Name: Herstellung von antibakteriellen Graphenoxid/Kupfer-Nanokompositen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-10-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 57 s
Description: Erfahren Sie die Herstellung von antibakteriellen Graphenoxid/Kupfer-Nanokompositen zur Bekämpfung resistenter Bakterien. Diese kostengünstige Methode ermöglicht die großtechnische Produktion biokompatibler Materialien für biomedizinische Anwendungen.

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1. Herstellung der GO/Cu-Nanokomposite
HINWEIS: Die Größe und Morphologie der Cu-Nanopartikel, die auf den GO-Nanoblättern wachsen, werden durch den Grad der GO-Oxidation, die Konzentration des Cu-Vorläufers und die Konzentration des Reduktionsmittels26 bestimmt.
<ol><li>Bereiten Sie 10 ml 1 mg/ml GO-Suspension in einer Glasflasche vor. Die GO-Suspension wird 1 h lang beschallt, bis GO gut in destilliertem (DI) Wasser dispergiert ist.</li>
	<li>Bereiten Sie eine 20 mM CuCl2-Lösung in einem Glasfläschchen vor. Die CuCl2-Lösung wird beschallt, bis CuCl2 gut in DI-Wasser dispergiert ist.</li>
	<li>Geben Sie 10 mL der 20 mM CuCl2-Lösung in die GO-Lösung und beschallen Sie das Gemisch 1 h lang bei 70 °C.</li>
	<li>Bereiten Sie eine 20 mM NaBH4-Lösung vor. ACHTUNG: Dieses Verfahren muss in einem chemischen Abzug durchgeführt werden. Eine Redoxreaktion tritt auf, sobald das Reduktionsmittel NaBH4 in das Wasser eingebracht wird. Bereiten Sie die NaBH4-Lösung unmittelbar vor dem Experiment vor.</li>
	<li>Zubereitung der Mischung aus NaBH4, GO und CuCl2<ol><li>Geben Sie 20 mL der 20 mM NaBH4-Lösung zu der GO- und CuCl2-Mischung , während Sie mit einem Magnetstab bei 200 U/min umrühren. Nach Zugabe der NaBH4-Lösung 30 Minuten lang kontinuierlich rühren. ACHTUNG: Dieses Verfahren muss in einem chemischen Abzug durchgeführt werden.</li>
	</ol></li>
	<li>Zentrifugation des Gemisches<ol><li>Das Gemisch aus Schritt 1.5.1 wird in ein Zentrifugenröhrchen überführt. Die Lösung wird bei 23.000 × g 10 min bei Raumtemperatur zentrifugiert. Entsorgen Sie den Überstand. ACHTUNG: Halten Sie beim Betrieb der Zentrifuge immer das Gleichgewicht, indem Sie Röhrchen mit gleichem Gewicht platzieren.</li>
	</ol></li>
	<li>Resuspendieren Sie das GO/Cu-Nanokomposit-Gemisch mit 10 ml DI-Wasser und beschallen Sie sie, damit sich der Niederschlag gleichmäßig in der Lösung verteilen kann.</li>
	<li>Die Lösung wird bei 23.000 × g 10 min bei Raumtemperatur zentrifugiert; Entfernen Sie dann den Überstand.</li>
	<li>Wiederholen Sie die Schritte 1.7-1.8 noch einmal, um die nicht umgesetzten Chemikalien zu entfernen.</li>
	<li>Geben Sie 1 ml destilliertes Wasser zu den GO/Cu-Nanokompositen und beschallen Sie die Mischung, um das Sediment gleichmäßig in der flüssigen Phase zu verteilen. HINWEIS: Sammeln Sie alle GO/Cu-Nanokompositlösungen in einem konischen Röhrchen.</li>
	<li>Die Lösung wird über Nacht bei -60 °C unter Vakuum gefriergetrocknet, bis die GO/Cu-Nanokomposite vollständig getrocknet sind, und erhält GO/Cu-Nanokomposit-Pulver.</li>
	<li>Lagern Sie das GO/Cu-Nanokomposit-Pulver bis zur Verwendung bei -20 °C.</li>
</ol>2. Vorbereitung der Bakterien für den antibakteriellen Test
ACHTUNG: Dieses Verfahren muss in einer biologischen Sicherheitswerkbank mit einer Alkohollampe durchgeführt werden. Bakterielle Abfälle müssen vor der Entsorgung autoklaviert werden. Beim Umgang mit antibiotikaresistenten Bakterien müssen Handschuhe, Kittel und Masken getragen werden, und die Hände müssen nach dem Versuch mit Seife oder Händedesinfektionsmittel gewaschen werden. Immer gründlich desinfizieren; Kommt es zu einer Kontamination im Versuchsbereich, desinfizieren Sie diese sofort mit 70%igem Ethanol.
<ol><li>Vorbereitung von Bakterienkulturmedien<ol><li>Mischen Sie 20 g tryptisches Soja-Agar und 500 ml destilliertes Wasser in einem Kolben. Die Mischung im Autoklaven bei 121 °C 15 min sterilisieren.</li>
		<li>Bereiten Sie die Agarplatte vor, indem Sie 15 ml der Agarlösung in eine Petrischale gießen, bevor der Agar aushärtet. Lagern Sie die Agarplatte bis zur Verwendung bei 4 °C. HINWEIS: Dies muss schnell erfolgen, bevor die Agarlösung aushärtet. Um eine Kontamination zu vermeiden, sterilisieren Sie die Agarplatte während der Aushärtung 15 min lang mit UV.</li>
		<li>Mischen Sie 15 g tryptische Sojabrühe (TSB) und 500 ml destilliertes Wasser in einem Kolben. Die Mischung im Autoklaven bei 121 °C 15 min sterilisieren.</li>
		<li>Aliquotieren Sie 40-50 mL der Bouillonlösung in ein konisches 50-ml-Röhrchen. Die Brühe bis zur Verwendung bei 4 °C lagern. HINWEIS: Um eine Kontamination zu vermeiden, sterilisieren Sie die aliquotierte Brühe 15 Minuten lang mit UV.</li>
	</ol></li>
	<li>Bakterienkultur<ol><li>Die MSRA- oder P. aeruginosa-Stammlösung mit einer Schlaufe auf der Agarplatte inokulieren. Die Agarplatte wird bei 37 °C mit einem Schüttelinkubator 24 h lang inkubiert.</li>
		<li>Impfen Sie eine Kolonie der Bakterien mit einer Schlaufe in 10 ml der Brühe. Die Brühe wird bei 37 °C mit einem Schüttelbrutschrank bei 200 U/min 24 h lang inkubiert.</li>
		<li>Die Schritte 2.2.1 bis 2.2.2 werden noch einmal wiederholt, um Bakterien mit den gleichen Eigenschaften zu erhalten.</li>
		<li>Nach 24 h die Bakterienlösung mit sterilem destilliertem Wasser seriell zehnfach verdünnen. 100 μl der verdünnten Bakteriensuspension auf die Agarplatte impfen und mit einem Streuer verteilen. Die Agarplatte wird bei 37 °C mit einem Schüttelinkubator 24 h lang inkubiert. HINWEIS: Der Verdünnungsgrad ist abhängig von den Bakterien. Ziel ist es, weniger als 100 Völker in einer Agarplatte vorzubereiten.</li>
		<li>Zählen Sie die Bakterienkolonien nach der 24-stündigen Inkubation, um die koloniebildende Einheit (KBE) anhand von Gleichung (1) zu bestimmen. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/66762/66762eq01.jpg" style="margin: auto;"> (1)</li>
		<li>Wiederholen Sie die Schritte 2.2.4-2.2.5 mindestens 3x, um zu bestätigen, ob die KBE der Bakterien relativ konstant ist.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Antibakterieller Test mit der Methode der Mikroverdünnungsbrühe
<ol><li>Tag 1) Eine Kolonie der Bakterien aus der Agarplatte mit einer Schlaufe in 10 ml Brühe impfen. Die Brühe wird bei 37 °C mit einem Schüttelbrutschrank bei 200 U/min 24 h lang inkubiert.</li>
	<li>Tag 2) Bereiten Sie das GO/Cu-Nanokomposit-Gemisch in mindestens drei Konzentrationen mit Dulbeccos phosphatgepufferter Kochsalzlösung (DPBS) vor. Die GO/Cu-Nanokomposit-Suspension wird beschallt, bis die GO/Cu-Nanokomposite in DPBS gut dispergiert sind. HINWEIS: In diesem Protokoll wurden 500, 250, 125 und 62,5 μg/ml des GO/Cu-Nanokomposit-Gemisches getestet.</li>
	<li>Bereiten Sie die Steuerungslösungen vor. Die Negativkontrolle ist DPBS, und die Positivkontrolle ist 1% einer Penicillin/Streptomycin-Lösung in DPBS, die die Bakterien abtötet.</li>
	<li>Geben Sie 100 μl der GO/Cu-Nanokomposit-Suspension und die Kontrolllösungen in 96-Well-Platten. Fügen Sie alle Proben in dreifacher Ausfertigung hinzu. HINWEIS: Sterilisieren Sie die Proben 15 Minuten lang mit UV, bevor Sie sie auf Bakterien auftragen.</li>
	<li>Basierend auf der KBE nach 24 Stunden Inkubation die Bakteriensuspension mit TSB auf 1 × 106 KBE/ml verdünnen. HINWEIS: Die anfänglichen Suspensionskonzentrationen von MRSA und P. aeruginosa in unserer Studie betragen gemäß Schritt 2.2.5 jeweils 4,5 × 109 KBE/ml bzw. 3 × 109 KBE/ml. Bakterienkonzentrationen von 1 × 106 KBE/ml werden durch 4.500-fache bzw. 3.000-fache Verdünnung der Kulturen erhalten.</li>
	<li>Impfen Sie 100 μl der verdünnten Bakteriensuspension von 1 × 106 KBE/ml in die Probenvertiefungen in den 96-Well-Platten. Inkubieren Sie die 96-Well-Platten bei 37 °C mit einem Schüttelinkubator bei 200 U/min für 24 Stunden. HINWEIS: Die endgültige Bakterienkonzentration beträgt 5 × 105 KBE/ml nach dem Mischen mit 100 μl Probe.</li>
	<li>Tag 3) Mischen Sie die Probe und die Bakteriensuspensionen kräftig mit einer 200 μl Mikropipettenspitze. Verdünnen Sie das Proben-Bakterien-Gemisch seriell zehnfach mit sterilem destilliertem Wasser. HINWEIS: Der Verdünnungsgrad ist abhängig von den Bakterien. Ziel ist es, weniger als 100 Völker in einer Agarplatte vorzubereiten.</li>
	<li>100 μl der verdünnten Bakteriensuspension auf die Agarplatte impfen und mit einem Streuer verteilen. Die Agarplatte wird bei 37 °C mit einem Schüttelinkubator 24 h lang inkubiert.</li>
	<li>Tag 4) Zählen Sie die Bakterienkolonien und bestimmen Sie die KBE-Werte, um die antibakterielle Aktivität der GO/Cu-Nanokomposite anhand von Gleichung (2) zu bestätigen. <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/66762/66762eq02.jpg" style="margin: auto;"> (2)</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>Antibakterielle Graphenoxid/Kupfer-Nanokomposite für resistente Bakterien

<ol><li>Doron, S., Gorbach, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+infections%3A+Overview%5BTitle%5D)+AND+%22International+Encyclopedia+of+Public+Health%22%5BJournal%5D)">Bacterial infections: Overview.</a> International Encyclopedia of Public Health. , 273-282 (2008).</li>
<li>Van Duin, D., Paterson, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multidrug-resistant+bacteria+in+the+community%3A+An+update%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Dis+Clin+North+Am%22%5BJournal%5D)">Multidrug-resistant bacteria in the community: An update.</a> Infect Dis Clin North Am. 34 (4), 709-722 (2020).</li>
<li>Blair, J. M. A., Webber, M. A., Baylay, A. J., Ogbolu, D. O., Piddock, L. J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+antibiotic+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of antibiotic resistance.</a> Nat Rev Microbiol. 13 (1), 42-51 (2015).</li>
<li>Sánchez-López, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metal-based+nanoparticles+as+antimicrobial+agents%3A+An+overview%5BTitle%5D)+AND+%22Nanomaterials+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Metal-based nanoparticles as antimicrobial agents: An overview.</a> Nanomaterials (Basel). 10 (2), 292(2020).</li>
<li>Makabenta, J. M. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomaterial-based+therapeutics+for+antibiotic-resistant+bacterial+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Nanomaterial-based therapeutics for antibiotic-resistant bacterial infections.</a> Nat Rev Microbiol. 19 (1), 23-36 (2021).</li>
<li>Liang, X., Govindaraju, S., Yun, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+applicability+of+polyaniline+coated+gold+nanorods%3A+A+study+of+antibacterial+and+redox+activity%5BTitle%5D)+AND+%22BioChip+J%22%5BJournal%5D)">Dual applicability of polyaniline coated gold nanorods: A study of antibacterial and redox activity.</a> BioChip J. 12 (2), 137-145 (2018).</li>
<li>Niño-Martínez, N., Salas Orozco, M. F., Martínez-Castañón, G. A., Torres Méndez, F., Ruiz, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+bacterial+resistance+to+metal+and+metal+oxide+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of bacterial resistance to metal and metal oxide nanoparticles.</a> Int J Mol Sci. 20 (11), 2808(2019).</li>
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<li>Jang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+antibiofilm+nanocomposites%3A+Ag%2Fcu+bimetallic+nanoparticles+synthesized+on+the+surface+of+graphene+oxide+nanosheets%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Appl+Mater+Interfaces%22%5BJournal%5D)">Development of antibiofilm nanocomposites: Ag/cu bimetallic nanoparticles synthesized on the surface of graphene oxide nanosheets.</a> ACS Appl Mater Interfaces. 12 (32), 35826-35834 (2020).</li>
<li>Jang, J., Choi, Y., Tanaka, M., Choi, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+silver%2Fgraphene+oxide+nanocomposites+for+antibacterial+and+antibiofilm+applications%5BTitle%5D)+AND+%22J+Ind+Eng+Chem%22%5BJournal%5D)">Development of silver/graphene oxide nanocomposites for antibacterial and antibiofilm applications.</a> J Ind Eng Chem. 83, 46-52 (2020).</li>
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<li>Slavin, Y. N., Asnis, J., Häfeli, U. O., Bach, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metal+nanoparticles%3A+Understanding+the+mechanisms+behind+antibacterial+activity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nanobiotechnology%22%5BJournal%5D)">Metal nanoparticles: Understanding the mechanisms behind antibacterial activity.</a> J Nanobiotechnology. 15 (1), 65(2017).</li>
<li>Ismail, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sonochemical+synthesis+of+a+copper+reduced+graphene+oxide+nanocomposite+using+honey+and+evaluation+of+its+antibacterial+and+cytotoxic+activities%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Mol+Biosci%22%5BJournal%5D)">Sonochemical synthesis of a copper reduced graphene oxide nanocomposite using honey and evaluation of its antibacterial and cytotoxic activities.</a> Front Mol Biosci. 9, 995853(2022).</li>
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<li>Yang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+antibacterial+stable+reduced+graphene+oxide+nanocomposites+loaded+with+cuprous+oxide+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22J+Colloid+Interface+Sci%22%5BJournal%5D)">Long-term antibacterial stable reduced graphene oxide nanocomposites loaded with cuprous oxide nanoparticles.</a> J Colloid Interface Sci. 533, 13-23 (2019).</li>
<li>Yang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graphene+oxide%2Fcopper+nanoderivatives-modified+chitosan%2Fhyaluronic+acid+dressings+for+facilitating+wound+healing+in+infected+full-thickness+skin+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Nanomedicine%22%5BJournal%5D)">Graphene oxide/copper nanoderivatives-modified chitosan/hyaluronic acid dressings for facilitating wound healing in infected full-thickness skin defects.</a> Int J Nanomedicine. 15, 8231-8247 (2020).</li>
<li>Mao, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graphene+oxide-copper+nanocomposites+suppress+cariogenic+streptococcus+mutans+biofilm+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Nanomedicine%22%5BJournal%5D)">Graphene oxide-copper nanocomposites suppress cariogenic streptococcus mutans biofilm formation.</a> Int J Nanomedicine. 16, 7727-7739 (2021).</li>
<li>Ravikumar, V., Mijakovic, I., Pandit, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antimicrobial+activity+of+graphene+oxide+contributes+to+alteration+of+key+stress-related+and+membrane+bound+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Nanomedicine%22%5BJournal%5D)">Antimicrobial activity of graphene oxide contributes to alteration of key stress-related and membrane bound proteins.</a> Int J Nanomedicine. 17, 6707-6721 (2022).</li>
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<li>Rajapaksha, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibacterial+properties+of+graphene+oxide-copper+oxide+nanoparticle+nanocomposites%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Appl+Bio+Mater%22%5BJournal%5D)">Antibacterial properties of graphene oxide-copper oxide nanoparticle nanocomposites.</a> ACS Appl Bio Mater. 2 (12), 5687-5696 (2019).</li>
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<li>Ramos, M. K., Zarbin, A. J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graphene%2Fcopper+oxide+nanoparticles+thin+films+as+precursor+for+graphene%2Fcopper+hexacyanoferrate+nanocomposites%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Surf+Sci%22%5BJournal%5D)">Graphene/copper oxide nanoparticles thin films as precursor for graphene/copper hexacyanoferrate nanocomposites.</a> Appl Surf Sci. 515, 146000(2020).</li>
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</ol>

<table><tbody><tr><td>Antibiotikum-Antimykotikum</td><td>Gibco</td><td>15240062</td><td></td></tr><tr><td>Klinische MDR-Bakterienstämme&nbsp;</td><td>Chung-Ang University Hospital (Seoul, Südkorea)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kupfer(II)-chlorid-Dihydrat</td><td>Duksan</td><td>10125-13-0</td><td></td></tr><tr><td>Feldemissions-Rasterelektronenmikroskop (FE-REM)</td><td>Carl Zeiss</td><td>SIGMA</td><td></td></tr><tr><td>Graphenoxid</td><td></td><td>Sigma 796034</td><td></td></tr><tr><td>Natriumborhydrid</td><td>Sigma</td><td>71320</td><td></td></tr><tr><td>Transmissionselektronenmikroskopie (TEM)</td><td>JEOL</td><td>JEM-2100</td><td></td></tr><tr><td>Tryptische Soja-Agar</td><td>BD difco</td><td>236950</td><td></td></tr><tr><td>Tryptische Sojabrühe</td><td>BD difco</td><td>211825</td><td></td></tr></tbody></table>

herstellung von antibakteriellen graphenoxid/kupfer-nanokompositen

Fabrication of Antibacterial Graphene Oxide/Copper Nanocomposites

Transmissionselektronenmikroskopie (TEM), Rasterelektronenmikroskopie (REM) und energiedispersive Röntgenspektroskopie (EDS) wurden durchgeführt, um die Bildung von GO/Cu-Nanokompositen zu bestätigen. Abbildung 1A,B zeigt, dass heterogene Cu-Nanopartikel auf den GO-Blättern gezüchtet wurden. Wie in Abbildung 1C gezeigt, bestätigte die EDS-Kartierung, dass es sich bei den Partikeln auf dem GO-Blatt um Cu-Nanopartikel handelte.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66762/66762fig01.jpg"> Abbildung 1: Eigenschaften der GO/Cu-Nanokomposite. (A) Transmissionselektronenmikroskopie, (B) Rasterelektronenmikroskopie und (C) energiedispersive Röntgenspektroskopie-Bilder, die die Bildung von GO/Cu-Nanokompositen bestätigen. Maßstabsbalken = 500 nm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66762/66762fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
Die aus den Wunden der Patienten isolierten Bakterienstämme Methicillin-resistenter Staphylococcus aureus (MRSA) und Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) weisen Resistenzen gegen verschiedene Antibiotika auf, wie in Tabelle 1 und Tabelle 2 beschrieben. Abbildung 2A,B veranschaulicht die antibakterielle Wirksamkeit der GO/Cu-Nanokomposite gegen MRSA bzw. P. aeruginosa. Insbesondere das Bakterienwachstum wurde signifikant gehemmt, als die Konzentration der GO/Cu-Nanokomposite zunahm. Wir fanden heraus, dass 125 μg/ml der synthetisierten GO/Cu-Nanokomposite für eine wirksame antibakterielle Aktivität gegen MRSA und P. aeruginosa ausreichend waren. Konkret wurden 99,8 % der MRSA und 84,7 % der P. aeruginosa durch die Behandlung mit 500 μg/ml GO/Cu-Nanokompositen eliminiert. Die unterschiedlichen Prozentsätze der bakteriellen Eradikation sind auf die unterschiedlichen biologischen Strukturen von grampositiven und gramnegativen Bakterien zurückzuführen. Grampositive Bakterien, wie z. B. MRSA, besitzen eine Zellwand, die zu über 90 % aus Peptidoglykan besteht. Im Gegensatz dazu haben gramnegative Bakterien, wie z.B. P. aeruginosa, nur 5%-20% Peptidoglycan in ihren Zellwänden mit einer äußeren Membran. Diese äußere Membran verleiht gramnegativen Bakterien eine robuste Resistenz gegen antimikrobielle Wirkstoffe, indem sie das Eindringen dieser Wirkstoffe behindert27. Nichtsdestotrotz können GO/Cu-Nanokomposite antibiotikaresistente Bakterien effektiv eliminieren.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66762/66762fig02v2.jpg"> Abbildung 2: Antibakterielle Wirkung der GO/Cu-Nanokomposite. (A) MRSA und (B) Pseudomonas aeruginosa aus klinischen Wunden. Die Daten werden als Mittelwert ± SEM (n = 4) dargestellt. p &lt; 0,001; p &lt; 0,0001. MRSA = Methicillin-resistenter Staphylococcus aureus; P = Positivkontrolle; N = Negativkontrolle. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66762/66762fig02largev2.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Antibiotika</td>
			<td>MHK (μg/ml)</td>
			<td>Auslegung</td>
		</tr><tr><td>Clindamycin</td>
			<td>≤ 0,25</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Ciprofloxacin</td>
			<td>≥ 8</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Erythromycin</td>
			<td>≥ 8</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Gentamicin</td>
			<td>≥ 16</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Mupirocin</td>
			<td>≥ 512</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Penicillin-G</td>
			<td>≥ 0,5</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Tigecyclin</td>
			<td>≤ 0.12</td>
			<td>S</td>
		</tr></tbody></table>Tabelle 1: Antibiotika-Empfindlichkeitstest gegen Methicillin-resistenten Staphylococcus aureus. Abkürzungen: MIC = minimale Hemmkonzentration; S = anfällig; R = widerstandsfähig.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Antibiotika</td>
			<td>MHK (μg/ml)</td>
			<td>Auslegung</td>
		</tr><tr><td>Cefotaxim</td>
			<td>32</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Ciprofloxacin</td>
			<td>≤ 0,25</td>
			<td>S</td>
		</tr><tr><td>Gentamicin</td>
			<td>2</td>
			<td>S</td>
		</tr><tr><td>Minocyclin</td>
			<td>≥ 16</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Ticarcillin/CA</td>
			<td>32</td>
			<td>Ich</td>
		</tr><tr><td>Tigecyclin</td>
			<td>≥ 8</td>
			<td>R</td>
		</tr><tr><td>Trimethoprim/Sulfa</td>
			<td>80</td>
			<td>R</td>
		</tr></tbody></table>Tabelle 2: Antibiotika-Empfindlichkeitstest gegen P. aeruginosa. Abkürzungen: MIC = minimale Hemmkonzentration; S = anfällig; I = Mittelstufe; R = widerstandsfähig.

Herstellung von antibakteriellen Graphenoxid/Kupfer-Nanokompositen

Antibiotics are currently the most used antibacterial treatment for killing bacteria. However, bacteria develop resistance when continually overexposed to ...

fabrication-of-antibacterial-graphene-oxidecopper-nanocomposites

Research

Forschung

JoVE Journal

Bioengineering

Biotechnik

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Generation skalierbar, Metallic Hochseitenverhältnis Nanokomposite in einer biologischen Flüssigmedium

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