Name: Live Cell Imaging von Pilzzellen Modi des Eintrags und subzelluläre Lokalisation der antimykotische Pflanze Defensine zu untersuchen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-12-24T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 39 s
Description: Erfahren Sie Live-Cell-Imaging zur Untersuchung antifungaler Pflanzendefensine in Pilzzellen. Diese Methode zeigt Internalisierung und subzelluläre Lokalisation in Fusarium graminearum und Neurospora crassa.

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Wir bedanken uns bei Dr. R. Howard Berg, Leiter der integrierten Mikroskopie-Einrichtung bei Donald Danforth Plant Science Center, für seine Beratung und Hilfe bei der konfokalen Mikroskopie. Die Autoren haben keinen Interessenkonflikt zu erklären.

1. Kennzeichnung der Defensine mit Fluorophore
<ol>
	<li>Wählen Sie eine Fluorophore, die minimale Auswirkungen auf die antimikrobiellen Eigenschaften sowie die Aufnahme und Lokalisierung von defensin innerhalb der lebenden Zelle hat. Hinweis: Optimale Fluorophor Auswahl richtet sich nach experimentellen Einzelziele. Spektrale und chemischen Eigenschaften, Photostabilität, Größe und Ladung der Fluorophor sollten berücksichtigt werden.</li>
	<li>Label defensin mit den ausgewählten Fluorophor mit einer entsprechenden Peptid labeling Kit von kommerziellen Anbietern erhältlich. Alternativ synthetisieren Sie chemisch Defensine Fluorophore beschriftet. In dieser Studie beschriften MtDef5 defensin mit DyLight550 mit einer kommerziellen Kennzeichnung gemäß des Herstellers Protokoll und Tetramethyl Rhodamin (TAMRA) kit-beschrifteten MtDef4 defensin kommerziell chemisch synthetisiert wurde. Hinweis: Es wird empfohlen, dass chemisch synthetisierten Fluorophor getaggt Peptide (vor allem für kurze Peptide von bis zu 50 Aminosäuren) verwendet werden, da die N - oder C-terminalen Rückstände des Peptids zu gewährleisten minimale Auswirkungen auf das Fluorophor befestigt werden kann seine antimikrobielle Aktivität. Synthese von langen Peptiden mit mehr als drei Disulfid-Bindungen ist eine Herausforderung. In diesem Fall empfiehlt es sich das Peptid mit einer optimalen Fluorophor mit ein geeigneten handelsüblichen Peptid labeling Kit gekennzeichnet werden.</li>
	<li>In-vitro- antimikrobielle Aktivität des beschrifteten defensin testen und bestimmen der minimalen inhibitorischen Konzentration (MIC) gegen die Pilze untersucht werden. Hinweis: In dieser Studie wurde die MIC der DyLight550-MtDef5 und TMR-MtDef4 gegen Neurospora Crassa und Fusarium Graminearumermittelt.</li>
</ol>
(2) Pilzkulturen und Wachstumsmedium
<ol>
	<li>Übertragen Sie Konidien aus einer N. Crassa Lager Kultur schräg Röhrchen mit Vogels Agar mittlere21 und 5 Tage bei Raumtemperatur unter Licht inkubieren.</li>
	<li>Kultur F. Graminearum PH-1-Stamm auf Tellern mit komplette mittlere (CM)22 auf 28 ° c für 5 Tage. Impfen Sie für die Produktion der Konidien 4 (10 mm Durchmesser) Stecker 5 Tage alten Kultur der F. Graminearum PH-1 in 50 mL Carboxymethylcellulose Zellulose (CMC) Medium (15 g Carboxymethylcellulose Zellulose, 1 g Hefeextrakt, 0,5 g MgSO4.7 H2O, 1 g NH 4 KEINE3und 1 g KH2PO4) und Kultur für 4-7 Tage bei 28 ° c in einem Dreh Shaker bei 180 Umdrehungen pro Minute.</li>
</ol>
3. Vorbereitung der Conidial Suspension
<ol>
	<li>F. Graminearum conidial Aufhängung
	<ol>
		<li>Wirbel der Flüssigkultur F. Graminearum und sammle Konidien durch das Filtern von 1,5 mL pilzartige Kultur durch zwei Schichten von Filtermaterial (z. B. Miracloth) zu einem 2 mL Microcentrifuge Schlauch. Zentrifugieren Sie die conidial Aufhängung an 13.226 x g Geschwindigkeit in einem Microcentrifuge für 2 min.</li>
		<li>Verwerfen Sie den Überstand, und fügen Sie 1 mL sterilem Wasser um die Pellets zu waschen.</li>
		<li>Zentrifugieren Sie conidial Aufhängung an 13.226 x g Geschwindigkeit in einem Microcentrifuge für 2 min. verwerfen überstand und Aufschwemmen Sie das Pellet in 1 mL 2 X SFM (synthetische Pilz Medien)23.</li>
		<li>Zählen Sie die Konidien, die mit einem Hemocytometer unter einem Lichtmikroskop.</li>
		<li>Passen Sie die conidial Aufhängung 105 Konidien/mL mit 2 X SFM.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>N. Crassa conidial Aufhängung
	<ol>
		<li>Eine kleine Menge (5 Tage alt) wachsende Kultur von N. Crassa mit einer Impfung-Schleife zu einem Microcentrifuge Schlauch mit 2 mL des flüssigen Mediums Vogels zu übertragen.</li>
		<li>Wirbel conidial Federung und Filter durch Filtermaterial zu einem neuen Microcentrifuge Schlauch.</li>
		<li>Zentrifugieren der conidial Suspension mit maximaler Geschwindigkeit in einem Microcentrifuge für 2 min. verwerfen des Überstands und conidial Pellet in 1 mL des flüssigen Mediums Vogels aufzuwirbeln.</li>
		<li>Zählen Sie die Konidien, die mit einem Hemocytometer unter einem Lichtmikroskop.</li>
		<li>Passen Sie die conidial Aufhängung 105 Konidien/mL mit Vogels flüssigen Mediums.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Probieren Sie Vorbereitung und konfokale Mikroskopie
<ol>
	<li>Subzelluläre Lokalisation der MtDef4 defensin in Pilzzellen
	<ol>
		<li>Pipette 50 µL der einzelnen conidial Suspension (105 Konidien/mL) in 10 mm Microwell von 35 mm unten Microwell Glasschalen. Für die Beobachtung der Konidien direkt fahren Sie fort mit dem nächsten Schritt fort, oder für Germlings Vorbereitung, Pipette 50 µL N. Crassa und F. Graminearum Konidien in die 35 mm-Kultur-Gerichte und für 3-6 h bei Zimmertemperatur Keimen zu lassen.</li>
		<li>Fügen Sie 50 µL Eindringmittel beschrifteten defensin am MIC zu jedem Microwell-Gericht und 2,5 h inkubieren. Das Mikrofon des Fluorophore beschriftet Defensine hier verwendet (Schritt 1.3) ist 3 µM für N. Crassa und F. Graminearum und das Mikrofon des TMR-MtDef4 für N. Crassa und F. Graminearum betrug 1 µM und 12 µM bzw..</li>
		<li>Fügen Sie 2 µL der Membran-selektiven färben FM4-64 (Endkonzentration: 5 µM) in Kultur Gericht und 30 min inkubieren und sofort auf die confocal Mikroskop für die Bildgebung zu montieren.</li>
		<li>Wählen Sie den weiße Licht-Laser (WLL). Verwenden Sie die zwei Laser Quellen 488 nm und 550 nm, TMR-MtDef4 und FM4-64 Farbstoff bzw. begeistern. Fluoreszenz des TMR-MtDef4 bei 580-700 nm zu erkennen und FM4-64 Farbstoff bei 690-800 nm zu erkennen. Hinweis: Führen Sie konfokalen Mikroskopie in den dunklen Raum.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Time Lapse Bildgebung der Internalisierung von MtDef5 defensin
	<ol>
		<li>Pipette 50 µL N. Crassa und F. Graminearum conidial Suspension (105 Konidien/mL) in 10 mm Microwell von 35 mm unten Microwell Glasschalen. Die 10 mm Microwell ist unbeschichtet und hat eine Nr. 1.5 Deckglas an der Unterseite. Fortfahren Sie für die Beobachtung der Konidien direkt mit dem nächsten Schritt. Inkubieren Sie für die Beobachtung von Germlings Konidien für 3-6 h bei Raumtemperatur bevor Sie mit der Mikroskopie.</li>
		<li>Schalten Sie WLL. Wählen Sie die Laserlinie bei 550 nm begeistern die Fluorophore beschriftet Defensine hier verwendet (Schritt 1.3) und FM4-64 mit 1,00 % Intensität und aktivieren Sie die entsprechende Detektoren. Fluorophore beschriftet Defensine hier verwendet (Schritt 1.3) wurde gefunden bei 560-600 nm und die FM4-64dye bei 690-800 nm erkannt wurde. Hinweis: Verwenden Sie niedrige Laserintensität für live Cell imaging, da hohe Laserintensität live Pilzzellen beschädigen kann.</li>
		<li>Montieren Sie die Microwell-Schüssel am Mikroskop. Die Zellen mit 10 X Ziele zunächst zu finden, wechseln Sie dann zu 100 X / 1,44 Öl Ziel für höhere Vergrößerung. Hinweis: Standardmäßig den Scan-Modus mit Xyzt (Kombination von Z-Stapel und Zeitraffer-Modus), Z-Position, Zoom, Häufigkeit der Bilderfassung, etc..</li></ol></li></ol>bevor Sie mit dem nächsten Schritt fortfahren.
		<li>Jedes Gericht Microwell 50 µL der Fluorophore beschriftet Defensine hier verwendet (Schritt 1.3) der an das Mikrofon von 3 µM und 2 µL der Membran-selektive Farbstoff FM4-64 (Endkonzentration 5 µM) hinzu, und starten Sie Zeitraffer Imaging. Legen Sie kleine Stücke von nassen Filterpapiere in der Microwell Gerichte um Verdunstung zu verhindern. Die Häufigkeit der Bilderfassung war 3 min 30 s und die Gesamtdauer 2 h 30 min. Hinweis: Hinzufügen von defensin und Fluorophor nach Montage Microwell Gericht im Mikroskop des Interessenbereichs defocus kann. Daher muss nach der Microwell defensin und Fluorophor hinzufügen, Interessenbereich neu ausgerichtet werden die Verzögerung bei der Bildaufnahme hervorrufen können.</li>
		<li>Verwenden Sie ein confocal Mikroskop für alle konfokale Bildgebung und der Mikroskopie bei Raumtemperatur in einem dunklen Raum durchführen.</li>

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</ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

In dieser Studie wurde eine zuverlässige live-Cell Image Methodik mit dem Einsatz von Eindringmittel beschrifteten antimykotische Defensine beschrieben, die Kinetik der Internalisierung dieser Peptide in Pilzzellen zu studieren und ihre subzelluläre Ziele zu bestimmen. Diese Methode ist ein mächtiges Werkzeug, um die Dynamik der Interaktion zwischen Defensine und Pilzzellen zeitlich und räumlich zu visualisieren.
Verschiedene Methoden wurden zur Untersuchung der Verinnerlichung und intrazellul...

Pflanzen haben eine anspruchsvolle angeborene Immunsystem zur Abwehr der mikrobiellen Werk Krankheitserreger1entwickelt. Sie äußern zahlreiche Gen kodiert Host Verteidigung Peptide mit vermeintlichen antimikrobielle Aktivität2. In der Tat, viele dieser Peptide antimikrobielle Aktivität in Vitro3anzeigen Defensine bilden eine der größten Gruppen von Host Verteidigung Peptiden in der Pflanze Königreich4. Diese reich an Cystein, kationischen Peptide zeigen starkes Wachstum hemmende Aktivität gegen Pilz- und Eipilz Krankheitserreger in mikromolaren Konzentrationen und repräsentieren eine der ersten Linien der Verteidigung gegen diese Erreger5,6. Wegen ihrer starken antimykotische Aktivität kann Defensine ausgenutzt werden, in Agribiotechnological Anwendungen um Krankheiten resistente Pflanzen zu erzeugen. Konstitutive Überexpression von mehreren pflanzlichen Defensine hat sich gezeigt, Resistenz gegen Krankheiten in Gewächshaus und Freiland-Tests von transgenen Pflanzen6zu verbessern. Es ist wichtig, die Mechanismen der Wirkung (MOA) dieser antimykotische Peptide zu entwirren, um ihr Potenzial voll und ganz als wirksame Instrumente für den Pflanzenschutz zu erschließen. Die MOA diese Pflanze Defensine sind jedoch kaum erforscht. Aktuelle Hinweise darauf, dass sie verschiedene MOA5,6,7,8aufweisen. Einige Defensine wirken extrazellulär auf Pilze und gezielt bestimmte Zellwand/Plasma Membran resident Sphingolipide, Membran Integrität stören und aktivieren zelluläre Toxizität Wege9,10,11. Jedoch vor kurzem, wurden antimykotische Defensine, die in Pilzzellen translozieren entdeckten12,13,14. Einige von diesen Defensine binden an Membran-Resident bioaktive Phospholipide, bilden Oligomere komplexe und Plasmamembranen15,16,17permeabilize. So haben einige Aspekte des MOA von pflanzlichen Defensine aufgeklärt. Allerdings beinhalten die MOA von pflanzlichen Defensine wahrscheinlich eine komplexe Reihe von Ereignissen, die noch nicht identifiziert und in ein umfassendes Modell integriert wurden. Insbesondere bleibt eine große Lücke in unserem Verständnis der zellulären Ziele dieser Peptide.
Mit jüngsten Fortschritte in der Mikroskopie-Technologien und die Entwicklung von neuen fluoreszierende Sonden sind Leben-Zelle bildgebende Verfahren jetzt häufig verwendet, um die MOA antimikrobielle Peptide (AMPs) zu studieren. Diese Techniken ergänzen verbreitete Methoden wie Immunolocalization, Elektronenmikroskopie, Rasterkraftmikroskopie oder Röntgen-Tomographie18, die angewandt wurden, vor allem auf die Auswirkungen von Antimykotika Peptiden auf die Morphologie zu analysieren und Wachstum von Pilzzellen einschließlich der Untersuchung der Zellwand Integrität, Veränderungen in der Zelle Wachstum/Verzweigung Muster sowie Permeabilisierung der Plasmamembran und töten. Allerdings wurden diese Studien beschränkt Imaging Zellen zu einem bestimmten Zeitpunkt nach der Behandlung mit der Peptide anstatt Zeitraffer-Aufnahme die gleichen Zellen, ihre dynamischen Veränderungen in Reaktion auf defensin Herausforderung zu überwachen. In den letzten Jahren hat die Verwendung von Eindringmittel beschriftete Peptide in Verbindung mit live Cell imaging mit der konfokalen Mikroskopie Echtzeit-Visualisierung der Dynamik des AMP-Mikroben-Interaktionen ermöglicht. Beide natürlich gereinigt und chemisch synthetisierten antimykotische Peptide können mit Fluoreszenzmarkierungen markiert werden (z.B., DyLight, Rhodamin, BODIPY oder Alexa Fluor basierend Farbstoffe) und direkt während ihrer Interaktion mit Zellen von Time-Lapse beobachtet Live Cell Imaging. Die Verwendung dieser Peptide beschriftet unser Verständnis für die verschiedenen Aspekte der ihre MOA einschließlich Modus Eintritt, subzelluläre Lokalisation, intrazellulären Menschenhandel und Websites antimykotische Maßnahmen im lebenden Pilzzellen deutlich gestiegen 18.
Vor kurzem, haben mehrere Studien gezeigt, dass verschiedene Antimykotika Peptide einschließlich Anlage Defensine Leben Pilzzellen12,14,19,20internalisiert werden. Die MOA diese Defensine wahrscheinlich beinhalten Interaktion mit intrazellulären Ziele. Wir haben vor kurzem die antimykotische Wirkung von einer Pflanze defensin MtDef4 in zwei Schlauchpilz Pilzen, Neurospora Crassa und Fusarium Graminearumberichtet. MtDef4 wurde gezeigt, um verschiedene Wege für die Pilzzelle ein- und subzelluläre Lokalisation in diesen Pilzen14zu verwenden. Diese Studie verwendet chemisch synthetisiert Tetramethyl Rhodamin (TAMRA)-mit der Bezeichnung MtDef4 in Kombination mit lebenswichtigen Fluoreszenzfarbstoffen (Membran-permeationsfähigen Farbstoff, SYTOX Green, der Membran selektiv Farbstoff, FM4-64; der Zelle Tod Reporter Farbstoff, Propidium Jodid) und metabolische Inhibitoren. Diese Analysen zeigten die Kinetik der Internalisierung von MtDef4, die Mechanismen der intrazellulären Transport und seine subzelluläre Ziele14.
Hier ist ein Protokoll für live Cell Imaging mit der konfokalen Mikroskopie vorgestellt. Das Protokoll nutzt Eindringmittel beschriftete Peptide in Kombination mit lebenswichtigen Fluoreszenzfarbstoffen Pflanze defensin-Pilz-Interaktionen, insbesondere zu studieren, die Pfade der Translokation und die intrazellulären Ziele der Defensine in Pilzzellen.

<table><tbody><tr><td>FM4-64 Dye</td><td>Life Technologies</td><td>T13320</td><td></td></tr><tr><td>DyLight 550 Antikörper-Markierungskit</td><td>Thermo Scientific</td><td>84530</td><td></td></tr><tr><td>Mikrotiterschalen mit Glasboden</td><td>Matte TeK</td><td>P35G-1.5-10-C</td><td></td></tr><tr><td>Mira Tuch</td><td>EMD Millipore Corp</td><td>475855-1R</td><td></td></tr><tr><td>SP8-X Konfokalmikroskop</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ImageJ Software</td><td>FiJi</td><td></td><td>für die Bildanalyse</td></tr><tr><td>Imaris Software</td><td>Bitplane</td><td></td><td>für die Bildanalyse</td></tr></tbody></table>

live cell imaging von pilzzellen modi des eintrags und subzelluläre lokalisation der antimykotische pflanze defensine zu untersuchen

Live-cell Imaging of Fungal Cells to Investigate Modes of Entry and Subcellular Localization of Antifungal Plant Defensins

Kleinen Cystein-reiche Defensine sind eine der größten Gruppen von Host Verteidigung Peptiden in allen Pflanzen vorhanden. Viele pflanzlichen Defensine potente in Vitro antimykotische Aktivität gegen ein Breitspektrum Pilzerreger auszustellen und haben daher das Potenzial, als Antimykotika in transgenen Pflanzen verwendet werden. Um das volle Potenzial der Pflanze Defensine für Krankheiten Kontrolle zu erschließen, ist es wichtig, ihre Wirkmechanismen (MOA) aufzuklären. Mit dem Aufkommen der modernen Mikroskopiertechniken ist live Cell Imaging ein leistungsfähiges Werkzeug für das Verständnis der Dynamik von Antimykotika MOA von pflanzlichen Defensine geworden. Hier wird ein konfokalen Mikroskopie basierend live-Cell imaging Verfahren beschrieben mit zwei Eindringmittel bezeichnete Pflanze Defensine (MtDef4 und MtDef5) in Kombination mit lebenswichtigen Fluoreszenzfarbstoffen. Diese Technik ermöglicht Echtzeit-Visualisierung und Analyse der dynamischen Ereignisse der MtDef4 und MtDef5 Internalisierung in Pilzzellen. Wichtig ist, erzeugt dieser Assay eine Fülle von Informationen, einschließlich der Internalisierung Kinetik, Modus für die Einreise und subzelluläre Lokalisation dieser Peptide. Zusammen mit anderen biologischen Zelle-Tools haben diese Methoden kritische Einblicke in die Dynamik und Komplexität der MOA dieser Peptide zur Verfügung gestellt. Diese Tools können auch verwendet werden, die MOA dieser Peptide gegen verschiedene Pilze zu vergleichen.

Live Cell Imaging wurde durchgeführt, um zu verfolgen und vergleichen Sie die Internalisierung und subzelluläre Lokalisation der zwei Defensine, MtDef4 und MtDef5 von Medicago Truncatula; in Pilzzellen. TMR-MtDef4 wurde chemisch synthetisiert, während MtDef5 mit Dylight550 beschriftet war (Dylight550-MtDef5). Konidien inkubiert mit entweder defensin in Kombination mit der Membran selektiv Farbstoff FM4-64. Abbildung 1 zeigt, dass TMR-MtDef4 verschied...

Pflanzlichen Defensine spielen eine wichtige Rolle in der Verteidigung der Pflanze gegen Krankheitserreger. Für effektive Nutzung dieser antimykotische Peptide als Antimykotika, verstehen ihre Wirkungsweisen (MOA) entscheidend ist. Hier ist eine live-Cell-imaging-Methode beschrieben, um kritische Aspekte der MOA dieser Peptide zu studieren.

Live Cell Imaging von Pilzzellen Modi des Eintrags und subzelluläre Lokalisation der antimykotische Pflanze Defensine zu untersuchen

Small cysteine-rich defensins are one of the largest groups of host defense peptides present in all plants. Many plant defensins exhibit potent in vitro ...

Das übergeordnete Ziel dieser Live-Cell-Bildgebungsmethode besteht darin, entscheidende Aspekte der Wirkmechanismen antifungaler pflanzlicher Defensine in Pilzzellen zu untersuchen. Mit dem Aufkommen fortschrittlicher Konfokalmikroskopietechniken ist die Live-Cell-Bildgebung zu einem leistungsfähigen Werkzeug geworden, um die Wirkungsweisen antifungaler pflanzlicher Defensine zu erforschen. Unter Nutzung dieser Technologie stellen wir hier eine Methode vor, die dazu beitragen soll, zentrale Fragen zum Verständnis der Wirkungsweisen antifungaler pflanzlicher Defensine zu beantworten.Unsere Schwerpunkte liegen darauf, wie diese Peptide in die Pilzzellen aufgenommen werden und wie sie in die Zellorganellen lokalisiert oder im Zytoplasma verteilt sind. Um eine Konidien-Suspension des PH-1-Stamms von Fusarium graminearum herzustellen, bereiten Sie zunächst Kulturen des Stammes auf Platten mit vollständigem Medium vor. Kultivieren Sie sie bei 28 Grad Celsius über einen Zeitraum von fünf Tagen.Um Konidien zu erzeugen, impfen Sie vier 10-Millimeter-Plugs der fünf Tage alten Kultur in 50 Milliliter Carboxymethylcellulose-Medium ein. Kultivieren Sie diese Plugs vier bis sieben Tage lang bei

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Forschung

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Biology

Biologie

Dieses Video zeigt die Bildgebung lebender Zellen zur Analyse der antimykotischen Aktivität in menschlichen Neutrophilen unter Verwendung von fluoreszierenden Aspergillus-Reporterkonidien. Zunächst werden sowohl rote als auch magentafarbene Fluoreszenz in Neutrophilen nachgewiesen, während die rote Fluoreszenz mit der Zeit abnimmt, was auf den Abbau von Konidien hinweist und die antimykotische Aktivität von Neutrophilen bestätigt.

Echtzeit-Bewertung der antimykotischen Aktivität primärer humaner Immunzellen

Live-cell Video Mikroskopie Pilzpathogenentwicklung Phagozytose

Hier beschreiben wir ein Protokoll Anti - Pilz - Aktivität von primären humanen Immunzellen in Echtzeit zu bewerten unter Verwendung von fluoreszierendem Aspergillus Reportern Konidien in Verbindung mit Live-Zell - Videomikroskopie und Durchflusszytometrie. Erzeugten Daten geben einen Einblick in die Wirts zell- Aspergillus Wechselwirkungen wie fungizide Aktivität, Phagozytose, Zellmigration und Hemmung des Pilzwachstums.

Live-Imaging von Anti-Pilz-Aktivität von Human Primary Neutrophilen und Monozyten in Reaktion auf<em&gt; A. fumigatus</em

Fluoreszierende Protein-basierte Ansätze, Effektoren abgesondert von Bakterien in Wirtszellen zu überwachen sind anspruchsvoll. Dies ist aufgrund der Inkompatibilität zwischen fluoreszierende Proteine und die Typ-III-Sekretion-System. Hier wird eine optimierte Split Superfolder GLP-System zur Visualisierung von Effektoren abgesondert von Bakterien in die Wirtszelle Pflanze verwendet.

Split-grün fluoreszierendes Protein System Effektoren geliefert von Bakterien während der Infektion zu visualisieren

Vitale Fluoreszenzfarbstoffe sind wesentliche Werkzeuge für livezellbildende Analysen in der modernen Pilzzellbiologie. Dieses Papier beschreibt die Anwendung etablierter und weniger bekannter Fluoreszenzfarbstoffe zur Verfolgung der Plasmamembrandynamik, Endo-/Exozytose und Zellwandmorphogenese in fadenförmigen Pilzen.

Anwendung von Membran- und Zellwandselektiven Fluoreszenzfarbstoffen für die Live-Zell-Bildgebung von filamentösen Pilzen

Aufgrund der Opazität des Bodens können Wechselwirkungen zwischen seinen konstituierenden Mikroben nicht leicht mit zellulärer Auflösung sichtbar gemacht werden. Hier werden zwei mikrofluidische Werkzeuge vorgestellt, die neue Möglichkeiten bieten, pilzlich-mikrobielle Wechselwirkungen zu untersuchen. Die Geräte sind vielseitig und einfach zu bedienen und ermöglichen eine hohe räumlich-zeitliche Kontrolle und hochauflösende Bildgebung auf zellulärer Ebene.

Mikrofluidische Werkzeuge zur Untersuchung pilzlich-mikrobieller Interaktionen auf zellulärer Ebene

Dieses Manuskript beschreibt ein optimiertes Inokulationsprotokoll, das abgelöste Maisblatthüllen für reproduzierbare zytologische, physiologische und molekulare Studien von Maisinteraktionen mit pilzlichen Pflanzenpathogenen verwendet. Die Blattscheiden erleichtern die Echtzeitbeobachtung zellulärer Interaktionen zwischen der lebenden Pflanze und dem Pilz in nicht fixiertem Gewebe.

Abgetrennte Maisscheiden für die Lebendzell-Bildgebung der Infektion durch pilzliche Blattmais-Erreger

Xenopus embryonalen Epithelien sind ein ideales Modellsystem, um die Zelle Verhaltensweisen wie Polarität Entwicklung und Formänderung beim epithelialen Morphogenese zu studieren. Traditionelle Histologie des festen Proben wird zunehmend durch Live-Cell-konfokale Bildgebung ergänzt. Hier zeigen wir Methoden, um Frosch Gewebe zu isolieren und zu visualisieren leben Epithelzellen und deren Zytoskelett mit Live-cell konfokalen Mikroskopie.

Live-Cell-Imaging und Quantitative Analyse der embryonalen Epithelzellen in Xenopus laevis</em

Fluoreszenz-basierte Messung von Calcium-Shop-Eintrag in lebenden Zellen: aus kultivierten Krebszelle zu Skelettmuskelfaser

Dieses Protokoll beschreibt ein Verfahren zur Visualisierung eines DNA Doppelstrangbruch Signalprotein als Reaktion auf DNA-Schäden sowie seine Lokalisierung während der Mitose aktiviert.

Zwei-und dreidimensionale Live Cell Imaging der DNA-Reparatur-Proteine

Erfahren Sie Live-Cell-Imaging zur Untersuchung antifungaler Pflanzendefensine in Pilzzellen. Diese Methode zeigt Internalisierung und subzelluläre Lokalisation in Fusarium graminearum und Neurospora crassa.

Live Cell Imaging von Pilzzellen Modi des Eintrags und subzelluläre Lokalisation der antimykotische Pflanze Defensine zu untersuchen (Video) | JoVE Journal

Live Cell Imaging von Pilzzellen Modi des Eintrags und subzelluläre Lokalisation der antimykotische Pflanze Defensine zu untersuchen

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