Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Los métodos electrofisiológicos para la grabación de los potenciales sinápticos de la UNM de larvas de Drosophila

21K visualizaciones

⸱

DOI:

10.3791/1109

⸱

6 de febrero de 2009

En este artículo

Resumen

A continuación se describen los métodos electrofisiológicos para la medición de la transmisión sináptica en la unión neuromuscular de larvas de Drosophila. Liberación evocada se inicia artificialmente mediante la estimulación de los axones de la neurona motora, y la transmisión a través de la UNM se puede medir por la respuesta postsináptica evocado en el músculo.

Resumen

En este video, se describen los métodos electrofisiológicos para la grabación de la transmisión sináptica en la unión neuromuscular (UNM) de larvas de Drosophila. La larva sistema neuromuscular es una sinapsis modelo para el estudio de la fisiología sináptica y la neurotransmisión, y es una valiosa herramienta de investigación que ha definido la genética y es accesible a la manipulación experimental. Las larvas pueden ser diseccionados para exponer la pared del cuerpo musculatura, el sistema nervioso central, y los nervios periféricos. Los músculos de Drosophila y su patrón de inervación están bien caracterizados y los músculos son de fácil acceso para el registro intracelular. Los músculos individuales pueden ser identificados por su ubicación y orientación dentro de los 8 segmentos abdominales, cada una con 30 músculos dispuestos en un patrón que se repite en los segmentos A2 - A7. Disecados larvas de Drosophila son músculos delgados y el individuo y los haces de axones de neuronas motoras pueden ser visualizados por transiluminación

Protocolo

Antes de comenzar preparar:

  • Vagando yhird instar las larvas de Drosophila
  • HL3.1 (Modificado hemolinfa-como) una solución
  • Sylgard (caucho de silicona transparente) platos preparados en la disección pequeño (35 x 10 mm) placas petri de plástico con los métodos descritos por Brent y McCabe (2008) 3.
  • Cortar pernos disección corta
  • Estimular pipetas electrodo
  • Pipetas afiladas grabación

HL3 Solución:

  1. Durante las disecciones y experimentos electrofisiológicos, larva se encuentran inmersos en HL3.1 solución 2 que contiene (en mM): NaCl 70, 5 KCl, 4 ....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

Los métodos descritos aquí proporcionan una manera relativamente rápida y amplia para detectar los cambios en la función sináptica en la UNM. La capacidad de realizar los registros electrofisiológicos con animales intactos in vivo, y llevar a cabo manipulaciones genéticas o farmacológicas, que Drosophila un modelo animal ideal para investigar los aspectos fisiológicos y genéticos de la neurotransmisión.

Dado que las células musculares son muy grandes, otros prefieren agregar un paso adiciona.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Placas de Petri pequeñas (35 x 10 mm)BD Biosciences1008
Kit de elastómero de silicona SYLGARD 182Dow Corning3097366-1004
Microscopio de disecciónCarl Zeiss, Inc.475002-9902
Luz para microscopioSchott AGKLI500
Alfileres de disecciónFine Science Tools26002-10
Software pClamp 9Molecular DevicesPCLAMP 9 STANDARD
Tijeras de disección: tijeras de resorte Vannas de 3 mmFine Science Tools15000-0
Pinzas Dumont SSFine Science Tools11200-33
Pinzas Dumont n.º 5Fine Science Tools11252-20
Capilares de vidrio borosilicatado de pared delgada, con filamento (1,0 mm, 4 in)World Precision Instruments, Inc.TW100F-4
Capilares de vidrio borosilicatado, con filamento (1,2 mm, 4 in)World Precision Instruments, Inc.1B120F-4
Extractor de micropipetas basado en láser Sutter P-2000Sutter Instrument Co.Modelo P-2000
Pulidora de pipetasNarishige InternationalMF-83
Etapa de cabeza Axon HS-2AMolecular DevicesModelo HS-2A
MicromanipuladoresSutter Instrument Co.MP-85
Amplificador Axoclamp 2BMolecular DevicesAXOCLAMP 2B
Software ClampexMolecular Devicesv 8.2.0.235
Software Mini analysis, v 6.0.3Synaptosoft
Amplificador de precisión BrownleeBrownleeModelo 410
NaClBaker/VWR4058-01
KClSigma-Aldrichp-9333
NaHCO3Sigma-Aldrichs6297-1kg
TrelahoseSigma-AldrichTO167
SacarosaFisher Scientificbp220-212
HEPESSigma-Aldrichh-3375
MgCl-6H2OSigma-Aldrichm2670-1kg
CaCl2Fisher Scientificc79-500
Generador de pulsos Master-8A.M.P.I
Mesa vibratoria para configuración de electrofisiologíaTechnical Manufacturing Corp.
Jaula de Faraday

Referencias

  1. Atwood, H. L., Govind, C. K., Wu, C. F. Differential ultrastructure of synaptic terminals on ventral longitudinal abdominal muscles in Drosophila larvae. J. Neurobiol. 24 (8), 1008-1024 (1993).
  2. Feng, Y., Ueda, A., Wu, C. F.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Unión neuromuscularRegistro electrofisiológicoPotencial de unión excitatorioPotencial de unión excitatorio en miniaturaElectrodo intracelularElectrodo de succiónTampón HL3Estimulación del potencial de acciónAnálisis del contenido cuántico