Name: Herstellung von größenkontrollierten und emulsionsfreien Chitosan-Genipin-Mikrogelen für Tissue-Engineering-Anwendungen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-04-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 26 s
Description: Erfahren Sie die Herstellung biokompatibler Chitosan-Mikrogele ohne giftige Emulsionen für Tissue-Engineering. Diese Methode ermöglicht präzise Größenkontrolle und nachhaltige Wirkstofffreisetzung für regenerative Medizin.

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Die in dieser Veröffentlichung berichtete Forschung wurde vom National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases des National Institute of Health unter den Preisnummern R03AR068087 und R21AR071585 und von der Boettcher Foundation (#11219) an MDK unterstützt. CBE wurde von NIH/NCATS Colorado CTSA Grant Number TL1 TR001081 unterstützt.

Alle Tierverfahren wurden vom University of Colorado Denver Institutional Animal Care and Use Committee genehmigt. 6 Wochen alte männliche Sprague-Dawley-Ratten wurden für die vorliegende Studie verwendet. Das Rattenwachstumsplattenverletzungsmodell wurde nach einem zuvor veröffentlichten Berichterstellt 30.
1. Herstellung des Chitosanpolymers
<ol><li>Erhalten Sie gereinigtes und lyophilisiertes niedermolekulares (LMW) Chitosan aus kommerziell verfügbaren Quellen (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>495 ml doppelt destilliertes Wasser (ddH2O) und eine Rührstange zu einem 1 L Becherglas geben. 5 g Chitosan (Schritt 1.1.) zugeben und gut mischen. HINWEIS: Chitosan ist in einer wässrigen Lösung bei physiologischem pH-Wert nur spärlich löslich, so dass sich das Chitosan bei diesem Schritt nicht leicht auflöst.</li>
	<li>Fügen Sie 5 ml Eisessigsäure zu der oben hergestellten Chitosanlösung hinzu.</li>
	<li>Bei 300 U/min 18 h mit dem Becherglas in einem Wasserbad bei 50 °C umrühren.</li>
	<li>Filtern Sie die Chitosanlösung mit einem Büchnerkolben und Trichter durch abnehmende Filterpapiergrößen: 22 μm, 8 μm und 2,7 μm (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>Die gefilterte Chitosanlösung in den Cellulose-Dialyseschlauch geben (siehe Materialtabelle) und in ddH 2 O bei Raumtemperatur 4Tage lang dialysieren lassen, wobei das ddH2O täglich gewechselt wird. HINWEIS: Verwenden Sie für die letzte Änderung ultrareines ddH2O-Wasser.</li>
	<li>Die dialysierte Chitosanlösung in ein Becherglas geben und den pH-Wert mit 1 M NaOH auf 8,0 einstellen.</li>
	<li>Aliquot das Chitosan in Zentrifugenröhrchen und Zentrifuge bei 4000 x g für 5 min bei Raumtemperatur zentrifugieren.</li>
	<li>Dekantieren Sie den Überstand zu einem Abfallstrom und suspendieren Sie das Chitosan in ddH 2 O, wobei Sie2x wiederholen.</li>
	<li>Einfrieren und dann das Chitosan-Pellet lyophilisieren.<ol>
<li>Entfernen Sie jeden Tag das lyophilisierte Produkt und zeichnen Sie die Masse auf. HINWEIS: Wenn sich die Masse des lyophilisierten Produkts nicht mehr ändert, ist das Produkt vollständig getrocknet und kann bei -20 ° C gelagert werden, bis es gebrauchsfertig ist.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Herstellung von Chitosan-Hydrogel
<ol><li>Fügen Sie 2 ml 6% Essigsäure und 120 mg gereinigtes Chitosan (Schritt 1) zu einer 10 ml Luer-Lock-Spritze hinzu, um eine 6% w/v Chitosanlösung zu bilden.</li>
	<li>Verbinden Sie die Luer-Lock-Spritze mit einer anderen identischen Spritze über einen Luer-Lock-Buchsenstecker und mischen Sie die Lösung 30 s hin und her oder bis sich das Chitosan vollständig in der Essigsäure aufgelöst hat.</li>
	<li>Vor der Vernetzung fügen Sie der Chitosanlösung (falls erforderlich) ein therapeutisches oder bioaktives Mittel hinzu. Für die vorliegende Studie wurden den Mikrogelen 200 ng SDF-1a und TGF-b3 (siehe Tabelle der Materialien) zugesetzt. HINWEIS: SDF-1a und TGF-b3 sind bioaktive Wirkstoffe, die für die Regeneration von Wachstumsplattengewebe relevant sind. SDF-1a fördert die Migration von mesenchymalen Stammzellen zur Defektstelle, und TGF-b3 dient als chondrogener Faktor, um die Differenzierung dieser Stammzellen entlang der chondrogenen Linie31 zu induzieren. HINWEIS: Mischen Sie das Chitosan erneut zwischen den Spritzen, um das therapeutische Mittel vollständig zu integrieren.</li>
	<li>Bereiten Sie 100 mM Stammvernetzerlösung von Genipin (siehe Materialtabelle) in 100% Ethanol vor.</li>
	<li>100 μL der hergestellten Genipinlösung (Schritt 2.4.) in die Chitosan-haltige Spritze geben und erneut 30 s zwischen den Spritzen hin und her mischen.</li>
	<li>Die Mischung aus der Spritze auf eine 35 mm Petrischale extrudieren, mit Paraffinfolie abdecken und über Nacht bei 37 °C in befeuchteter Atmosphäre inkubieren. HINWEIS: Die Lösung färbt sich dunkelblau, was darauf hinweist, dass die Vernetzungsreaktion zwischen Chitosan und Genipin stattgefunden hat, was zur Bildung von Chitosan-Mikrogel geführt hat.</li>
	<li>Filtern Sie das hergestellte Chitosan-Mikrogel mit den folgenden Schritten.<ol>
<li>Brechen Sie das Hydrogel vorsichtig mit einem Spatel in kleinere Stücke. HINWEIS: Die Stücke sollten klein genug sein, um auf die Rückseite einer 10-ml-Spritze mit einem Durchmesser von ~ 1-2 cm übertragen zu werden.</li>
		<li>Legen Sie einen Filter der gewünschten Maschenweite in die Rückseite einer sauberen 10-ml-Spritze. HINWEIS: Der typische Größenbereich für Mikrogele liegt zwischen 50-200 μm.</li>
		<li>Die zerbrochenen Gelstücke in die mit dem Filter versehene Spritze geben und 6 ml ddH2O hinzufügen. HINWEIS: Das Chitosan-Gel schwillt im wässrigen Medium deutlich an, so dass eine große Veränderung des Gelvolumens erwartet wird.</li>
		<li>Verbinden Sie die Spritze über einen Luer-Lock-Stecker mit einer anderen sauberen 10-ml-Spritze.</li>
		<li>Zwingen Sie das Gel + Wasser-Gemisch durch die Spritze mit dem Filter, um Mikrogele mit einem bestimmten maximalen Durchmesser zu erzeugen.<ol>
<li>Öffnen Sie nach der ersten Filtration die Rückseite der Spritze, die den Filter enthält, und extrudieren Sie die Mischung wieder in diese Spritze.</li>
			<li>Ersetzen Sie die Rückseite der Spritze und drücken Sie die Mischung erneut durch den Filter.</li>
			<li>Wiederholen Sie die Filtration 5-6x oder bis es wenig Widerstand durch den Filter gibt.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>Spülen und reinigen Sie die gefilterten Mikrogele.<ol>
<li>Übertragen Sie die filtrierte Gelmischung auf ein konisches 50-ml-Rohr, bringen Sie das Gesamtvolumen mit ddH2O auf 20 ml und wirbeln Sie dann die Mischung um, um eine homogene Dispersion zu gewährleisten.</li>
		<li>Die Mikrogele bei 100 x g für 5 min bei Raumtemperatur zentrifugieren und die obere wässrige Phase dekantieren.</li>
		<li>Suspendieren Sie die Mikrogele in 10 ml 70% Ethanol, Wirbel und legen Sie sie für 1 Stunde unter UV-Licht, um zu sterilisieren.</li>
		<li>Zentrifugieren Sie die Mikrogele bei 1.000 x g für 5 min bei Raumtemperatur, entsorgen Sie das Ethanol und spülen Sie es 3x mit ddH2O ab.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Herstellung von Mikrogelen für In-vitro- oder In-vivo-Anwendungen 
HINWEIS: Für die vorliegende Studie wurde die Knorpelregeneration bei Wachstumsplattenverletzungen in einem Rattenmodell untersucht. Weitere Informationen finden Sie unter Referenz31.
<ol><li>Resuspendiert die Mikrogelpellets 1:1 in ddH 2 O. Mikrogele können bis zu 1 Monat suspendiert in ddH2O bei 4 °C gelagert werden. Wenn ein bioaktives Mittel verwendet wird, müssen die Mikrogele sofort verwendet werden.</li>
	<li>Erstellen Sie die Verletzungsstelle im Tier nach einem zuvor veröffentlichten Bericht30.</li>
	<li>Spülen Sie die Verletzungsstelle mit Kochsalzlösung und halten Sie das Tier entweder unbehandelt (zur Kontrollstudie) oder injizieren Sie nur die Chitosan-Mikrogele oder die mit den bioaktiven Wirkstoffen beladenen Mikrogele (Schritt 3.2.).</li>
	<li>Schließen Sie die Wunde im Tier und verabreichen Sie postoperative Analgetika30.</li>
	<li>An den Tagen 7 oder 28 nach der Operation, euthanasieren Sie die Ratte durch CO 2 Überdosis, entfernen Sie die Gliedmaßen und führen Sie eine Histologie durch, um die Gewebereparatur an der Verletzungsstellezu beurteilen 31.</li>
</ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Mikrogele wurden in den letzten Jahren aufgrund ihrer hohen Anwendbarkeit für verschiedene Zwecke, wie z.B. Arzneimittelabgabe oder Zellverkapselung, umfassend erforscht9. Die einfache Herstellung von Biomaterialkonstrukten im Mikromaßstab ist im Tissue Engineering von erheblicher Bedeutung, da sie es Forschern ermöglicht, Hydrogel-basierte Strategien in einer bestimmten Größe und Zeitskala zu entwickeln. Die meisten Methoden zur Herstellung von Chitosan-Mikrogelen erfordern jedoch teure Geräte un...

Die Wachstumsplatte, auch bekannt als Physis, ist die Knorpelstruktur am Ende langer Knochen, die das Wachstum bei Kindern vermittelt. Wenn die Wachstumsplatte verletzt wird, kann sich Reparaturgewebe bilden, das als "knöcherner Balken" bekannt ist, was das normale Wachstum unterbricht und Wachstumsdefekte oder Winkeldeformitäten verursachen kann. Epidemiologische Daten haben gezeigt, dass 15%-30% aller Skelettverletzungen im Kindesalter mit der Wachstumsplatte zusammenhängen. Die Bildung von Knochenstäben tritt bei bis zu 30% dieser Verletzungen auf, was Wachstumsplattenverletzungen und die damit verbundene Behandlung zu einem signifikanten klinischen Manifestationsproblemmacht 1,2,3,4. Wenn eine knöcherne Stabbildung auftritt, besteht der häufigste Behandlungsweg darin, den knöchernen Stab zu resektieren und ein Interpositionsmaterial wie Silizium oder Fettgewebeeinzuführen 5. Patienten, die sich einer knöchernen Bar-Resektionsoperation unterziehen, haben jedoch oft eine schlechte Prognose für eine vollständige Genesung, da es derzeit keine Behandlung gibt, die eine verletzte Wachstumsplatte vollständig reparieren kann 6,7,8. Angesichts dieser Mängel besteht ein kritischer Bedarf an wirksamen Strategien zur Behandlung von Wachstumsplattenverletzungen, sowohl bei der Verhinderung der Bildung eines knöchernen Balkens als auch bei der Regeneration von gesundem physärem Knorpelgewebe.
Hydrogel-Mikropartikel oder Mikrogele haben in letzter Zeit Interesse als injizierbare Gerüste gewonnen, die eine anhaltende Freisetzung von Therapeutika ermöglichenkönnen 9. Aufgrund ihrer hohen Abstimmbarkeit und Biokompatibilität eignen sich Mikrogele auch gut für die Bioaktivfaktor- oder Zellverkapselung. Mikrogele können aus verschiedenen Materialien hergestellt werden, die von synthetischen Polymeren wie Polyethylenglykol (PEG) bis hin zu natürlichen Polymeren wie Alginat oder Chitosan10,11,12 reichen. Es hat sich gezeigt, dass Chitosan mehrere positive Auswirkungen auf das Tissue Engineering hat, wie z.B. seine Fähigkeit, die äußere Membran von gramnegativen Bakterien zu destabilisieren und dadurch inhärente antimikrobielle Aktivitätzu bieten 1 3,14. Darüber hinaus ist Chitosan kostengünstig, zellinteraktiv und leicht zu modifizieren mit seiner aminhaltigen Struktur. Chitosan-basierte Mikrogele versprechen eine Biomaterialstrategie für die Arzneimittelabgabe und Materialsignalisierung, die die Geweberegeneration fördern und gleichzeitig bakterielle Infektionen verhindern kann. Chitosan-Mikrogele werden jedoch oft mit einer Vielzahl von Techniken hergestellt, die spezielle Ausrüstung, Emulsionstechniken oder zytotoxische Lösungsmittelspülungen erfordern. Zum Beispiel haben einige Studien Chitosan-Mikrogele mit emulsionsbasierten Methoden hergestellt, aber diese Protokolle erfordern Lösungsmittelspülungen und zytotoxische Vernetzer, was möglicherweise ihre Translation in klinische Umgebungen negiert15,16. Andere Studien haben Mikrofluidik- oder Elektrospray-Ansätze verwendet, um Chitosan-Mikrogele herzustellen, die spezielle Ausrüstung, Vorbereitung und Schulung erfordern17,18. Chitosan-Mikrogele werden auch üblicherweise mit einem tropfenweisen Prozess des Vernetzers in Chitosanlösung hergestellt; Diese Methode ist jedoch stark von der Lösungsviskosität, der Polymerkonzentration und der Durchflussrate abhängig, was es schwierig macht, die Größe und Dispersität der Mikrogele19,20 zu kontrollieren. Umgekehrt erfordert das hierin beschriebene Verfahren zur Mikrogelherstellung keine spezielle Ausrüstung oder Lösungsmittelspülungen, wodurch diese Mikrogele für die Herstellung in fast jedem Labor oder jeder Umgebung geeignet sind. Daher stellen diese Mikrogele hochrelevante Biomaterialien für ein schnelles, kostengünstiges und einfach herzustellendes Arzneimittelabgabevehikel für viele Anwendungen dar.
Durch die Modulation der Zusammensetzung und der Materialeigenschaften eines Mikrogels können Forscher eine präzise Kontrolle über die zelluläre Mikroumgebung erlangen und so das Zellverhalten materialabhängig steuern. Mikrogele können allein oder in Kombination mit Bulk-Biomaterialsystemen eingesetzt werden, um spezifische Funktionalitäten zu vermitteln, wie z.B. die verlängerte Freisetzung bioaktiver Faktoren oder eine präzise spezielle Signalgebung für native oder exogene Zellen. Biomaterialien und Mikrogele haben sich als attraktive Behandlungsmöglichkeiten für Wachstumsplattenverletzungen herauskristallisiert. Es wurden erhebliche Anstrengungen unternommen, um Alginat- und Chitosan-basierte Biomaterialien zur Behandlung von Wachstumsplattenverletzungen zu entwickeln 21,22,23,24,25. Aufgrund der dynamischen zeitlichen Natur der Wachstumsplattenverknöcherung und Knochendehnung ist der Mechanismus der knöchernen Balkenbildung nicht vollständig verstanden. Daher wurden mehrere Tiermodelle entwickelt, um die Mechanismen der endochondralen Ossifikation und der knöchernen Balkenbildung, wie bei Ratten, Kaninchen und Schafen, besser aufzuklären26,27,28. Ein solches Modell ist ein Rattenwachstumsplattenverletzungsmodell, das einen Bohrlochdefekt in der Rattentibia verwendet, um einen knöchernen Balken in einer vorhersehbaren und reproduzierbaren Weise herzustellen und menschliche Verletzungen in allen drei Zonen der Wachstumsplatte 29,30 nachzuahmen. Mehrere biomaterialbasierte Strategien zur Behandlung von Wachstumsplattenverletzungen wurden mit diesem Modell getestet. Darüber hinaus wurden zwei verschiedene Methoden zur Herstellung von Chitosan-Mikrogelen entwickelt, die als injizierbares Biomaterialsystem verwendet werden können, das Therapeutika nachhaltig freisetzt 10,31. Diese Mikrogele wurden in einem Rattenphyseal-Verletzungsmodell eingesetzt und zeigten eine verbesserte Knorpelregeneration31 bei der Freisetzung von SDF-1a und TGF-b3. Die in diesem Protokoll bereitgestellten Techniken beschreiben Methoden, die zur Herstellung dieser Chitosan-Mikrogele entwickelt wurden, die dann in einer Vielzahl von Tissue-Engineering-Anwendungen eingesetzt werden können. Zum Beispiel haben neuere Studien thermo- oder magento-responsive Chitosan-Mikrogele für kontrollierte onkologische Arzneimittelverabreichungsanwendungenverwendet 32,33.

<table><tbody><tr><td>Essigsäure</td><td>SigmaAldrich</td><td>AX0073</td><td></td></tr><tr><td>BD Luer-Lock-Spritze</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-823-16E</td><td></td></tr><tr><td>B&uuml; chner Trichter</td><td>Fisher Scientific</td><td>FB966F</td><td>Chitosan mit 100 mm Durchmesser</td></tr><tr><td>(niedriges Molekulargewicht)</td><td>SigmaAldrich</td><td>448869</td><td>75-80% Deacetylierung</td></tr><tr><td>Dialysemembranschlauch Fisher</td><td>Scientific</td><td>08-670-5C</td><td>3500 MWCO</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>SigmaAldrich</td><td>493538</td><td></td></tr><tr><td>Genipin</td><td>SigmaAldrich</td><td>G4796</td><td></td></tr><tr><td>Heracell 150i Inkubator</td><td>ThermoFisher</td><td>50116047</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-374-12</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant human SDF-1a</td><td>Peprotech</td><td>300-28A</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant human TGF-b3</td><td>Peprotech</td><td>100-36E</td><td></td></tr><tr><td>Whatman Filterpapier Sorte 540</td><td>SigmaAldrich</td><td>Z241547</td><td>8 mm Porengröße</td></tr><tr><td>Whatman Filterpapier Sorte 541</td><td>SigmaAldrich</td><td>WHA1541055</td><td>22 mm Porengröße</td></tr><tr><td>Whatman Filterpapier Güteklasse 542</td><td>SigmaAldrich</td><td>WHA1542185</td><td>2,7 mm Porenstärke</td></tr><tr><td>Drahtgeflecht Sieb</td><td>McMaster-Carr</td><td>9317T86</td><td>Nr. 100 Mesh</td></tr></tbody></table>

herstellung von größenkontrollierten und emulsionsfreien chitosan-genipin-mikrogelen für tissue-engineering-anwendungen

Fabrication of Size-Controlled and Emulsion-Free Chitosan-Genipin Microgels for Tissue Engineering Applications

Chitosan-Mikrogele sind aufgrund ihres breiten Anwendungsspektrums, ihrer niedrigen Kosten und ihrer Immunogenität von großem Interesse im Tissue Engineering. Chitosan-Mikrogele werden jedoch üblicherweise mit Emulsionsmethoden hergestellt, die organische Lösungsmittelspülungen erfordern, die giftig und umweltschädlich sind. Das vorliegende Protokoll stellt eine schnelle, nicht zytotoxische, nicht auf Emulsion basierende Methode zur Herstellung von Chitosan-Genipin-Mikrogelen ohne die Notwendigkeit organischer Lösungsmittelspülungen vor. Die hierin beschriebenen Mikrogele können mit präziser Größenkontrolle hergestellt werden. Sie weisen eine anhaltende Freisetzung von Biomolekülen auf und sind damit für Tissue Engineering, Biomaterialien und regenerative Medizin von hoher Relevanz. Chitosan wird mit Genipin zu einem Hydrogelnetzwerk vernetzt und dann durch einen Spritzenfilter geleitet, um die Mikrogele herzustellen. Die Mikrogele können gefiltert werden, um eine Reihe von Größen zu erzeugen, und sie zeigen pH-abhängige Schwellungen und bauen sich im Laufe der Zeit enzymatisch ab. Diese Mikrogele wurden in einem Rattenwachstumsplattenverletzungsmodell eingesetzt und es wurde gezeigt, dass sie eine erhöhte Knorpelgewebereparatur fördern und nach 28 Tagen in vivo einen vollständigen Abbau zeigen. Aufgrund ihrer niedrigen Kosten, ihres hohen Komforts und ihrer einfachen Herstellung mit zytokompatiblen Materialien stellen diese Chitosan-Mikrogele eine aufregende und einzigartige Technologie im Tissue Engineering dar.

Die erfolgreiche Herstellung von Chitosan-Mikrogelen beruht auf der Vernetzungsreaktion zwischen Genipin und Chitosan, an der insbesondere die Amine an den Chitosan-Polymerketten beteiligt sind. Im Gegensatz zu anderen Mikrogel-Herstellungstechniken erfordert diese Methode keine Emulsionen oder Lösungsmittelspülungen und kann schnell und einfach mit kostengünstigen Geräten durchgeführt werden. Ein charakteristischer Indikator für eine erfolgreiche Mikrogelherstellung ist der deutliche Farbwechsel von cremefarben zu dunke...

Das vorliegende Protokoll beschreibt ein nicht-emulsionsbasiertes Verfahren zur Herstellung von Chitosan-Genipin-Mikrogelen. Die Größe dieser Mikrogele kann präzise kontrolliert werden, und sie können pH-abhängige Schwellungen aufweisen, in vivo abgebaut werden und mit therapeutischen Molekülen beladen sein, die im Laufe der Zeit nachhaltig freigesetzt werden, was sie für Tissue-Engineering-Anwendungen sehr relevant macht.

Herstellung von größenkontrollierten und emulsionsfreien Chitosan-Genipin-Mikrogelen für Tissue-Engineering-Anwendungen

Chitosan microgels are of significant interest in tissue engineering due to their wide range of applications, low cost, and immunogenicity. However, ...

Dieses Protokoll ermöglicht die bequeme Herstellung von Chitosan-Mikrogelen ohne toxische Lösungsmittel, die für eine Vielzahl von Tissue-Engineering- und Drug-Delivery-Anwendungen verwendet werden können. Diese Technik erfordert keine spezielle Ausrüstung oder Schulung und erfordert keine toxischen Emulsionstechniken oder Lösungsmittelspülungen, wodurch sie hochgradig biokompatibel und auf eine klinische Umgebung übertragbar ist. Wir haben diese Technik als Biomaterialstrategie zur Behandlung von Wachstumsplattenverletzungen angewendet.Wir glauben jedoch, dass diese Technik auch in anderen Anwendungen der regenerativen Medizin nützlich sein wird. Diese Technik kann auf andere Anwendungen der regenerativen Medizin angewendet werden, die von einem injizierbaren, biologisch abbaubaren Biomaterial-Gerüstsystem mit dem Potenzial für eine anhaltende Wirkstofffreisetzung profitieren würden. Beginnen Sie mit der Zugabe von Essigsäure und gereinigtem Chitosan zu einer 10-Milliliter-Luer-Lockspritze, um eine Chitosanlösung mit einem Gewicht von 6% zu bilden.Verbinden Sie mit einem weiblichen Luer-Lock-Stecker zwei Luer-Lock-Spritzen und mischen Sie die Lösung dann hin und her, bis sich das Chitosan in der Asketsäure vollständig aufgelöst hat. Geben Sie nun 100 Mikroliter der Genipinlösung in die Chitosan-haltige Spritze und mischen Sie 30 Sekunden lang zwischen den Spritzen hin und her, dann werfen Sie die Mischung aus der Spritze auf eine 35-Millimeter-Petrischale. Die Petrischale mit Paraffinfolie abdecken und über Nacht bei 37 Grad Celsius in befeuchteter Atmosphäre inkubieren.Verwenden Sie einen Spatel, um das Hydrogel in kleinere Stücke zu brechen, und legen Sie dann einen Filter der gewünschten Maschenweite in die Rückseite einer sauberen 10-Milliliter-Spritze. Die zerbrochenen Gelstücke in die mit dem Filter versehene Spritze geben und 6 Milliliter doppelt destilliertes Wasser hinzufügen. Verbinden Sie die Spritze über einen Luer-Schlossanschluss mit einer anderen sauberen 10-Millimeter-Spritze.Drücken Sie das Gel-Wasser-Gemisch durch die Spritze mit dem Filter, um Mikrogele zu erzeugen. Öffnen Sie nach der ersten Filtration die Spritze mit dem Filter und geben Sie die Mischung wieder in diese Spritze. Zwingen Sie das Gemisch erneut durch den Filter.Übertragen Sie nun die gefilterte Gelmischung in ein konisches 50-Milliliter-Rohr und fügen Sie doppelt destilliertes Wasser hinzu, um das Volumen auf 20 Milliliter zu bringen. Wirbeln Sie die Lösung um, um eine homogene Lösung zu erhalten. Die Mikrogele bei 100 mal g für 5 Minuten bei Raumtemperatur zentrifugieren.Entfernen Sie nach der Zentrifugation die obere wässrige Phase und resuspendieren Sie die Mikrogele in 10 Millilitern 70% Ethanol, dann wirbeln Sie die Mikrogele auf und legen Sie sie eine Stunde lang unter UV-Licht, um sie zu sterilisieren. Zentrifugieren Sie nun die Mikrogele bei 1000 mal g für 5 Minuten bei Raumtemperatur. Entsorgen Sie das Ethanol und spülen Sie es 3 Mal mit doppelt destilliertem Wasser ab.Resuspendiert die Mikrogelpellets in einem gleichen Volumen doppelt destilliertem Wasser. Mit dem Anstieg des pH-Wertes zeigten die Mikrogele eine Abnahme der Schwellung, wie sie durch die Änderung des Feret-Durchmessers dargestellt wird. Auch die Größe der Mikrogelpartikel hängt von der Porengröße des verwendeten Filters ab.Nummer 200 Mesh produzierte kleine Partikel, während Nummer 100 Mesh zu großen Partikeln führte. Das Vorhandensein von Mikrogelen an der verletzten Stelle förderte die Knorpelregeneration. Die Färbung von Alcian Blue Hämatoxylin zeigte, dass Mikrogele, die in das verletzte Gewebe injiziert wurden, eine frühe Knochenstabbildung verhinderten und Mikrogele, die mit den bioaktiven Wirkstoffen SDF-1a und TGF-B3 beladen waren, die Knorpelbildung förderten.Es ist wichtig sicherzustellen, dass der Drahtgeflechtfilter korrekt in die Spritze eingesetzt wird, damit eine effektive Filterung stattfinden kann. Es ist auch wichtig, die Filtration einige Male zu wiederholen, um eine homogene Verteilung der Mikrogelgröße zu gewährleisten. Diese Mikrogele können auf eine Vielzahl von Tissue-Engineering-Anwendungen angewendet werden, die ein Biomaterial-Gerüstsubstrat erfordern, das das Potenzial für eine anhaltende Freisetzung von Therapeutika hat.

fabrication-size-controlled-emulsion-free-chitosan-genipin-microgels

Research

Forschung

JoVE Journal

Bioengineering

Biotechnik

Eine große Hürde in der aktuellen Stammzelltherapien ist die Bestimmung der effektivste Methode, diese Zellen zu Wirtsgewebe zu liefern. Hier beschreiben wir eine Chitosan-basierte Methode, die Lieferung effizienter und einfacher in Ansatz ist, während es aus Fettgewebe gewonnenen Stammzellen, ihre Multipotenz aufrecht zu erhalten.

Der Bau einer Kollagen-Hydrogel für die Lieferung von Stem Cell-beladenen Chitosan-Mikrokügelchen

Ein bioprinter wurde verwendet, um strukturierte Hydrogele auf einem Opfer-Form zu erstellen. Das Poloxamer Form wurde mit einem zweiten Hydrogel verfüllt und dann eluiert, so dass Hohlräume, die mit einem dritten Hydrogel gefüllt wurden. Diese Methode verwendet schnelle Elution und gute Bedruckbarkeit von Poloxamers zu komplexen Architekturen aus Biopolymeren zu generieren.

Drucken Thermoresponsive Reverse-Formen für die Erstellung von Gemusterte Zweikomponenten-Hydrogele für 3D Zellkultur

Wir präsentieren eine einfache Methode, um eine biologisch abbaubare Gelatine-basierte Wirkstofffreisetzung Plattform herzustellen, die magneto-thermisch anspricht. Dies wurde durch den Einbau von superparamagnetischen Eisenoxidnanopartikel und Poly (N-isopropylacrylamide- co -acrylamid) innerhalb eines kugelförmigen Gelatinemikro Netzwerk von Genipin, System in Verbindung mit einem magnetischen Wechselfeld Anwendung vernetzt erreicht.

Magnetisches Wechselfeld-Responsive Hybrid Gelatine Mikrogele der gezielten Medikamentenapplikation

Injizierbare tissue engineering Gerüst aus Poly (N-isopropylacrylamid) -Pfropf-Chondroitinsulfat Mikroteilchen (PNIPAAm-g-CS) -haltigen Alginat besteht, wurde hergestellt. Die Haftfestigkeit, Quelleigenschaften und Biokompatibilität in vitro sind in dieser Studie untersucht. Die Charakterisierungstechniken hier entwickelt, können auf andere thermogelierende Systeme anwendbar sein.

Synthese von thermogelierenden Poly (N-isopropylacrylamid) -Pfropf-Chondroitinsulfat Composites mit Alginate Mikroteilchen für Tissue Engineering

Freie Lösung Kapillarelektrophorese ist eine schnelle, kostengünstige und robuste Analysemethode, die die quantitative Überwachung chemischer Reaktionen in Echtzeit ermöglicht. Die Nützlichkeit für eine schnelle, bequeme und präzise Analyse wird hier durch die Analyse von kovalenten Peptidtransplantaten auf Chitosanfilme für eine verbesserte Zelladhäsion demonstriert.

Kapillarelektrophorese zum Monitor Peptid Verpflanzen auf Chitosanfilme in Echtzeit

Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung von elastischen 3D makroporöse Microcryogels durch die Integration von Microfabrication mit Cryogelation Technologie. Beim Laden mit Zellen, entstehen 3D Microtissues, die kann leicht injizierte in Vivo , regenerative Therapie zu erleichtern oder zu Arrays für in-vitro- Hochdurchsatz-Drogen-Screening montiert.

3D Microtissues für injizierbare Regenerative Therapie und Hochdurchsatz-Drogen-Screening

Hier beschreiben wir eine einfache Zubereitung von Chitosan-basierten injizierbaren Hydrogele mit dynamischen Imin Chemie. Methoden der Hydrogel mechanische Festigkeit und seine Anwendung in 3D Zellkultur anpassen werden vorgestellt.

Vorbereitung der Chitosan-basierten injizierbaren Hydrogele und deren Anwendung in 3D Zellkultur

Präsentiert hier ist eine Methode für den 3D-Bioprinting von Gelatine Methacryloyl.

Protokolle des 3D-Bioprintings von Gelatine Methacryloyl Hydrogel-basierten Bioinks

Hier wird eine milde 3D-Drucktechnik vorgestellt, die durch abwechselnd viskos-inertiale Kräfte angetrieben wird, um den Bau von Hydrogel-Mikroträgern zu ermöglichen. Hausgemachte Düsen bieten Flexibilität und ermöglichen einen einfachen Austausch für verschiedene Materialien und Durchmesser. Zellbindende Mikroträger mit einem Durchmesser von 50-500 μm können erhalten und für die weitere Kultivierung gesammelt werden.

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Diese Arbeit beschreibt einfache, anpassungsfähige und kostengünstige Methoden, um Mikrogele mit Extrusionsfragmentierung herzustellen, die Mikrogele zu injizierbaren granularen Hydrogelen zu verarbeiten und die granularen Hydrogele als Extrusionsdruckfarben für biomedizinische Anwendungen aufzutragen.

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Erfahren Sie die Herstellung biokompatibler Chitosan-Mikrogele ohne giftige Emulsionen für Tissue-Engineering. Diese Methode ermöglicht präzise Größenkontrolle und nachhaltige Wirkstofffreisetzung für regenerative Medizin.

Herstellung von größenkontrollierten und emulsionsfreien Chitosan-Genipin-Mikrogelen für Tissue-Engineering-Anwendungen

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