der wässrigen LC-Biopolymer-Lösungen kann durch Verdampfen von Wasser aus einer einseitig offenen Zellen überwacht werden. Durch die Analyse der Bilder kreuzpolarisiertem Licht genommen, ist es möglich , die räumlich-zeitlichen Veränderungen des Orientierungsordnungsparameter zu erkennen. DiesVerfahren für die Charakterisierung von nicht nur künstlichen Materialien in verschiedenen Bereichen, aber auch natürliches Leben Geweben nützlich sein. Wir glauben, dass es ein Bewertungsverfahren für weiche Materialien in der biomedizinischen und Umweltbereich bieten.

<html> Verwendung der Vorrichtung wie in 1 gezeigt ist , um die Selbst Integration von Mikrodomäne macrodomain auf einer trocknenden Luftschnittstelle-LC bewertet wurde (2A). Da die erste Demonstration des Trocknungs Experiment wurden zwei Arten von megamolecular Polysacchariden, sacran (M w = 1,9 x 10 7 g mol -1) und Xanthangummi (4,7 x 10 6 g mol -1), wurden verglichen. 2B ...

Ein Verfahren zur Trocknung induzierte Selbst Integration von megamolecular Biopolymeren auf der Luft-Flüssigkeit-kristalline Grenzfläche ist vorgesehen. Diese Methodik wird nützlich sein, nicht nur für das Verständnis der makroskopischen Potentiale von Biopolymeren, sondern auch als ein Bewertungsverfahren für weiche Materialien in der biomedizinischen und Umwelt.

Methoden zur Selbst Integration von Megamolecular Biopolymere auf der Trocknungsluft-LC-Schnittstelle

Living organisms that use water are always prone to drying in the environment. Their activities are driven by biopolymer-based micro- and ...

Das übergeordnete Ziel dieses Experiments besteht darin, den Einfluss der Grenzfläche zwischen trocknender Luft und flüssigkristalliner Phase oder Luft-LC auf die Orientierung megamolekularer Biopolymere wie Polysaccharide, Mikrotubuli und DNA zu bewerten, wobei deren dynamische Verhaltensweisen im Millimetermaßstab sichtbar gemacht werden. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der dispersiven Strukturen zu beantworten, beispielsweise zur Selbstorganisation von Biopolymeren unter Trocknungsbedingungen, unter denen vor etwa 500 Millionen Jahren lebende Organismen erstmals aus dem Wasser an Land kamen. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass Seitenansichten der Probe während des Trocknungsprozesses aufgenommen werden können, ohne dass die Probe in horizontaler Ebene trocknen muss.Um dieses Verfahren zu beginnen, geben Sie 0,5 Gramm Sacran zu 100 Milliliter Wasser hinzu. Bedecken Sie den Behälter mit Plastikfolie und rühren Sie die Lösung etwa 12 Stunden lang bei ungefähr 80 Grad Celsius um. Nachdem die Sacran- und Xanthan-Gummi-Lösungen abgekühlt sind, zentrifugieren Sie die Sacran-Lösung, um Verunreinigungen zu entfernen.Bereiten Sie nun eine 0,5 Gewichtspr

methods-for-self-integration-megamolecular-biopolymers-on-drying-air

Research

Forschung

JoVE Journal

Bioengineering

Biotechnik

Dieses Video demonstriert eine Methode zur Erzeugung einer neuartigen Polymerblasen- oder Polyblasen-basierten Plattform, die eine verzögerte Burst-Freisetzung ermöglicht. Polymere auf Polyesterbasis werden verwendet, um die Polyblasen mit Kern-Schale-Struktur zu bilden, und kleine Moleküle und Antigene können als Fracht verwendet werden.

Eine Technik zur Generierung einer neuartigen Verabreichungsplattform für eine verzögerte Burst-Freisetzung von Molekülen

Das Ziel dieser Untersuchung war es, synthetische Pflanzenzellwandgewebe bilden mit Schicht-für-Schicht-Aufbau Nanocellulose-Fibrillen und isolierte Lignin aus verdünnten wässrigen Suspensionen zusammengebaut. Oberflächenmesstechniken der Quarzkristall-Mikrowaage und Rasterkraftmikroskopie wurden verwendet, um die Bildung der Polymer-Polymer-Nanoverbundmaterial zu überwachen.

Gegen biomimetischen Holz: Hergestellt Freistehende Filme aus Nanocellulose, Lignin und eines synthetischen Polykation

Ein Plasma-induzierte Polymerisation Verfahren für die oberflächeninitiierte Polymerisation zu Polymermembranen beschrieben. Weitere postmodification des gepfropften Polymers mit photochromen Substanzen mit einem Protokoll zur Durchführung von Durchlässigkeitsmessungen auf Licht ansprechende Membranen vorgestellt.

Herstellung der lichtreaktions Membranen durch eine Kombinierte Oberflächen-Pfropfen und Postmodification Prozess

Wir präsentieren ein Protokoll zur Synthese von Janus-Mikrohydrogelen, die vollständig aus dem gleichen Basismaterial, Poly(N-isopropylacrylamid) (PNIPAAm), bestehen, mit einer klar kompartimentierten Struktur, die auf der Phasentrennung einer übersättigten NIPAAm-Monomerlösung basiert. Die synthetisierten Janus-Mikrohydrogele weisen einzigartige Eigenschaften wie anisotrope Thermoreaktionsfähigkeit und organophile/hydrophile Belastbarkeit auf.

Synthese von Poly (<em&gt; N</em&gt; Isopropylacrylamid) Janus Microhydrogels für anisotroper Thermo-Ansprechempfindlichkeit und organophiler / Hydrophilie Belastbarkeit

Zwei- und dreidimensionale superhydrophobe Polymermaterialien werden durch Elektrospinnen oder Elektrospritzen biologisch abbaubarer Polymere hergestellt, die mit einem Polymer mit niedrigerer Oberflächenenergie ähnlicher Zusammensetzung gemischt werden.

Herstellung Superhydrophobe Polymere Materialien für biomedizinische Anwendungen

In dieser Arbeit beschreiben wir die Grenzflächensynthese von konjugierten mikroporösen Polymeren (CMP) auf Opfersubstraten und die Auflösung des Substrats zur Herstellung von freistehenden CMP-Nanomembranen. Darüber hinaus werden wir beschreiben, wie die fragilen Nanomembranen auf andere Substrate übertragen werden können.

Layer-by-Layer-Synthese und Übertragung von Freestanding konjugierte mikroporöse Polymernanomembranen

Wir zeigen eine speicherbare, transportierbar Lipid-Doppelschicht Bildungssystem. Eine Lipid-Doppelschicht-Membran kann mit mehr als 80% Erfolgsquote innerhalb von 1 h gebildet werden, wenn eine gefrorene Membran Vorläufer auf Umgebungstemperatur gebracht wird. Dieses System wird mühsamen Prozesse reduzieren und Know-how mit Ionenkanälen verbunden.

Automatisierte Lipid Bilayer Membrane Formation eines Polydimethylsiloxans Dünnschicht unter Verwendung

Hier präsentieren wir ein Protokoll zu erstellen und visualisieren Sekundärstrukturen (zB Fasern, Ringkernarchitekturen und Nanokugeln) aus Schrauben Polycarbodiimide abgeleitet. Die Morphologie sowohl von Rasterkraftmikroskopie (AFM) und Rasterelektronenmikroskopie (SEM) charakterisiert wurde auf molekulare Struktur, die Konzentration und das Lösungsmittel der Wahl abzuhängen gezeigt.

Selbstaufbau Morphologien Gewonnen aus Helical Polycarbodiimid-Copolymere und deren Triazolderivate

Dieser Artikel beschreibt ein Verfahren zur Optimierung der Größe und Vernetzung Dichte kovalent vernetzt Nanopartikel aus linearen Polyestern mit Anhänger-Funktionalität. Durch maßgeschneiderte Synthese Parameter (Molekulargewicht Polymer, Anhänger Funktionalität Einarbeitung und Vernetzer Äquivalente), kann eine gewünschte Nanopartikel Größe und Vernetzung Dichte für Drug Delivery Anwendungen erreicht werden.

Nanosponge Einstellbarkeit in Größe und Dichte Vernetzung

Die umfassende Nutzung der SUM-Frequenzerzeugung (SFG) kann dazu beitragen, die Kettenkonformationsreihenfolge und den sekundären Strukturwandel an Polymer- und Biomakromolekülschnittstellen aufzudecken.

Grenzflächenphysikalische Strukturen von Polymeren und Biomakromolekülen, die über sum frequency generation Vibrational Spectroscopy aufgedeckt werden

Die kristallisationsgesteuerte Selbstmontage (CDSA) zeigt die einzigartige Fähigkeit, zylindrische Nanostrukturen aus schmalen Längenverteilungen herzustellen. Gezeigt werden die organokatalyzierte ringöffnende Polymerisation von '-Caprolacton und die anschließenden Kettenverlängerungen von Methylmethacrylat und N,N-Dimethylacrylamid. Ein lebendiges CDSA-Protokoll, das monodisperse Zylinder bis zu einer Länge von 500 nm erzeugt, wird skizziert.

Synthese von monodispersen zylindrischen Nanopartikeln durch kristallisationsgesteuerte Selbstmontage von biologisch abbaubaren Blockcopolymeren

Erfahren Sie die Methode zur Selbstintegration von Megamolekularen Biopolymeren an der Trocknungsluft-LC-Grenzfläche. Diese Technik ermöglicht die Visualisierung dynamischer Verhaltensweisen von Biopolymeren im Millimeterbereich.

Methoden zur Selbst Integration von Megamolecular Biopolymere auf der Trocknungsluft-LC-Schnittstelle

Weitere Videos entdecken