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1. Extracción de sangre total
- Recoger la sangre venosa de los seres humanos o de animales de experimentación con NEM / EDTA tubos que contienen.
- Inmediatamente girar hacia abajo la sangre en una centrífuga de sobremesa a 14.300 RCF (fuerza centrífuga relativa) durante 7 minutos para preparar el plasma y los glóbulos rojos de pellets.
- Preparar las muestras de plasma para la cromatografía líquida de alta eficacia (HPLC) y detección de quimioluminiscencia (CLD) el análisis.
HPLC: Añadir 01:01 volumen de metanol frío a plasma, vórtice y se centrifuga a 13.200 rpm durante 10 minutos a precipitar las proteínas plasmáticas. Recoger sobrenadante para el análisis por HPLC.
EPC: alícuota de una muestra y preincubar con sulfanilamida y cloruro de mercurio de nitrosotioles de ensayo en particular. - Preparar rojo sedimento celular para HPLC y el análisis de la EPC.
HPLC: Añadir 1:04 rojo sedimento celular a una solución de lisis hipotónica que contiene 10 mM de NEM, 2,5 mM EDTA y 10 mM de ferricianuro. Mezclar bien y agregar 1:1 de metanol, vórtice y CentrifUGE a 13.200 rpm durante 10 minutos a la proteína de precipitado. Recoger sobrenadante para el análisis por HPLC.
EPC. Añadir 1:04 rojo sedimento celular a una solución de lisis hipotónica que contiene 10 mM EDTA, 2,5 mM EDTA y 10 mM de ferricianuro. Las muestras alícuotas a tubos que contienen cloruro de sulfanilamida y mercúrico para la detección específica de nitrosotioles.
2. Extracción y Preparación de tejidos
- Para determinar los niveles tisulares de NO metabolitos, es primero necesario para cosechar tejido sangre libre para la preparación de muestras como se ha descrito anteriormente. Un intercambio de la sangre completa se llevará a cabo mediante la infusión de tampón fisiológico a través de la punta del ventrículo izquierdo. Una vez que todos se extrae la sangre, los tejidos de interés puede ser cosechado.
- Homogeneizar las muestras de tejido y preparar muestras como se ha descrito anteriormente para HPLC y análisis EPC.
3. Anillos de aislamiento de la aorta para la función endotelial
Tejido baño de órganos
- Los ratones se Anesthetized con éter dietílico hasta que ya no responden a los pies de apuro, y se someten a la dislocación cervical antes de la cirugía. La toracotomía se realiza para exponer la aorta torácica y abdominal. Una jeringa de calibre 25 se inserta en el vértice del ventrículo izquierdo y perfundidos libre de sangre oxigenada con tampón de Krebs Henseleit.
- La aurícula derecha se corta para proporcionar una salida de sangre. Aorta abdominal se quitan y se limpian de la adventicia.
- Anillos se corta en segmentos de 2 mm de largo y montado en un baño de tejido de cuatro canales de órganos (DMT 720MO, AD Instruments) bañado en una solución tampón fisiológico.
- Los anillos de los buques se mantienen en baños de órganos de 10 ml con el tampón de Krebs oxigenada (95% O 2 y el 5% de CO 2) a 37 ° C. Una pretensión de gramos se coloca en cada anillo aórtico (la tensión de partida adecuado para la función vasomotora óptima según lo determinado en experimentos anteriores). Un niño de ocho canales octal puente (Powerlab) y de adquisición de datos de software (versión Gráfico 5.2.2) unavolver a utilizar para registrar todas las medidas de fuerza.
- Los anillos se dejaron equilibrar durante 80 minutos con el tampón en cada baño de órganos cambiado cada 20 min. Después de equilibrar durante 80 min, 1 mM fenilefrina se añade a cada anillo de contracción submáxima.
- Después de la estabilización, agonista endotelial tales como la acetilcolina se añadió para determinar la producción de NO y el grado de relajación del vaso. Después de la respuesta a la dosis de acetilcolina, baños se enjuagó y recontracted y se trató luego con una fuente exógena de óxido nítrico, nitroprusiato de sodio para determinar la capacidad de respuesta del músculo liso y para obtener un valor de 100% de relajación.
- NO eliminadores se pueden añadir al baño para ilustrar claramente la liberación de NO y la inhibición de la relajación del vaso.
4. Los resultados representativos
El uso de la ENO-20 HPLC dedicada proporciona un fácil utilizar el método de alto rendimiento para la detección específica y sensible de nitritos y nitratos enmatrices biológicas. El principio de detección y un cromatograma original se muestra en la Figura 1. Este método puede ser utilizado para cualquier muestra biológica para la determinación de nitrito y nitrato. Detección basada en la EPC de metabolitos NO requiere un paso derivatización química para determinar el origen molecular del NO. El montaje experimental para denitrosation simultánea oxidativo y denitrosation reductora para el detector de quimioluminiscencia se muestra en la Figura 2. El recipiente de reacción de la derecha se llena con ferricianuro 800mm en PBS pH 7,4 y el recipiente de reacción de la izquierda se llena con yoduro de potasio / yodo mezcla en ácido acético para denitrosation reducción (Figura 2A). La configuración completa se muestra en la Figura 2B. La Figura 3 muestra los ensayos de grupos específicos denitrosation que pueden detectar y cuantificar los nitritos, nitrosotioles, nitrosaminas, así como productos nitrosilo hemo. Este método ha sido previamente descricama y validado 4,5. Estos análisis bioquímicos importantes pueden estar correlacionados con los estudios funcionales sobre los anillos aórticos aislados para determinar la producción de NO endotelial en animales de experimentación. Este experimento farmacológico clásico puede con facilidad y evaluar con precisión la función endotelial y la producción. Medición de la reactividad buque a los agonistas endoteliales tales como la acetilcolina puede determinar directamente la producción de NO endotelial que puede ser correlacionado con biomarcadores bioquímicos detectados en la sangre y los tejidos de los animales experimentales. Una representación típica de una respuesta a la dosis de acetilcolina se muestra en la Figura 4. Ratones sanos de control con función endotelial normal responden a la acetilcolina mediante la relajación. Los ratones con disfunción endotelial (ratones hipercolesterolémicos) muestran la relajación reducida debido a la reducción de la producción de NO a los mismos estímulos.

HigoUre 1. Principio de la detección de nitrito y nitrato de Eno-20 y el cromatograma de la muestra. (Arriba) Esquema de ENO-20 método de detección de nitrito y nitrato. (Inferior) chromotogram estándar de 10 pmol nitrito y nitrato inyecta en ENO-20 (100 l de solución de 100 nM de nitrito y nitrato). Sensibilidad de 1 nM para cada anión con 100 l de volumen de inyección. No interfiere con la proteína o de una especie de color.

Figura 2. EPC experimental de configuración mediante el uso tanto denitrosation oxidativo por denitrosation ferricianuro y reductora usando yoduro / yodo ensayo con detección de fase gaseosa de gas purgado de óxido nítrico.

Figura 3. (Grupo A) de detección de quimioluminiscencia de nitrito, RSNO, RNNO ensayo denitrosation reductiva de la preincubación de la muestra con el grupo específico isquémicaAl reactivos. La sustracción de áreas de los picos permitir la detección de nitrito y RSNOs. (Grupo B) de detección quimioluminiscente de especies hemo nitrosilo que utilizan la solución de ferricianuro denitrosation oxidativo. Este método es específico para los productos NO-hemo sin reactividad cruzada con RSNOs (GSNO o albúmina SNO-), o RNNO (NO-pirrolidina y N-nitroso albúmina-).

Figura 4. Ex vivo baño de órganos en los anillos aórticos aislados proporciona una medida directa de la producción de NO endotelial que luego puede ser correlacionada con biomarcadores bioquímicos detectados por HPLC y la EPC. Esta figura ilustra la relajación reduce en ratones con disfunción endotelial, debido a la disminución de la producción de NO.