Resuspensión de β-amiloide
Antes de empezar se han preparado:
- Aß 1-42 (polvo liofilizado)
- 1,1,1,3,3,3-hexafluoro-2-propanol (HFIP)
- Baja unión a tubos de polipropileno de microcentrífuga (1,5 ml)
- Herméticas Hamilton jeringa con parada caída de teflón (250 l)
- Dimetilsulfóxido (DMSO)
- Permitir Aß 1-42 liofilizado para equilibrar a temperatura ambiente durante 30 minutos para evitar la condensación al abrir el vial de péptidos.
- Bajo la campana extractora de humos, una nueva suspensión Aß 1-42 péptido en HFIP fría para obtener una solución 1 mM y agitar la solución durante unos segundos.
- El uso de un cristal hermético jeringa Hamilton con enchufe de teflón, se dividen rápidamente el Aß 1-42 / HFIP solución igualmente en tres viales de polipropileno y el sello de los viales.
- Los viales se incuban durante 2 horas para permitir monomerización Aß. A continuación, abra los viales y concentrar la solución de Aß 1-42 / HFIP al vacío mediante el uso de una centrifugadora SpeedVac (800 g, la temperatura ambiente) hasta que una película péptido claro se observa en la parte inferior de los viales. Compruebe cuidadosamente la temperatura dentro de la centrifugadora SpeedVac para evitar la degradación de péptidos (máximo 25 ° C).
- Sello de los viales y almacenar las alícuotas a -80 ° C. Aß película se puede almacenar durante 6 meses.
- Vuelva a suspender una película mediante la adición de DMSO para obtener una concentración de hasta 5 mm Aß 1-42. Sonicado en el baño de agua durante 10 minutos para asegurar la resuspensión completa.
- Alícuota de este Aß 5mM 1-42 solución en viales de polipropileno. Sello de todos los viales y almacenarlos a -20 ° C. Alícuotas deben descongelarse sólo una vez. Cuidado con la condensación de agua en el interior del congelador. Péptidos en solución se degradan muy fácilmente.
Oligomerización
Antes de empezar se han preparado:
- Aß 1-42 / DMSO (5 mM)
- Tampón fosfato estéril
- Baja unión a tubos de polipropileno de microcentrífuga (1,5 ml)
- Baja unión a tubos de polipropileno centrifugadora (50 ml)
- Diluir el Aß obtenido 5mM 1-42 / alícuota DMSO con el tampón fosfato estéril (hasta 100 l).
- Vortex durante 30 segundos y luego se incuban durante 12 horas a 4 ° C
Tratamiento de corte del hipocampo
En el tratamiento de rodajas de hipocampo, que es importante para evitar la adhesión no específica péptido en vasos de precipitados, tubos de superficies de perfusión, y la cámara de grabación. Usar preferentemente bajo tubo de polipropileno de unión y contenedores. Evite el uso de material de vidrio o de plástico genérico-ware. Los medios de comunicación de perfusión debe ser suero o albúmina libre.
Perfusión Aß
Antes de empezar se han preparado:
- Oligomerized Aß 1-42
- Búfer de grabación (en mm: 124 NaCl, 4,4 KCl, 1 de Na 2 HPO 4, 25 NaHCO 3, 2 CaCl 2, 2 MgCl 2, y la glucosa en 10)
- Registro electrofisiológico de configuración con la interfaz de la cámara
- Transversal rodajas de hipocampo incubadas en buffer de grabación oxigenada por lo menos 90 minutos después de la disección (T = 29 ° C, velocidad de perfusión constante = 2 ml / minuto)
- Inmediatamente antes del experimento, se diluye la Aß oligomerized 1-42 alícuota a la concentración de trabajo adecuado (200 nm o superior) en un tubo de polipropileno con buffer de pre-grabación oxigenada.
- Perfundir el Aß 1-42 solución durante 20 minutos para los cortes antes de la inducción de la plasticidad sináptica.
La inducción de la plasticidad y el seguimiento
- Por lo general, el modelo más utilizado de la plasticidad sináptica es la LTP. Puede ser inducida a través de la estimulación tetánica de una sinapsis dada en el hipocampo. Nosotros registramos las respuestas de campo de las sinapsis entre las proyecciones de la garantía de Shaffer y las neuronas piramidales CA1 en el radiatum estrato. Nuestra estimulación tetánica consiste en una estimulación theta ráfaga, que incluye tres trenes separados por intervalos de 15 segundos. Cada tren se compone de 10 ráfagas a 5 Hz, donde cada ráfaga implica 5 pulsos a 100 Hz. Aplicar la estimulación tetánica inmediatamente después de la perfusión de Aß oligomerized se ha completado.
- Inmediatamente después de la estimulación tetánica volver a la perfusión con buffer de grabación normal. Mantener una velocidad de perfusión constante, temperatura de la cámara de grabación y la oxigenación adecuada durante toda la duración del experimento.
Los resultados representativos y los posibles problemas
El Aß oligomerized acuerdo con el protocolo clásico de Stine et coll. 1, genera monómeros Aß y una variedad de oligómeros de diferente tamaños (dímero, trímero, etc) La perfusión de oligomerized Aß 1-42 conduce a la disminución de LTP en Aß tratados con rebanadas en comparación con rodajas de control. Bajo condiciones experimentales, en 3-5 meses de edad, los ratones macho C57BL/6J se utilizan, LTP en 200 nM Aß tratados con rebanadas es un promedio de 150% de los valores basales a las dos horas después de la estimulación tetánica, mientras que en las rebanadas de control de los valores LTP se un promedio de 200 a 250% de baseline2. En algunos casos, el tratamiento con Aß podría no reducir la LTP hipocampal. Varios errores graves que pueden ocurrir incluyen la excesiva película de secado durante la concentración de Aß y oligomerización incompleta. Perfusión de Aß en rodajas de hipocampo podría ser otra fuente de preocupación debido a las propiedades fisicoquímicas del péptido Aß en la solución, que es propenso a la adhesión no específica a los plásticos. Solución de problemas de estos temas se discuten a continuación.