1. Aislamiento de PBMC
- Extracción de sangre (7,5-8,0 ml) en un tubo BD Vacutainer CPT preparación celular con heparina sódica. El tubo contiene un anticoagulante con heparina sódica y un fluido de densidad de Ficoll-Hypaque, además de una barrera de gel de poliéster, que separa los dos líquidos. Tubo de centrífuga / muestra de sangre a temperatura ambiente (18 ° C a 25 ° C) en un rotor horizontal (se gira hacia fuera de la cabeza) durante 20 minutos a 1800 x g. Interruptor de centrífuga de los frenos.
- Después de la centrifugación, la secuencia de capas se produce de la siguiente manera (visto desde arriba a abajo): un plasma) - b) las células mononucleares de sangre periférica (CMSP) y plaquetas - c) la densidad de la solución - d) de gel de poliéster - e) granulocitos - f) glóbulos rojos (Fig. 1).
- Recoger una fracción de la capa de plasma, dejando 5 a 10 mm de plasma por encima de la interfase sin alterar la capa de células. El plasma puede ser utilizado para el cultivo (sección 2.5).
- Cosecha de la fracción enriquecida (CMSP) en la interfase con una pipeta y transferir a un tubo cónico de 15 ml.
- Lave la PBMC con 10 ml de tampón fosfato salino (PBS), invirtiendo el tubo cinco veces, y centrifugar durante 5 minutos a 400 x g.
- Repita los pasos de lavado dos veces, y luego volver a suspender el pellet de células en 5 ml de PBS. Determinar el número de células. Por lo general, 1,3 x 10 6 células se recuperan de 1 ml de sangre total.
- Determinar la frecuencia y el fenotipo de las células T γδ en PBMC por citometría de flujo (sección 3) (Fig. 2).
2. La expansión de las células T γδ
- Centrifugar las suspensiones de células en 15 ml tubos cónicos durante 5 minutos a 400 x g a temperatura ambiente, y desechar el sobrenadante.
- Preparar medio de cultivo (CM) mediante la adición de la IL-2 (IL-2) y el zoledronato (Zometa) a concentraciones finales de 1000 UI / ml y M 5, respectivamente. ALyS203 (celular y Ciencia Instituto de Tecnología) o Optmizer (Invitrogen) apoyar la expansión de los medios de comunicación bien de las células T γδ (más información en las referencias 6 y 9). Zometa se suministra en forma líquida (4 mg/5-ml vial). Para preparar una solución de 5 M, se añaden 50 l de Zometa para 30 ml de medio de cultivo.
- Resuspender el sedimento celular en medio de cultivo y se ajustan a 1x10 6 células / ml.
- Pipeta de 1 ml de CM contiene 1x10 6 células en cada pocillo de una placa de 24 pocillos. Para las grandes culturas, las células pueden ser sembradas a 0.5 x 10 6 células / cm 2, de acuerdo a las superficies de los pozos de la placa, plato o recipiente.
- Añadir plasma autólogo (sección 1.3), agrupados suero humano AB, o FCS por lo que es aproximadamente el 10% del volumen de la cultura (100 l por cada pocillo de una placa de 24 pocillos). Coloque las placas en un humidificado 37 ° C, 5% de CO 2 incubadora durante 24-48 horas.
- Mantener el cultivo a una densidad celular de 0,5 a 2 x 10 6 células / ml. Añadir un nuevo soporte de la IL-2 (1000 UI / ml) solamente (sin Zometa) cada 2-3 días, y la transferencia de células cultivadas en pozos nuevos o frascos como sea necesario, de acuerdo con el grado de proliferación celular (Fig. 3). Suministro de plasma o suero al medio de manera que la concentración sérica se puede mantener por lo menos 1%.
- Las células de la cosecha en el día 12-14 y determinar la frecuencia, fenotipo, y las funciones de las células T γδ por citometría de flujo (ver más abajo).
3. El análisis fenotípico por citometría de flujo
- Transferencia de 200 muestras de l que contiene 2 x 10 5 células de clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS) tubos.
- Añadir 2 ml de PBS frío y centrifugar durante 5 minutos a 400 x g. A continuación, volver a suspender las pastillas en 50 l de tampón FACS (PBS + 1% FCS + 0,1% de azida de sodio). Añadir 5 l de cada una de las muestras de anticuerpos (los anticuerpos monoclonales se listan en la Tabla 1).
- Incubar en hielo en la oscuridad durante 20 min.
- Añadir 2 ml de tampón FACS para cada muestra, y luego vórtice. Centrifugue las muestras durante 5 minutos a 400 x g a 4 ° C. Decantar cuidadosamente el sobrenadante.
- Resuspender las células en 300 l de tampón FACS y agitar. Analizar las muestras en un citómetro de flujo (Fig. 2).
4. IFN-γ producción de ensayo de 10
- El día antes del ensayo, preparar las células estimulador mediante el cultivo de 3.5 x 10 5 células Daudi / ml en medio RPMI 1640 más el 10% de FCS (RPMI-10) durante la noche con Zometa (5 M) (en adelante designado Z-Daudi).
- Recoger Z-Daudi y resuspender en medio RPMI-10 en 2x10 6 células / ml. Añadir 100 ml de Z-Daudi (2x10 5) a cada pocillo de una placa de fondo redondo de 96 pocillos.
- Prepare las células T γδ en 2x10 6 células / ml en RPMI-10 contiene Brefeldina A a 20 mg / ml. Transferencia de 100 l de suspensión de células T γδ (2x10 5) a cada pocillo que contiene Z-Daudi células o de control de los pozos (100 l de RPMI-10 solamente, o RPMI-10 con 20 ng / ml de forbol 12-miristato 13-acetato[PMA] y 2 mg / ml de ionomicina).
- Mezclar pipeteando arriba y abajo varias veces. Se incuba durante 4 horas en un 37 ° C, 5% de CO 2 incubadora.
- Centrifugar la placa durante 5 minutos a 400 x g a 4 ° C y volver a suspender las pastillas en 200 l de PBS frío.
- Transferencia de las muestras a los tubos de FACS. Agregar 4 ml de PBS frío y centrifugar los tubos durante 5 minutos a 400 x g a 4 ° C.
- Resuspender los pellets en 50 l de tampón FACS con FITC-conjugado anti-TCRVγ9 (5 l) y PE/Cy5-conjugated anti-CD3 (2,5 l). Incubar protegido de la luz durante 15 minutos a temperatura ambiente.
- Añadir 100 ml de reactivo IntraPrep 1 y se incuba durante 15 min a temperatura ambiente. Agregar 4 ml de PBS a cada tubo y centrifugar durante 5 minutos a 400 x g a temperatura ambiente.
- Eliminar el sobrenadante por aspiración y añadir 100 ml de reactivo 2 IntraPrep. Incubar durante 5 minutos a temperatura ambiente sin agitación.
- Añadir 5 l de PE-conjugadas anti-IFN-γ MAB para el tubo de ensayo. Incubar protegido de la luz durante 15 minutos a temperatura ambiente.
- Agregar 4 ml de PBS a cada tubo y centrifugar durante 5 minutos a 400 x g a temperatura ambiente. Eliminar el sobrenadante por aspiración y resuspender el botón celular en 0,5 ml de tampón FACS.
- Analizar las células por citometría de flujo. Puerta de CD3 + + TCRVγ9 células y examinar la expresión de IFN-γ (Fig. 4).
5. Los resultados representativos:
Es importante determinar el porcentaje de células T γδ en PBMC en el inicio de la cultura. Como se muestra en la figura. 2 A, el porcentaje de linfocitos CD3 + TCRVγ9 + células T γδ en PBMC fue del 1,6% en el día 0. Las poblaciones dominantes fueron CD27 + CD45RA + CD27 o ingenuo CD45RA + - fenotipos memoria central. Cuando las células T γδ fueron estimulados de manera eficiente, se formaron grupos en los días 3-5 (Fig. 3 A y B). Cuando la formación de agrupaciones se demoró, el crecimiento de otros tipos de células, como células CD4 + y CD8 + αβ células T o células NK podría dominar el crecimiento de las células T γδ (Fig. 3 C y D). Después de 14 días de cultivo, la frecuencia de las células T γδ aumentó a más del 93,8% de las células cultivadas en el éxito de las culturas de las células T γδ (Fig. 2 E). Los cultivos de células T γδ upregulated NKG2D y expresión de CD69 (Fig. 2 G y H). La exhibición de CD27 - CD45RA - fenotipo efectoras de memoria (Fig. 2 F). Las funciones de las células T γδ fueron evaluados con respecto a la producción de citocinas y citotoxicidad. El IFN-γ intracelular tinción demostrado que las células T γδ produjo IFN-γ en respuesta a PMA / ionomicina tratamiento o células Daudi que Z-IPP acumulado después de un tratamiento zoledronato (Fig. 4). Estos resultados indican que el zoledronato eficiente puede estimular y expandir las células T γδ funcional.
| tubo | FITC | PE | ECD | PE/Cy5 |
| 1 | CD3 | CD19 | CD45 | CD14 |
| 2 | CD3 | TCRαβ | CD4 | CD8 |
| 3 | CD3 | | | CD56 |
| 4 | TCR Vγ9 | TCRαβ | CD45 | CD3 |
| 5 | TCR Vγ9 | NKG2D | | |
| 6 | TCR Vγ9 | CD69 | | |
| 7 | TCR Vγ9 | IgG1 de ratón | | |
| 8 | TCR Vγ9 | | CD45RA | CD27 |
| 9 | TCR Vγ9 | | IgG1 de ratón | IgG1 de ratón |
Tabla 1. Los anticuerpos monoclonales utilizados en la tinción multicolor de las células T γδ. Un ejemplo del análisis fenotípico de las células T γδ realizado en nuestro laboratorio se muestra en la figura. 2.

Figura 1. Separación de PBMC. Sangre (7,5-8,0 ml) se introduce en un tubo BD Vacutainer CPT preparación celular con heparina sódica y directamente se centrifuga durante 20 minutos a 1800 x g. Después de la centrifugación, las capas que resulta como se ve desde arriba a bottom: un Plasma) - b) PBMC y plaquetas - c) Densidad de la solución - d) de gel de poliéster - e) Granulocitos - f) Los glóbulos rojos.

Figura 2. Fenotipo de superficie típico de las células T γδ. PBMC fueron estimulados con zoledronato e IL-2 durante 14 días. Las células se tiñeron con FITC anti-TCR Vγ9 y PE/Cy5-labeled anti-CD3 para controlar la expansión de las células T γδ (A y E). Las células T γδ fueron identificados por su expresión de TCRVγ9, y la expresión de CD27 y CD45RA (B y F), NKG2D (C y G), o CD69 (D y H) se examinó.

Figura 3. Representante γδ cultivos de células T. PBMC fueron estimulados con IL-2 (1000 UI / ml) y el zoledronato (5 M). Campos representativos se muestran (IX71 microscopio invertido [Olympus] x 200). Las agrupaciones y los agregados de células T γδ se puede observar en el día 3 (A) y el día 5 (B), cuando las células T γδ se ampliaron con éxito. Por el contrario, existen grupos o agregados se observaron cuando el crecimiento de células T γδ no era la adecuada (C y D).

Figura 4. IFN-γ producción. γδ células T se incubaron con RPMI-10 sólo (A) o PMA / ionomicina (B) o Z-Daudi (C) durante 4 horas. En primer lugar, la expresión superficial de TCRVγ9 estaba manchada y IFN-γ producción fue examinado por intracelular de IFN-γ tinción.

Figura 5. Cinética de la cultura de las células T γδ. (A) Número absoluto de células en cultivo, (B) el porcentaje de células T γδ, y (C) número absoluto de células T γδ en los puntos de tiempo indicado.