Name: Dissection von Larval Zebrabärbling Gonadal Tissue (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 43 s
Description: Lernen Sie die Präparation von Gonadengewebe aus Larven von Danio rerio für molekulare Analysen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung der Geschlechtsentwicklung und genetischer Regulationsmechanismen in vivo.

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Wir danken C Zhang für Fisch Pflege. Diese Arbeit wurde von der National Natural Science Foundation of China (31171074, 31371099 und 31571067 bis GP) und durch das Pujiang Talent Project (09PJ1401900 zu GP) unterstützt.

Zebrafisch-Experimente wurden von der Fudan University Institutional Animal Care und Use Committee genehmigt. Zebrafisch wurde angehoben und gezüchtet nach Standardverfahren 20. 1. Vorbereitungen <ol><li> Kultivieren 17 dpf und 25 dpf larvalen Zebrabärbling <ol><li> Transfer 2 männliche und 2 weibliche erwachsene Zebrabärbling (gesund, 3 bis 6 Monate alt, Labor AB-Stamm) an einer Kreuzung Tank am späten Nachmittag vor der Kreuzung Tag. Trennen Sie die Männchen und Weibchen mit einer Barriere. Am nächsten Morgen, aktualisieren Sie die Tankwasser und entfernen Sie die Barriere, damit sie sich paaren. Sammeln Eier in 100 mm Petrischalen mit 1 bis 2 h nach der Befruchtung. </li><li> Halten Sie etwa 40 Embryonen in einer 100-mm-Platte mit 40 ml Embryo Medium (EM) bei 28,5 ° C während der frühen Entwicklungsphase (4 Tage) und aktualisieren Sie die EM zweimal am Tag. Übertragen Larven auf 1 l-Tanks (40 Larven auf 300 ml Wasser-System) und Futtermittel mit Live-Rotatorien (Vollpension, zweimal täglich) nach 5 dpf.Feed-Live-Artemia statt rotifer Diät nach 10 dpf. Übertragen , um die Fische in rezirkulierenden Wassersystem bei 14 dpf 21. </li><li> Erhöhen larvalen Zebrabärbling im rezirkulierenden Wassersystem bis 17 dpf oder 25 dpf. Sicherstellen, dass der Hell / Dunkel-Zyklus ist 14/10 h und die pH-Wert des Systemwassers beträgt etwa 7,2. Messen Sie die Körperlänge von 17 dpf (5,5 bis 6,8 mm) und 25 dpf (8 bis 11 mm) 22 Larven. </li></ol></li><li> Bereiten 2% Agarplatten für die Dissektion. <ol><li> In 4 g Agar zu 200 ml sterilem Wasser. Das Gemisch wird in einem Mikrowellenofen, bis sie transparent macht. </li><li> Man kühlt die Agarlösung für etwa 15 min, dann gieße es in 60 mm Durchmesser Petrischalen (etwa 1/3 des Volumens der Platte). Lagern Sie die verfestigten Agar-Platten bei 4 ° C. </li></ol></li></ol> 2. Protokoll 1: Präparieren Sie die Keimdrüsengewebe von 17 und 25 dpf Larvae <ol><li> In zerstoßenem Eis in den Tank 17 dpf Larven zu betäuben. übertragen Sie dieanästhesiert Larven in einen 100 mm gekühlt Petrischal mit 30 ml kalter Ringer-Lösung. Halten Sie den inkubiert Fisch in der Lösung des gekühlten Ringers für mindestens 15 min vollständig die Larven zu betäuben. </li><li> Übertragen Sie die Larven zu einer vorgekühlten Agar-Platte mit einem kleinen Plastiklöffel. Tauchen Sie den gesamten Fischkörper in 10 ml gekühlt Ringer-Lösung und sanft liegt auf der Seite. </li><li> Führen Sie die folgenden Operationen im Rahmen der Vision Feld 25X Stereomikroskop. Spannen Sie den Fisch Stamm mit einer Pinzette zur Stabilisierung. Rip den Bauch in Längsrichtung vom Anus zum Herzen mit einem anderen Pinzette. Entfernen sanft die Haut und Muskeln auf der einen Seite des Körpers, um die inneren Organe zu belichten. </li><li> Entfernen Sie die Masse der Organe ventral die Schwimmblase vorsichtig. Vermeiden Sie die auf die Schwimmblase angebracht Gonaden zu beschädigen. </li><li> Schneiden Sie die Verbindung zwischen der Schwimmblase und vorderen Körpern. Ziehen Sie die gesamte Schwimmblase und Gonadengewebe vorsichtig heraus. HINWEIS: In den meisten Fällens, das Gonadengewebe bei 17 dpf enthält Epithelgewebe und protonephridium umgibt. Sie sind nicht leicht voneinander getrennt, aber bei 25 dpf leicht getrennt werden können. Die Gonaden sind auch mit dem Anus verbunden. Eine Kreuzung mit der linken und rechten Gonade zueinander sichtbar sein wird deutlich an den Anus verbunden. </li><li> Verwenden einer Pinzette vorsichtig die Gonadengewebe aus der Schwimmblase zu trennen und die umliegenden Fettgewebe aufzuräumen. </li><li> Unmittelbar überträgt die isolierten Gonadengewebe auf ein vorgekühlte 1,5 ml-Zentrifugenröhrchen, das 200 &amp; mgr; l Ringer-Lösung. Halten Sie das Röhrchen auf Eis, bis alle Gonadengewebe von den Larven getrennt sind. </li><li> Seziert die Gonaden von 25 dpf Larven wie in den Schritten von 2,1 bis 2,7. </li></ol> 3. Protokoll 2: Analysieren Gene Expression der isolierten Gonadengewebe <ol><li> Extrahieren der Gesamt-RNA aus den Geweben der Larven Gonaden. <ol><li> Übertragen Sie die isolierten Gonadengewebe auf ein neues RNase-free 1.5 ml-Röhrchen und Ringer-Lösung entfernen. Je 100 &amp; mgr; l Lyse-Lösung. Vortex, bis das Gewebe vollständig aufgelöst. </li><li> Führen Sie die Gesamt-RNA-Extraktionsverfahren gemäß den Anweisungen des Herstellers. </li><li> In 1/10 Volumen 10x DNase I-Puffer und 1 ul DNase I zu der RNA-Lösung und vorsichtig mischen. bei 37 ° C für 20 min inkubieren. </li><li> In 1/10 Volumen DNase Inaktivierung Reagenz zu der RNA-Lösung. bei 70 ° C für 10 min inkubieren. Messen Sie die Konzentration des Gesamt-RNA mit einem Spektralphotometer. Lagerung bei -20 ° C. </li></ol></li><li> Führen des ersten Strangs der cDNA-Synthese <ol><li> Verwenden eines Oligo (dT) Primer -Linker Erststrang-cDNA-Synthese durchzuführen, dem Protokoll des Herstellers folgend. In 1 bis 2 &amp; mgr; g RNA zu einem Gesamtreaktionsvolumen auf 20 ul. </li><li> Inkubieren der Reaktionslösung für 90 min bei 45 ° C. Beenden Sie die Reaktion durch Erhitzen auf 70 ° C für 5 min. </li><li> 1 &amp; mgr; l RNase H zu der cDNA solution die restlichen RNA zu entfernen. Vorsichtig mischen und Zentrifuge für 10 s bei ~ 13.000 x g. bei 37 ° C für 20 min inkubieren. In 20 ul Nuklease freiem Wasser. Lagern bei -70 ° C. </li></ol></li><li> Führen fluoreszierende quantitative PCR <ol><li> Führen qPCR auf einem Cycler-System mit einem Fluoreszenzfarbstoff. Verwenden Sie die folgenden PCR-Zyklusbedingungen: 35 Zyklen bei 95 ° C für 15 s, Tm-5 ° C für 15 s, 68 ° C für 30 s. Primersequenzen wie folgt verwenden: AMH (fwd: GTGGATGGCAGCAGTACGAC; rev: GCGGAGAGGTGGAAGAGAGAATG), cyp19a1a (fwd: GTCCTGTTGTCTCCTACTGTCG; rev: CATTTGAGTTGAATATGATGCCCTG), nanos3 (fwd: GCTCGGTGTACGCCAAATCAACAT; rev: CCAAGTGAAAACACAACACCAGTGC), Vasa (fwd: ATCGCATAGGAAGAACTGGACGCT; rev: CCAAGTGAAAACACAACACCAGTGC) und β-Actin (fwd: AGTGCGACGTGGACATCCGTA; rev: GCACTTCCTGTGGACGATGGA) 19. </li></ol></li></ol>

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Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen haben.

Der Zebrabärbling hat ein leistungsfähiges Modell worden und ist in der Entwicklung und krankheitsbezogenen Forschung intensiv genutzt. Die Verfahren zur Isolierung von Organen bei erwachsenen Zebrafisch wie Gehirn, Herz, Gonaden und Niere wurden gut dokumentiert , 23, 24, 25. Aufgrund der geringen Größe und dynamische Umgestaltung der Gonadengewebe im Larven Zebrabärbling, Isolierung von Gonadengewebe ist eine anspruchsvolle A...

Das wichtigste weibliche Geschlecht Determinante bei Wild Zebrabärbling Chromosom 4 in dem domestizierten Zebrabärbling (dh gemeinsame Laborstämme) 1 verloren oder verändert werden . Stattdessen haben sie eine polygene System Geschlechtsbestimmung durch Umweltfaktoren wie Temperatur begleitet, Hypoxie, Nahrungsverfügbarkeit und Bevölkerungsdichte. Die detaillierten Mechanismen der Zebrabärbling Geschlechtsentwicklung sind nicht vollständig verstanden. Grundsätzliche Fragen wie bei Zebrabärbling Geschlechtsbestimmung stattfindet, was das primäre Geschlechtsbestimmungssignal (s) ist / sind, und die Gene regulieren , der erste Schritt der Transformation Gonade bleibt 2 beantwortet werden, 3. Im Prozess der Zebrabärbling Geschlechtsentwicklung wurden mehrere wichtige Etappen anerkannt. In der frühen Phase der Entwicklung, ausgehend von 4 HPF (Stunden nach der Befruchtung) Ur-Keimzellen (PGC) unterzieht Spezifikation, die Migration zu Genitalleiste undProliferation. PGC Zahlen und gegenseitige Wechselwirkungen zwischen den Keimzellen und somatischen Zellen sind wichtig für die Gonade Differenzierung 4. Bei 13 dpf (Tage nach der Befruchtung), sind die Gonaden in dem undifferenzierten Stadium. Mit dem 17 dpf, entwickeln die Gonaden in bi-Potential Ovarien in beiden zukünftigen Frauen und Männern. Der Apoptose-abhängiger Übergang von Ovar zu Hoden bei 21 bis 25 dpf beginnen und für mehrere Wochen andauern kann. Von 35 dpf, hat das Geschlecht der Gonaden bestimmt worden , und geschlechtsspezifische Gameten Produktion ist im Gang in beiden Ovarien und Hoden 5, 6, 7. Bis heute diverse Kandidaten-Gene und Mechanismen der Geschlechtsbestimmung vorgeschlagen worden. Proteomics und Transkriptom - Analyse haben viele Gene mit geschlechtsdimorphischen Ausdruck und diese Gene wurden verwendet , um zu studieren Geschlechtsdifferenzierung in Zebrabärbling 8 isoliert, </sup&gt; 9, 10. Zum Beispiel in larvalen Zebrabärbling wird das cyp19a1a Gen im Ovar spezifisch exprimiert , nicht aber in den Hoden 11, 12. Zusätzlich wird AMH Gene schwach in den Ovarialfollikel Granulosa - Zellen exprimiert, aber stark in Testis Sertoli - Zellen 13. Im Gegensatz dazu wird vasa - Gen in den Keimzellen des weiblichen und männlichen Zebrafisches, so dass es eine geeignete Gonade Marker 14, 15 kontinuierlich ausgedrückt. Gonaden - Genexpressionsniveau zu untersuchen ist kritisch , den molekularen Mechanismus der Geschlechtsbestimmung und Differenzierung vor allem in der Bipotential-Ovar Stufe 3, 9 zu verstehen. Jedoch erschwert die geringe Größe der larvalen Zebrabärbling und entsprechend kleiner Gonaden die Isolierung von gonadal Gewebe für die weitere molekulare Analyse. Frühere Studien verwendet sezierten gesamten Rumpfbereich zwischen Opercula und anal Pore 16. Diese Zubereitung, obwohl enthält Gonaden, besteht aus mehreren Geweben und Organen. Alternativ können transgene Tiere mit GFP Gonade spezifische Expression, wie vasa: 17, 18 EGFP wurden Gonadengewebe Trennung über Fluoreszenz - aktivierte Zellsortierung (FACS) und Laser - Capture - Mikrodissektion verwendet. Aber ihre weit verbreitete Anwendung ist begrenzt. Hier beschreiben wir ein einfaches Verfahren Gonadengewebe von Larven Zebrabärbling zu isolieren, auf 17 dpf und 25 dpf. Wir zeigen die Lage der Gonaden mit Bezug auf andere Organe und zu isolieren, die morphologisch intakten Gonaden aus den umgebenden Geweben. Wir zeigen weiter die Gonade spezifische Gene wie vasa und cyp19a1a sind in den isolierten Gonaden hochexprimierten verglichen mit dem Stamm Gewebe durch quantitative PCR (qPCR-Analyse). Dieses Protokoll ermöglicht die Identifizierung, Isolierung, Reinigung und RNA - Amplifikation von Gonaden - spezifische Gene von larvalen Zebrabärbling, wodurch nachfolgende molekulare Analyse von Gonadengewebe 19 ermöglicht.

<table><tbody><tr><td>Zellkulturschale 100 mm</td><td>Corning</td><td>430167</td><td>Für die Inkubation von Embryonen</td></tr><tr><td>20x EM</td><td></td><td></td><td>Für einen benötigten 1 L: 17,5 g NaCl, 0,75 g KCl und 2,9 g CaCl&#183; 2H2O; dann 0,41 g KH2PO4, 0,412 g Na2HPO4 wasserfrei und 4,9 g MgSO4&#183; 7H2O.</td></tr><tr><td>1x EM</td><td></td><td></td><td>20x EM in destilliertem Wasser verdünnen</td></tr><tr><td>AGAROSE G-10</td><td>Gen 121985</td><td></td><td>Zur Vorbereitung der 2% Agarplatten</td></tr><tr><td>Trizol Reagenz</td><td>Invitrogen</td><td>15596-026</td><td>Zur RNA-Isolierung</td></tr><tr><td>Messgerät Glas</td><td>Shen Bo</td><td>250 ml</td><td>Zur Zubereitung der 2% Agarplatten</td></tr><tr><td>Mikrowellenherd</td><td>Midea</td><td>M1-211A</td><td>Zum Erhitzen der AGAR</td></tr><tr><td>Pinzette DUMONT#5INOX</td><td>World Precision Instrument</td><td>500341</td><td>Zum Sezieren</td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Motic</td><td>SMZ168</td><td>Zum Sezieren</td></tr><tr><td>Reinwassergerät</td><td>Millipore</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ringer' Für</td><td></td><td></td><td>1 L benötigte Lösung: 6,78 g NaCl, 0,22 g KCl, 0,26 g CaCl2 und 1,19 g Hepes hinzufügen; dann auf 1 L füllen; Stellen Sie den pH-Wert auf 7,2 ein. Durch Filtration sterilisieren und in einem autoklavierten, durchsichtigen Polycarbonat-Behälter aufbewahren.</td></tr><tr><td>Transferpipette</td><td>Samco</td><td>202, 204</td><td></td></tr><tr><td>Metallbad</td><td>QiLinbeier</td><td></td><td>Modell GL-150</td></tr><tr><td>Mikroskop</td><td>Leica</td><td>M205 FA</td><td>Für</td>Mikrofotografie-Zentrifuge</tr><tr><td></td><td>Eppendorf</td><td>5417R</td><td></td></tr><tr><td>Micro Scale RNA Isolation Kit</td><td>Ambion</td><td>AM1931</td><td>Für die RNA-Isolierung aus Gonadengewebe</td></tr><tr><td>Dnase I</td><td>Sigma</td><td>AMPD1-1KT</td><td>Für den DNA-Verdau in der RNA-Lösung</td></tr><tr><td>RevertAid Erststrang cDNA Synthese Kit</td><td>Thermo Scientific</td><td>#K1631</td><td>Für die Erststrang-cDNA-Synthese</td></tr><tr><td>Rnase H</td><td>Thermo Scientific</td><td>#EN0202</td><td>Zur Verdauung der restlichen RNA in der cDNA-Lösung.</td></tr><tr><td>SYBR Green Realtime PCR Master Mix</td><td>TOYOBO</td><td>QPK-201</td><td>Dieses Produkt ist ein 2x Mastermix auf Basis von Taq DNA-Polymerase für die Echtzeit-PCR und&nbsp; anwendbar für Interkalationsassays mit SYBR Green I.</td></tr><tr><td>Spektralphotometer</td><td>Ne Drop</td><td>OD-2000+</td><td>Messung der Konzentration der Gesamt-RNA</td></tr><tr><td>Mastercycler</td><td>Eppendorf</td><td>AG 22331 Hamburg</td><td>Genexpressions-Profiling</td></tr></tbody></table>

dissection von larval zebrabärbling gonadal tissue

Dissection of Larval Zebrafish Gonadal Tissue

Obwohl wilde Zebrafische ZZ / Z-Chromosom besitzen, haben domestizierten Zebrabärbling das Geschlechtschromosom verloren. Sie nutzen eine polygene Geschlechtsbestimmung System, in dem mehrere Gene verteilt über das gesamte Genom kollektiv die Geschlechtsidentitäten einzelner Fische bestimmen. Derzeit beteiligt sich die Gene Gonadenentwicklung bei der Regulierung und wie sie bleiben schwer arbeiten. Normalerweise Gonadengewebe zu isolieren, ist der erste Schritt der Geschlechtsentwicklungsprozesse zu untersuchen. Hier stellen wir ein Verfahren Gonadengewebe von 17 dpf (Tage nach der Befruchtung) und 25 dpf Zebrabärblingembryonen zu isolieren. Das isolierte Gonadengewebe kann anschließend durch Morphologie und Genexpressionsanalysen untersucht werden.

Dissektionen der Gonaden wurden auf AB-Stamm Larven Zebrabärbling durchgeführt. Abbildung 1 zeigt typischen Gonadengewebe larvaler Zebrabärbling bei 17 dpf und 25 dpf. Zuerst wird die Haut und Muskeln von einer Seite des Bauches geschnitten, um die inneren Organe zu belichten. die Masse der inneren Organe, bleibt die Schwimmblase zusammen mit den Gonaden im Kofferraum nach dem Entfernen. Die Gonaden wurde auf der ventralen Seite der Schwimmblase angebracht (...

Hier präsentieren wir ein Protokoll für Gonadengewebe der Larven Zebrabärbling Isolierung, die Untersuchungen von Zebrabärbling Geschlechtsdifferenzierung und Wartung erleichtert.

Dissection von Larval Zebrabärbling Gonadal Tissue

Although wild zebrafish possess a ZZ/ZW sex-determination system, domesticated zebrafish have lost the sex chromosome. They utilize a polygenic sex ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, gonadale Gewebe von larvalen Zebrafischen zu isolieren und die molekularen Eigenschaften des isolierten Gewebes zu analysieren. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der Geschlechtsentwicklung des Zebrafisches zu beantworten, beispielsweise die Erhaltung von Genen bei der Regulation der Gonadenentwicklung sowie die molekularen Grundlagen der Geschlechtsentwicklung des Zebrafisches. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass gonadale Gewebe von Zebrafischlarven bereits ab 17 Tagen nach der Befruchtung präpariert werden können, um deren zellulären und molekularbiologischen Zustand zu untersuchen.Im Allgemeinen haben Personen, die neu in dieser Methode sind, aufgrund der geringen Größe und der dynamischen Umgestaltung des Gonadengewebes bei larvalen Zebrafischen Schwierigkeiten. Um die Gonadendissektion vorzubereiten, überführen Sie zwei männliche und zwei weibliche adulte Zebrafische auf entgegengesetzte Seiten eines unterteilten Paarungstanks. Am folgenden Morgen erneuern Sie das Tankwasser und entfernen die Trennwand, um die Fortpflanzung einzuleiten.Ein bis zwei Stunden nach der Befruchtung sammeln und übertragen Sie etwa vierzig Eier in eine 100-Millimeter-Platte mit 40 Milliliter Embryomedium oder EM. Inkubieren Sie die Embryonen bei 28,5 Grad Celsius für vier Tage und erneuern Sie das EM zweimal täglich. Nach der Inkubation überführen Sie die Larven in Ein-Liter-Behälter. Fünf Tage nach der Befruchtung, oder DPF, füttern Sie die Fische mit lebenden Rotatorien.Wenn die Larven zehn Tage postfertilization (DPF) erreichen, füttern Sie die Fische mit lebenden Artemia. Danach, bei 14 DPF, überführen Sie die Fische in ein recycelndes Wassersystem. Züchten Sie die Zebrafischlarven bis 17 oder 25 DPF weiter.Dann messen Sie die K&ouml;rperl&auml;nge der Larven am 17. und 25. Tag nach der Befruchtung (DPF). Bereiten Sie zweiprozentige Agarplatten f&uuml;r die Dissektion vor, indem Sie vier Gramm Agar zu 200 Milliliter steriler Wasser hinzuf&uuml;gen. Erhitzen Sie die Mischung in einer Mikrowelle, bis sie durchsichtig wird.Kühlen Sie das Agar 15 Minuten lang ab, dann gießen Sie es in Petrischalen mit einem Durchmesser von 60 Millimetern. Lagern Sie die erstarrten Agarplatten bei vier Grad Celsius. Fügen Sie anästhesierten 17 DPF-Larven zerkleinertes Eis in den Behälter hinzu.Überführen Sie die anesthetisierten Larven in eine gekühlte 100-Millimeter-Petri-Schale mit 30 Milliliter kalter Ringer-Lösung. Inkubieren Sie die Fische mindestens 15 Minuten lang in der gekühlten Ringer-Lösung, um die Larven vollständig zu anästhesieren. Übertragen Sie die Larven mit einem Plastiklöffel auf eine vorab gekühlte Agarplatte.Legen Sie den gesamten Fischkörper in zehn Milliliter kalte Ringer-Lösung und platzieren Sie ihn vorsichtig seitlich. Unter einem Stereomikroskop mit 25facher Vergrößerung verwenden Sie eine Pinzette, um den Fischrumpf zum Zweck der Stabilisierung zu fixieren. Anschließend öffnen Sie mit einer zweiten Pinzette den Bauchraum entlang der Längsachse vom Anus bis zum Herzen.Entfernen Sie anschließend vorsichtig die Haut und die Muskulatur auf einer Körperseite, um die inneren Organe freizulegen. Entfernen Sie dann sorgfältig die großen Organe, die ventral zur Schwimmblase liegen. Achten Sie darauf, den an der Schwimmblase befestigten Gonaden nicht zu beschädigen.Trennen Sie die Verbindung zwischen Schwimmblase und dem inneren Körper. Ziehen Sie anschließend vorsichtig die gesamte Schwimmblase zusammen mit dem Gonadengewebe heraus. Trennen Sie mit einer Pinzette das Gonadengewebe vorsichtig von der Schwimmblase.Und entfernen Sie das umgebende Fettgewebe. Überführen Sie das isolierte Gonadengewebe unverzüglich in ein vorab gekühltes 1,5-Milliliter-Zentrifugenröhrchen, das 200 Mikroliter Ringer-Lösung enthält. Bewahren Sie das Röhrchen auf Eis auf, bis sämtliches Gonadengewebe von den Larven getrennt wurde.Um die Gesamt-RNA aus larvalem Gonadengewebe zu extrahieren, überführen Sie die isolierten Gonaden in ein neues RNase-freies 1,5-Milliliter-Röhrchen und entfernen Sie die Ringer-Lösung. Geben Sie anschließend 100 Mikroliter Lyselösung hinzu und wirbeln Sie das Röhrchen, bis das Gewebe vollständig lysiert ist.Nach der Gesamt-RNA-Extraktion gemäß den Anweisungen des Herstellers ein Zehntel des Volumens DNase-I-Puffer und ein Mikroliter DNase I zur RNA-Lösung hinzufügen und den Inhalt des Röhrchens vorsichtig mischen. Die Probe 20 Minuten lang bei 37 Grad Celsius inkubieren. Danach ein Zehntel des Volumens DNase-Inaktivierungsreagenz zur RNA-Lösung hinzufügen.Die Probe bei 70 Grad Celsius zehn Minuten lang inkubieren. Anschließend die Konzentration der gesamten RNA mithilfe eines Spektrophotometers messen. Für die Synthese des ersten cDNA-Strangs einen Oligo-dT-Linker-Primer und ein bis zwei Mikrogramm RNA verwenden und dabei dem Herstellerprotokoll folgen.Die Reaktion bei 45 Grad Celsius für 90 Minuten inkubieren. Anschließend die Reaktion beenden, indem die Probe bei 70 Grad Celsius für fünf Minuten erhitzt wird. Ein Mikroliter RNase H zur cDNA-Lösung hinzufügen, um die restlichen RNA zu entfernen.Mischen Sie vorsichtig den Inhalt des Reaktionsgefäßes und zentrifugieren Sie die Probe bei etwa 13.000 × g für zehn Sekunden. Inkubieren Sie das Reaktionsgefäß bei 37 °C für 20 Minuten. Geben Sie anschließend 20 µL nukleasefreies Wasser zur Probe hinzu.Und lagern Sie die cDNA bei minus 70 Grad Celsius. Führen Sie abschließend eine qPCR mit fluoreszierendem Farbstoff unter Verwendung der im Textprotokoll aufgeführten Bedingungen und Primer durch. Diese Abbildung zeigt typisches gonadalen Gewebe von larvalen Zebrafischen bei 17 DPF.Das Gonad ist an der Bauchseite der Schwimmblase angeheftet, wie hier zu sehen ist. Bei 17 Tagen postfertilisation (DPF) enthalten die Larven das linke und das rechte Gonad, das durchscheinend ist. In den meisten Fällen sind die Gonaden von epithelialem Gewebe und Protonephridium umgeben.Bei 25 DPF ist die Gonade häufig von Fettgewebe umgeben, und es können große oder kleine Gonaden beobachtet werden. Schließlich wurden zur Analyse der molekularen Eigenschaften des isolierten Gonadengewebes die Expressionslevel der Gonadenmarker amh, cyp19a1a, nanos3 und vasa mittels QPCR untersucht. Die Ergebnisse zeigen signifikante Zunahmen der Marker Gene im Gonadengewebe im Vergleich zum Kontrollgewebe.Wenn man diese Technik einmal beherrscht, kann sie bei ordnungsgemäßer Durchführung innerhalb einer Stunde durchgeführt werden. Bei der Durchführung dieses Verfahrens ist es wichtig, bedingungskonsistente Haltungsbedingungen für die Larven des Zebrabärblings bereitzustellen, da dies entscheidend ist, um die erwarteten Ergebnisse zu erzielen. Nach ihrer Entwicklung ebnete diese Technik den Weg für Forschungen im Bereich der Geschlechtsentwicklung, um die geschlechtsbestimmenden Mechanismen des Zebrabärblings zu erforschen.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man gonadale Gewebe aus larvalen Zebrafischen isoliert.

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Research

Forschung

JoVE Journal

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Dissection von Larval Zebrabärbling Gonadal Tissue

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