Name: Methylierte DNA Immunpräzipitation (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-01-02T00:00:00.000+00:00
Duration: 21 min 24 s
Description: Lernen Sie die Methode der methylisierten DNA-Immunpräzipitation (MeDIP) zur spezifischen Isolierung methylierter DNA. Dieses zweitägige Protokoll nutzt Antikörper gegen 5-Methylcytosin und ermöglicht epigenetische Studien zu Entwicklung und Krankheit.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Wir wünschen den Mitgliedern des Brown und Lam-Labors für ihre Teilnahme an der kritischen Beurteilung dieses Video und Artikel danken. Diese Arbeit wurde durch Mittel aus der Canadian Institutes for Health Research und Michael Smith Foundation for Health Research unterstützt.

DNA-Extraktion und Probenvorbereitung DNA aus einer Vielzahl von unterschiedlichen Proben (kultivierten Zellen, Frischplasma sowie Formalin-fixierten Paraffin eingebetteten Gewebe) kann für MeDIP verwendet werden. Es ist wichtig, hochreine DNA ohne assoziierte Proteine ​​wie Histone verwenden. Es ist auch wichtig, so viel wie möglich zu entfernen RNA aus der Probe, wie es mit den beiden DNA-Quantifizierung und Antikörperbindung stören können. Die DNA-Menge für MeDIP verwendet werden kann von 200 ng bis 1 ug je nach der Menge der DNA verfügbaren Bereich. Um dies zu demonstrieren Protokoll wird 1 pg DNA verwendet werden. Das folgende Protokoll wird eine hohe Qualität doppelsträngigen DNA aus kultivierten Zellen. Andere Protokolle sollten für die Extraktion von DNA aus anderen Probentypen eingesetzt werden. <ol><li> Add 400 ul der Verdauung Puffer, um sich ein Zellpellet in einem 1,7 ml Eppendorf-Röhrchen. </li><li> Add 100 ug Proteinase K, um das Rohr, beimpft und über Nacht bei 50 ° C. </li><li> Add 500 ul Phenol pH 7 und vorsichtig mischen, aber gründlich durch Invertieren. </li><li> Spin bei 13 000 g für 10 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Entfernen wässrige (obere) Teil in ein neues Röhrchen. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 3 bis 5 einmal. </li><li> Add 500 ul 01.01 Phenol / Chloroform pH 7 und vorsichtig mischen, aber gründlich durch Invertieren. </li><li> Spin bei 13 000 g für 10 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Entfernen wässrige (obere) Teil in ein neues Röhrchen. </li><li> Add 40 ug RNase A und Inkubation 1 Stunde bei 37 ° C. </li><li> Add 500 ul Phenol pH 7 und vorsichtig mischen, aber gründlich durch Invertieren. </li><li> Spin bei 13 000 g für 10 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Entfernen wässrige (obere) Teil in ein neues Röhrchen. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 11 bis 13 einmal. </li><li> Add 500 ul 01.01 Phenol / Chloroform pH 7 und vorsichtig mischen, aber gründlich durch Invertieren. </li><li> Spin bei 13 000 g für 10 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Entfernen wässrige (obere) Teil in ein neues Röhrchen. </li><li> Add 1:10 Volumen 3 M Natriumacetat (40 ul) und gut mischen. </li><li> Add 2 Bände (900 ul) von 100% Ethanol, gut mischen und bei -20 ° C für 20 Minuten. </li><li> Spin bei 13 000 g für 20 Minuten bei 4 ° C. </li><li> Entfernen Ethanol, pulszentrifugieren, und entfernen Sie Rest-Ethanol. </li><li> Add 500 ul kaltem 70% igem Ethanol zu waschen. Spin bei 13 000 g für 20 Minuten bei 4 ° C. </li><li> Nehmen Sie 70% Ethanol, Puls spinnen, und entfernen Sie Restethanol durch Pipettieren. </li><li> An der Luft trocknen Pellet mit der Kappe öffnen für 10 Minuten bei Raumtemperatur, um alle Spuren von Rest-Ethanol zu entfernen. </li><li> Resuspendieren DNA in 50 ul sterilisiert dH2O Nacht bei 4 ° C. </li><li> Quantifizierung der DNA mit einem Spektralphotometer NanoDrop. Ein A ​​260: A 280-Verhältnis von 1,8 ist ideal. </li><li> Bestimmen DNA Qualität und Größenordnung auf einem Agarosegel mit 100 bp Leiter. So wenig wie 10 ng der genomischen DNA kann auf einem 1,7% Agarosegel laufen gelassen werden, gefolgt von Färbung mit einem Farbstoff, der sehr empfindlich auf kleine Mengen an DNA wie SYBR Gold ist. </li><li> In einem silikonisierten Röhrchen pro Probe vorzubereiten 1 ug DNA in einem Gesamtvolumen von 50 ul mit dem Rest der Band machte sich mit einem sterilisierten dH 2 O. </li></ol> DNA Beschallung DNA Beschallung und die MeDIP Protokoll muss in siliconzied Rohren durchgeführt werden, um unspezifische Bindung von Proteinen an Rohrwandungen zu verhindern. Optimale Beschallung Zeiten für die DNA-Proben werden nach dem Grad der DNA-Probe Fragmentierung von Gel-Elektrophorese (Schritt 27) bestimmt wird. Zum Beispiel sollten DNA aus kultivierten Zellen extrahiert von sehr hohem Molekulargewicht, und wird nachträglich verlangen mehr Beschallung als DNA von Archivalien Proben, die oft teilweise abgebaut extrahiert. Wenn Proben gleichmäßig hohem Molekulargewicht sind, ist es an dieser Stelle sinnvoll, mit der Beschallung in diesem Protokoll, ohne zu überprüfen jede Probe einzeln beschrieben vorgehen. Wenn Proben mit archivalischen Proben fragmentiert sind, wird es notwendig sein, um die Beschallung Verfahren wahrscheinlich durch eine Verringerung der Beschallung mal bis 300-100bp Fragmente erhalten anzupassen. Wenn Sie erwarten, dass Proben, die teilweise abgebaut, Optimierung von Ultraschall-Parameter können auf einer repräsentativen Stichprobe von denen Interesse durchgeführt werden, zu verarbeiten. Basierend auf den Grad der DNA-Fragmentierung von Gel-Elektrophorese (Schritt 27) beobachtet, kann der Experimentator im Voraus die optimale Beschallung Zeit für die Probe. Hier beschreiben wir eine Methode, um 300-1000 bp DNA-Fragmente durch Beschallung erhalten eine automatisierte Beschallung Gerät (Bioruptor aus Diagenode, UCD-200 TM) mit hohem Molekulargewicht DNA. <ol><li> Wasser in Biorupter müssen bei 4 ° C. </li><li> Mit Ultraschall für 7 Minuten auf die automatischen Einstellungen (30 sec auf 30 sec off bei maximaler Leistung). </li><li> Entfernen 800 ng (40 ul) beschallt Produkt und in silikonisierten 1,7 ml Zentrifugenröhrchen für die Immunpräzipitation (IP)-Reaktion. </li><li> Beiseite restlichen 200 ng (10 ul), die als Eingabe dienen (IN) Referenz-DNA (lagern bei 4 ° C). </li&gt; </ol> IMMUNOPRECIPITATON von methylierter DNA <ol><li> Denaturieren die DNA, die für IP Reaktion (800 ng) bei 95 ° C wird für 10 Minuten in einem Wasserbad verwendet. </li><li> Coole sofort auf Eis. Lassen DNA vollständig abkühlen lassen (ca. 5 min auf Eis), bevor Sie fortfahren mit dem nächsten Schritt. </li><li> Add 5 ug monoklonaler Antikörper. </li><li> Fügen Sie IP-Puffer (verwendet bei Raumtemperatur in diesem Protokoll) auf ein Endvolumen von 500 ul. </li><li> Inkubieren für 2 Stunden bei 4 ° C in Drehrohr Inhaber. </li><li> Kurz vor Schritt 5 abgeschlossen ist, bereiten Dynabeads durch Waschen (Schritte 6-11). Zunächst resuspendieren die Perlen gründlich in die Flasche durch Vortexen. </li><li> Transfer-30 pl (~ 2 x 10 7) des resuspendierten Dynabeads pro Reaktion plus 1, in eine neue silikonisierten Röhrchen (zum Beispiel, wenn dabei 8 Reaktionen, entfernen Sie genug Kugeln für 9, als 270 ul). </li><li> Das Röhrchen wird auf die magnetische Ablage für 2 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Pipette aus dem Überstand. Beim Entfernen Überstand, berühren Sie die Perlen gegen Innenwand (wo die Perlen der Magnet anziehen) mit der Pipettenspitze. </li><li> Entfernen Sie das Röhrchen aus dem Magneten und resuspendieren die Perlen in einem Überschuss Volumen von IP-Puffer (750 ul-1000 ul). Das Röhrchen wieder auf den magnetischen Halter für 2 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Wiederholen Sie die Wäsche noch einmal, und dann resuspendieren gewaschenen Beads in IP-Puffer in das ursprüngliche Volumen in Step 7 entfernt. </li><li> Add 30 ul gewaschen Dynabeads jedem IP Reaktion </li><li> Inkubieren in einem Drehrohr Halter für 2 Stunden bei 4 ° C. </li><li> Nach der Inkubation abgeschlossen ist, setzen Sie den Schlauch auf den magnetischen Halter für 2 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Pipette aus dem Überstand. Berühren Sie nicht die Innenwand des Rohres (wo die Perlen der Magnet anziehen) mit der Pipettenspitze. Add 500 ul von IP-Puffer. Mix der Inhalt des Röhrchens und legte sie zurück auf die magnetische Ablage für 2 Minuten. Wiederholen Sie die Wäsche mit 500 ul IP-Puffer einmal. </li><li> Nach dem Entfernen der Überstand aus der letzten Waschung resuspendieren die Perlen in 400 ul der Verdauung Puffer. </li><li> Behandeln Sie die Reaktion mit 100 ug Proteinase K und Inkubation über Nacht bei 50 ° C. </li></ol> REINIGUNG VON immunpräzipitiert DNA <ol><li> Add 500 ul 01.01 Phenol / Chloroform pH 7 und gründlich vortexen. </li><li> Spin bei 13 000 g für 10 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Entfernen wässrige (obere) Teil in ein neues Röhrchen. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1 bis 3, wenn die Grenzfläche zwischen der wässrigen und der organischen Schichten trüb erscheint. </li><li> Add 1 / 10 th Volumen 3 M Natriumacetat (40 ul) und Wirbel. </li><li> Add 1 ul Glykogen (20 ug / ul) und Wirbel. </li><li> Add 2 Bände (1000 ul) von 100% Ethanol, vortexen und bei -20 ° C für 20 Minuten. </li><li> Spin bei 13 000 g für 20 Minuten bei 4 ° C. </li><li> Entfernen Ethanol, pulszentrifugieren, und entfernen Sie Rest-Ethanol. </li><li> Add 500 ul kaltem 70% igem Ethanol zu waschen. Vortex kurz und drehen sich mit 13 000 g für 20 Minuten bei 4 ° C. </li><li> Nehmen Sie 70% Ethanol, Puls spinnen, und entfernen Sie Restethanol durch Pipettieren. </li><li> An der Luft trocknen Pellet mit der Kappe öffnen für 10 Minuten bei Raumtemperatur, um alle Spuren von Rest-Ethanol zu entfernen. </li><li> Resuspendieren DNA-Pellet in 10 ul sterilisiert dH 2 0. </li></ol> VALIDIERUNG VON PCR <ol><li> Sie können testen, um sicherzustellen, dass Ihre MeDIP Verfahren wird durch Ausführen der MeDIP Protokoll mit normalen menschlichen DNA (männlich oder weiblich) arbeiten, und anschließend Testen einer Region bekannt für Methylierung angereichert werden. </li><li> Nehmen Sie 30% der MeDIP Produkt PCR-Röhrchen, und weitere 30% der MeDIP Produkt auf ein anderes PCR-Röhrchen. </li><li> Setzen Sie 10 ng IN DNA in ein PCR-Röhrchen und 10 ng IN DNA in eine andere PCR-Röhrchen. Sie sollten nun vier separate PCR-Reaktionen einzurichten. </li><li> Führen Sie die PCR mit H19 und STRG-Primer wie in Tabelle 1 angegeben. </li><li> Bereiten Sie zwei Mastermix (eine für jedes Primer-Set) für PCR-Reaktionen mit 12,5 ul Gesamtvolumen wie in Tabelle 2 dargestellt. </li><li> Thermocycle der PCR unter Verwendung der in Tabelle 3 dargestellt. </li><li> Run 5 ul der PCR-Produkte auf einem 2% Agarosegel für die Visualisierung. </li><li> Die erwarteten Ergebnisse für eine erfolgreiche MeDIP sind in Tabelle 4 dargestellt. </li></ol> Tabellen Tabelle 1: H19 und STRG-Primer für PCR-Validierung. <table border="1"><tbody><tr><td> Primer Set </td><td> Vorwärts-Primer </td><td> Reverse-Primer </td><td> Erwartete Produkt-Größe </td></tr><tr><td> H19 </td><td> H19_F 5&#39;-cgagtgtgcgtgagtgtgag </td><td> H19_R 5&#39;-ggcgtaatggaatgcttgaa </td><td> 174 bp </td></tr><tr><td> CTRL (Kontrolle) </td><td> CTRL_F5&#39;-gagagcattagggcagacaaa </td><td> CTRL_R 5&#39;-gttcctcagacagccacattt </td><td> 139 bp </td></tr></tbody></table> Tabelle 2. Mastermix für die PCR-Reaktionen. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> H19 Mix (pro Rxn) </td><td> CTRL Mix (pro Rxn) </td></tr><tr><td&gt; ddH 2 O </td><td> 6,875 </td><td> 6,875 </td></tr><tr><td> 10x Buffer </td><td> 1,25 </td><td> 1,25 </td></tr><tr><td> dNTP-Mix (10 mM) </td><td> 0,25 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> MgCl 2 (50 mM) </td><td> 0,25 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> Grundierungen (H19_F / R oder CTRL_F / R) (10 uM jedes F / R) </td><td> 0,625 </td><td> 0,625 </td></tr><tr><td> Platinum Taq </td><td> 0,25 </td><td> 0,25 </td></tr></tbody></table> Tabelle 3. PCR thermocyling Bedingungen. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> 95 ° C </td><td> 05.00 </td></tr><tr><td rowspan="3"> 40X </td><td> 95 ° C </td><td> 00.30 </td></tr><tr><td> 56 ° C </td><td> 00.30 </td></tr><tr><td> 72 ° C </td><td> 00.15 </td></tr></tbody></table> Tabelle 4. Erwartete PCR-Ergebnisse für eine erfolgreiche MeDIP. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td colspan="2" align="center"> Template DNA </td></tr><tr><td> Primer verwendet </td><td> IN </td><td> IP </td></tr><tr><td> H19 </td><td> Positiv </td><td> Positiv </td></tr><tr><td> CTRL </td><td> Positiv </td><td> Negativ </td></tr></tbody></table>

<ol><li>Beck, S., Rakyan, V. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+methylome%3A+approaches+for+global+DNA+methylation+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Genet%22%5BJournal%5D)">The methylome: approaches for global DNA methylation profiling.</a> Trends Genet. 24, 231-237 (2008).</li>
<li>Lu, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics%2C+disease%2C+and+therapeutic+interventions%5BTitle%5D)+AND+%22Ageing+research+reviews%22%5BJournal%5D)">Epigenetics, disease, and therapeutic interventions.</a> Ageing research reviews. 5, 449-467 (2006).</li>
<li>Zilberman, D., Henikoff, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+analysis+of+DNA+methylation+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Genome-wide analysis of DNA methylation patterns.</a> Development. 134, 3959-3965 (2007).</li>
<li>Feinberg, A. P., Tycko, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+history+of+cancer+epigenetics%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews%22%5BJournal%5D)">The history of cancer epigenetics.</a> Nature reviews. 4, 143-153 (2004).</li>
<li>Weber, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution%2C+silencing+potential+and+evolutionary+impact+of+promoter+DNA+methylation+in+the+human+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Distribution, silencing potential and evolutionary impact of promoter DNA methylation in the human genome.</a> Nat Genet. 39, 457-466 (2007).</li>
<li>Weber, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromosome-wide+and+promoter-specific+analyses+identify+sites+of+differential+DNA+methylation+in+normal+and+transformed+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Chromosome-wide and promoter-specific analyses identify sites of differential DNA methylation in normal and transformed human cells.</a> Nat Genet. 37, 853-862 (2005).</li>
<li>Wilson, I. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenomics%3A+mapping+the+methylome%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Epigenomics: mapping the methylome.</a> Cell Cycle. 5, 155-158 (2006).</li>
<li>Gazin, C., Wajapeyee, N., Gobeil, S., Virbasius, C. M., Green, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+elaborate+pathway+required+for+Ras-mediated+epigenetic+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">An elaborate pathway required for Ras-mediated epigenetic silencing.</a> Nature. 449, 1073-1077 (2007).</li>
<li>Karpinski, P., Sasiadek, M. M., Blin, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aberrant+epigenetic+patterns+in+the+etiology+of+gastrointestinal+cancers%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+applied%22%5BJournal%5D)">Aberrant epigenetic patterns in the etiology of gastrointestinal cancers.</a> Journal of applied. 49, 1-10 (2008).</li>
<li>Maekawa, M., Watanabe, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics%3A+relations+to+disease+and+laboratory+findings%5BTitle%5D)+AND+%22Current+medicinal+chemistry%22%5BJournal%5D)">Epigenetics: relations to disease and laboratory findings.</a> Current medicinal chemistry. 14, 2642-2653 (2007).</li>
<li>Vucic, E. A., Brown, C. J., Lam, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics+of+cancer+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacogenomics%22%5BJournal%5D)">Epigenetics of cancer progression.</a> Pharmacogenomics. 9, 215-234 (2008).</li>
<li>Egger, G., Liang, G., Aparicio, A., Jones, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics+in+human+disease+and+prospects+for+epigenetic+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Epigenetics in human disease and prospects for epigenetic therapy.</a> Nature. 429, 457-463 (2004).</li>
<li>Jones, P. A., Baylin, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fundamental+role+of+epigenetic+events+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">The fundamental role of epigenetic events in cancer.</a> Nat Rev Genet. 3, 415-428 (2002).</li>
<li>Fraga, M. F., Esteller, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+methylation%3A+a+profile+of+methods+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">DNA methylation: a profile of methods and applications.</a> Biotechniques. 33, 632-649 (2002).</li>
</ol>

Es gibt ein wachsendes Bewusstsein für die wichtige Rolle der DNA-Methylierung spielt in Krankheit, sind daher die Entwicklung von Assays, um diese Änderung zu messen zunehmend an Bedeutung 3, 12, 13. Die MeDIP Technik ist ein Werkzeug für das Screening zugänglich sowohl den gesamten Genoms und Locus-spezifische Level 6, 7. Diese Technik bietet eine schnelle Ansicht von DNA-Methylierungs-Ebenen mit begrenzten Mengen an Ausgangs-DNA und ermöglicht eine einfache Vergleiche zwischen verschiedenen Quel...

<table><tbody><tr><td>Biorupter-Sonikator</td><td>Werkzeug</td><td>Diagenode</td><td>UCD-200 TM</td><td></td></tr><tr><td>1,7-ml-SafeSeal-Mikrozentrifugenröhrchen</td><td>Sonstiges</td><td>Sorenson BioScience</td><td>11510</td><td></td></tr><tr><td>ND-3300-Spektrophotometer</td><td>Werkzeug</td><td>NanoDrop</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Primärantikörper: Anti-5&amp;rsquo;-Methylcytosin-Maus-mAb</td><td>Reagenz</td><td>Calbiochem</td><td>162 33 D3</td><td></td></tr><tr><td>Sekundärantikörper: Dynabeads M-280 Schaf-anti-Maus-IgG</td><td>Reagenz</td><td>Invitrogen</td><td>112-01D</td><td></td></tr><tr><td>Magnetischer Röhrchenständer</td><td>Werkzeug</td><td>Invitrogen</td><td>CS15000</td><td></td></tr><tr><td>Mini LabRoller</td><td>Werkzeug</td><td>Labnet International</td><td>H5500</td><td></td></tr><tr><td>IP-Puffer</td><td></td><td></td><td></td><td>10 mM NaPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; pH 7,0, 140 mM NaCl, 0,05 % Triton X-100. Bei Raumtemperatur gelagert</td></tr><tr><td>Verdauungspuffer</td><td></td><td></td><td></td><td>10 mM Tris pH 8,0, 100 mM EDTA, 0,5 % SDS, 50 mM NaCl</td></tr></tbody></table>

methylierte dna immunpräzipitation

Methylated DNA Immunoprecipitation

Die Identifizierung von DNA-Methylierungs-Muster ist ein übliches Verfahren in der Studie der Epigenetik, wie Methylierung ist bekannt, dass mit erheblichen Auswirkungen auf die Genexpression haben, und ist mit der normalen Entwicklung sowie Krankheit beteiligt<sup&gt; 1-4</sup&gt;. So ist die Fähigkeit, zwischen methylierter DNA und nicht methylierter DNA zu unterscheiden wesentlichen für die Erzeugung Methylierung Profile für solche Studien. Methylierte DNA Immunpräzipitation (MeDIP) ist eine hocheffiziente Technik zur Gewinnung von methylierter DNA aus einer Probe von Interesse<sup&gt; 5-7</sup&gt;. Eine Probe von weniger als 200 ng der DNA ist ausreichend für den Antikörper oder Immunpräzipitation (IP), Reaktion. DNA in Fragmente mit einer Größe von 300-1000 bp beschallt, und ist in immunpräzipitiert (IP) und Eingang (IN) Abschnitte unterteilt. IP DNA wird anschließend Hitze denaturiert und dann mit anti-5&#39;mC inkubiert, so dass der monoklonale Antikörper an methylierte DNA binden. Danach werden magnetische Kügelchen mit einem sekundären Antikörper mit einer Affinität für den primären Antikörper zugegeben und inkubiert. Diese Wulst-linked Antikörper binden die monoklonalen Antikörper in der ersten Stufe eingesetzt. DNA gebunden an die Antikörper-Komplex (methylierte DNA) wird aus dem Rest der DNA mit Hilfe eines Magneten, um die Komplexe zu ziehen aus der Lösung getrennt. Mehrmaligem Waschen mit IP-Puffer werden dann durchgeführt, um die ungebundenen, nicht-methylierte DNA zu entfernen. Das methylierte DNA / Antikörper-Komplexe werden dann mit Proteinase K verdaut, um die Antikörper so dass nur die methylierte DNA intakt zu verdauen. Die angereicherte DNA wird durch Phenol gereinigt: Chloroform-Extraktion an das Protein Stoffe zu entfernen und dann gefällt und in Wasser resuspendiert für die spätere Verwendung. PCR-Techniken können verwendet werden, um die Effizienz der MeDIP Verfahren durch eine Analyse der Amplifikationsprodukte von IP und IN DNA für Regionen bekannt, Mangel und bekannte methylierte Sequenzen enthalten validieren. Das gereinigte methylierte DNA kann dann für Locus-spezifischen (PCR) oder genomweite (Microarray-und Sequenzierung) Methylierung Studien verwendet werden, und ist besonders nützlich, wenn sie in Verbindung mit anderen Forschungs-Tools wie Genexpressions-Profiling-und Array-vergleichende Genom-Hybridisierung angewendet ( CGH)<sup&gt; 8</sup&gt;. Weitere Untersuchungen in der DNA-Methylierung wird die Entdeckung von neuen epigenetischen Zielen, was wiederum nützlich sein bei der Entwicklung von neuen therapeutischen oder prognostischen Forschungsinstrumente für Krankheiten wie Krebs, die von methylierter DNA charakterisiert werden kann dazu führen,<sup&gt; 2, 4, 9-11</sup&gt;.

Dieses Video zeigt das Protokoll für die methylierte DNA Immunpräzipitation (MeDIP). MeDIP ist eine zweitägige Verfahren, die selektiv extrahiert methylierte DNA-Fragmente aus einer genomischen DNA-Probe unter Verwendung von Antikörpern mit Spezifität für 5-Methylcytosin (anti-5 mC).

Methylierte DNA Immunpräzipitation

Die Identifizierung von DNA-Methylierungsmustern ist ein gängiges Verfahren in der Epigenetikforschung, da bekannt ist, dass die Methylierung signifikante Auswirkungen auf ...

Dieses Video demonstriert ein Protokoll für die immunpräzipitierte methylierte DNA oder Meetup. Eine Methode, die verwendet wird, um methylierte DNA spezifisch und unvoreingenommen zu isolieren. Die DNA-Methylierung bei Säugetieren zeichnet sich durch die Anlagerung einer Methylgruppe an die C5-Position von Cytosin aus.Wenn es in einem CPG-Dinukleotid vorhanden ist, handelt es sich um eine reversible epigenetische Markierung, die eine wichtige Rolle in der normalen Entwicklung sowie bei mehreren Krankheitsprozessen spielt. Zu den normalen Funktionen der DNA-Methylierung gehören die Inaktivierung des X-Chromosoms bei Frauen, die Stilllegung repetitiver Elemente, das genomische Imprinting und die Aufrechterhaltung der genomischen Stabilität. Es wurde außerdem gezeigt, dass die DNA-Methylierung bei zahlreichen Erkrankungen wie Krebs, Prader-Willi-Syndrom, ICF-Syndrom und Immunschwäche, zentromerischer Instabilität und Gesichtsanomalie-Syndrom eine Rolle spielt.Bei Krebserkrankungen kann beispielsweise eine abnormale Hypermethylierung von Promotoren zur Stilllegung wichtiger Tumorsuppressorgene führen. Während eine fehlerhafte Hypomethylierung zu chromosomaler Instabilität und Aktivier

Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Der Goldstandard für die DNA-Methylierung ist genomische Sequenzierung von Bisulfit-konvertierter DNA. Diese Methode nutzt die erhöhte Empfindlichkeit von Cytosin verglichen mit 5-Methylcytosin (5-MeC) zu Desaminierung unter sauren Bedingungen Bisulfit. Unmethylierte Cytosine kann von methylierter Cytosine nach PCR-Amplifikation der Ziel-genomischer DNA unterschieden werden.

DNA-Methylierung: Bisulfit Modifikation und Analyse

Dieses Video beschreibt die Technik des Dot-Blots zur Bestimmung des Grades der DNA-Methylierung in menschlichen Chondrozyten in vitro durch das Blotten von DNA-Proben auf einer Nylonmembran und die anschließende Visualisierung mit monoklonalen Antikörpern. Dies hilft, den Phänotyp der Chondrozyten in verschiedenen Stadien der Kultur zu bestimmen.

5-Methylcytosin-Dot-Blot zur Bestimmung des Ausmaßes der DNA-Methylierung

Enhanced Reduced Representation Bisulfit Sequencing ist eine Methode zur Erstellung von Sequenzierungsbibliotheken für die DNA-Methylierungsanalyse, die auf dem Verdau von Restriktionsenzymen in Kombination mit der Umwandlung von Cytosin-Bisulfit basiert. Dieses Protokoll erfordert 50 ng Ausgangsmaterial und liefert Daten zur Auflösung von Basenpaaren in GC-reichen genomischen Regionen.

Verbesserte Reduzierte Darstellung Bisulfit-Sequenzierung für die Bewertung der DNA-Methylierung bei Basenpaar Auflösung

DNA-Methylierung ist in der Lage, ein stabiles Niveau der Genexpression aufrechtzuerhalten und dynamische Veränderungen der Genexpression als Reaktion auf eine Vielzahl von Reizen zu ermöglichen. Wir beschreiben Techniken, die es ermöglichen, genspezifische Veränderungen der DNA-Methylierung und die Auswirkungen dieser Veränderungen auf die Genexpression zu untersuchen.

Korrelieren von Gen-spezifischen DNA-Methylierungsänderungen mit Expression und Transkriptionsaktivität Astrozytäre<em&gt; KCNJ10</em&gt; (Kir4.1)

Hier präsentieren wir ein Protokoll zu untersuchen, genomweite DNA-Methylierung in großem Maßstab klinischen Patienten-Screening-Studien unter Verwendung des Methyl-Bindung DNA Capture-Sequenzierung (MBDCap-seq oder MBD-seq) Technologie und die anschließende bioinformatische Analyse-Pipeline.

Methyl-bindende DNA-Capture-Sequenzierung für Patientengewebe

Diese Arbeit beschreibt ein optimiertes Methyl-CpG-Bindungsdomäne (MBD) Sequenzierungsprotokoll und eine rechnerische Pipeline zur Identifizierung von differentiell methylierten CpG-reichen Regionen bei chronischen lymphatischen Leukämie (CLL) Patienten.

Umfassende DNA-Methylierungsanalyse unter Verwendung einer Methyl-CpG-bindenden Domänen-Capture-basierten Methode bei chronischen lymphatischen Leukämie-Patienten

Diese Arbeit beschreibt ein Protokoll für die Chromatin-Immunpräzipitation (ChIP) unter Verwendung einer reifen Maus-T-Zelllinie. Dieses Protokoll ist geeignet, um die Verteilung von spezifischen Histonmarken an bestimmten Promotorstellen oder genomweiten zu untersuchen.

Chromatin-Immunpräzipitation (ChIP) in Maus-T-Zell-Linien

Wir präsentieren Ihnen eine effektive und reproduzierbare Methode zum isolieren und Kultur neurale Vorläuferzellen aus embryonalen und postnatale Hirngewebe für Chromatin Immunopräzipitation (ChIP) von Histon 3 Lysin 79 Dimethylation (H3K79me2) - eine Histon-Markierung befindet sich innerhalb der globulären Domäne des Histon 3.

Isolierung und Kultivierung von neuronalen Vorläuferzellen gefolgt von Chromatin Immunopräzipitation Histon 3 Lysin 79 Dimethylation Marke

Chromatin-Immunpräzipitation (ChIP) ist ein leistungsfähiges Werkzeug zum Verständnis der molekularen Mechanismen der Genregulation. Das Verfahren birgt jedoch Schwierigkeiten bei der Erlangung reproduzierbarer Chromatinfragmentierung durch mechanisches Scheren. Hier bieten wir ein verbessertes Protokoll für einen ChIP-Assay mit enzymatischer Verdauung.

Chromatin Immunoprecipitation Assay mit Mikrokokken-Nukleasen in Säugetierzellen

Der methylierte RNA-Immunpräzipitationstest ist eine Antikörper-basierte Methode zur Anreicherung für methylierte RNA-Fragmente. Gekoppelt mit einer tiefen Sequenzierung führt dies zur Identifizierung von Transkripten, die die m5C-Modifikation tragen.

Methylierte RNA-Immunpräzipitierung Assay zur Studie m5C Modifikation bei Arabidopsis

Lernen Sie die Methode der methylisierten DNA-Immunpräzipitation (MeDIP) zur spezifischen Isolierung methylierter DNA. Dieses zweitägige Protokoll nutzt Antikörper gegen 5-Methylcytosin und ermöglicht epigenetische Studien zu Entwicklung und Krankheit.

Methylierte DNA Immunpräzipitation

Weitere Videos entdecken