Ensayo de eflujo de colesterol

Resumen

El ensayo de colesterol está diseñado para cuantificar la tasa de eflujo de colesterol a partir de células cultivadas y la capacidad de plasma aceptores para aceptar el colesterol liberado de las células. El ensayo consiste en el etiquetado de las células con el colesterol, equilibración de colesterol entre piscinas intracelulares y la liberación de colesterol a un aceptor extracelular.

Resumen

El contenido de colesterol de las células deben mantenerse dentro de los límites muy estrechos, demasiado o demasiado poco de colesterol en unos resultados de células en la interrupción de las membranas celulares, la apoptosis y necrosis ^1. Las células pueden colesterol fuente de la síntesis intracelular y de las lipoproteínas del plasma, ambas fuentes son suficientes para satisfacer plenamente las necesidades de células para el colesterol. Los procesos de la síntesis de colesterol y el consumo están fuertemente regulados y las deficiencias de colesterol son poco frecuentes ^2. El exceso de colesterol es de ³ problema más común. Con la excepción de los hepatocitos y algunas células adrenocorticales grado, las células son incapaces de degradar el colesterol. Las células tienen dos opciones para reducir su contenido de colesterol: para convertir el colesterol en ésteres de colesterol, una opción con una capacidad limitada, como la sobrecarga de las células con ésteres de colesterol también es tóxico, y el eflujo de colesterol, una opción con la capacidad potencialmente ilimitada. Eflujo de colesterol es una especificaciónproceso de IFIC que está regulada por una serie de transportadores intracelulares, como el ATP vinculante cassette transportista proteínas A1 (ABCA1) y G1 (ABCG1) y B1 del receptor scavenger tipo. El aceptador natural de colesterol en plasma es de lipoproteína de alta densidad (HDL) y apolipoproteína AI.

El ensayo de eflujo de colesterol está diseñado para cuantificar la tasa de eflujo de colesterol a partir de células cultivadas. Se mide la capacidad de las células para mantener el eflujo de colesterol y / o la capacidad de plasma aceptores para aceptar el colesterol liberado de las células. El ensayo consiste en los pasos siguientes. Paso 1: etiquetado colesterol celular mediante la adición de colesterol marcado a medio que contenía suero e incubando con células durante 24-48 h. Este paso puede ser combinado con la carga de las células con el colesterol. Paso 2: incubación de las células en medio libre de suero que se equilibre el colesterol marcado entre todos los grupos de colesterol intracelular. Esta etapa puede ser combinado con la activación de celular CHtransportistas olesterol. Paso 3: incubación de las células con aceptor extracelular y cuantificación de movimiento de colesterol marcado de las células al aceptor. Si los precursores de colesterol se utiliza para etiquetar el colesterol recién sintetizado, un cuarto paso, la purificación de colesterol, puede ser requerido.

El ensayo proporciona la siguiente información: (i) cómo un tratamiento particular (una mutación, un derribo, la sobreexpresión de una o de un tratamiento) afecta a la capacidad de las células con el colesterol flujo de salida y (ii) cómo la capacidad de los aceptantes de plasma para aceptar el colesterol se ve afectada por una enfermedad o un tratamiento. Este método se utiliza a menudo en el contexto de la investigación cardiovascular, enfermedades metabólicas y neurodegenerativas, infecciosas y enfermedades reproductivas.

Protocolo

1. Preparación de ^[3 H]-colesterol

1. En la campana de humos, dispensar la cantidad necesaria de colesterol ^[3 H] en un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml (0,5 Ci (19 kBq) por pocillo se requiere para un ensayo típico).
2. Si ^[3 H]-colesterol se suspendió en tolueno, que se seque por completo con gas N2 y resuspender con 100% de etanol a una concentración final de 1 Ci (37 kBq / l. Vortex y se mezcla bien.

2. Células en placas y al etiquetado de colesterol celular

Este protocolo ha sido probado con los siguientes tipos de células: monocitos humanos ^4,5, THP-1 monocitos humanos macrófagos ^6,7,8, RAW 264,7 macrófagos murinos ^5,9,10,11, células HeLa ^12, endoteliales de vena umbilical humana las células (HUVEC), las células BHK-21 ^9, fibroblastos humanos y de ratón, las células HepG2 ^13,14 hepatocarcinoma humano ¹⁵ y, en forma modificada, a partir de plaquetas ^16.

1. Resuspender las células y contar con ellos. Células de la placa en placas de 12 pocillos en la densidad final de 0.2x10 ⁶ células por pocillo en 0,9 ml de medio completo. Las células seguirá creciendo y llegará a 0.8x10 ⁶ células por pocillo en el momento del experimento de flujo de salida. Para las células que no se dividen, como diferenciadas células THP-1, la densidad de siembra debe ser 0.8x10 ⁶ células por pocillo. Si se utiliza 6 - o placas de 24 pocillos, doble o la mitad del número de células por pocillo, respectivamente. El número de pozos debe ser suficiente para las determinaciones cuadruplicadas para cada condición experimental.
2. Si la diferenciación de células THP-1 se requiere, añadir PMA (concentración final 0,1 mg / ml) a los medios para 48-72 h.
3. Añadir una pequeña alícuota de los medios en el tubo de microcentrífuga que contiene la ^[3 H] colesterol.
4. Lave lados del tubo con los medios de comunicación antes de añadir ^{[3H]-colesterol} en una alícuota separada de medios completos (100 l / pocillo).
5. Añadir los medios de comunicación que contienen ^[3 H] colesterol a los pozos con las células (volumen final por pocillo es de 1 ml). Si ningún tratamiento de las células se requiere antes de etiquetado, las células pueden ser cultivadas en ^[3 H] colesterol que contienen medio.
6. Se incuban las células durante 48 horas en cultivo celular incubadora (37 ° C, 5% de CO _2).

3. Equilibrio de incubación

1. Después de la incubación de 48 horas, compruebe las células bajo el microscopio. Asegúrese de que estén sanos y se encuentran en aproximadamente el 80% de confluencia.
2. Retire los medios de comunicación que contiene ^[3 H] colesterol. Lave suavemente las células con PBS. Repita 3 veces el lavado.
3. Preparar medios libres de suero. Si es necesario, activar las células mediante la adición de agonistas de LXR (como A-901317 en 1.4 mmol / L) o cAMP (0,3 mmol / L; para las células de origen ratón) con el suero libre de los medios.
4. Añadir 500 l medios de comunicación libres de suero a cada pocillo.
5. Incubar durante 18 horas en la incubadora de cultivo celular (37 ° C, 5% de CO _2).

4. Incubación eflujo de colesterol

1. Después de la incubación de 18 horas en medio libre de suero, comprobar las células bajo el microscopio. Asegúrese de que estén sanos y confluente (mínimo 80% de confluencia).
2. Preparar una solución de flujo de salida de colesterol aceptantes en medio libre de suero. Ejemplos de aceptadores incluyen:
   La apolipoproteína AI (ApoA-I) (concentración final de 10 mg / ml)
   Lipoproteína de alta densidad (HDL) (concentración final 20 ug / ml)
   Ciclodextrina (concentración final 200 mg / ml)
   Plasma (concentración final de 1-2%)
3. Lave suavemente las células con PBS.
4. Añadir 250 l de medio libre de suero con aceptores a cada pocillo.
5. Deja una serie de pozos para determinar el fondo de eflujo (flujo de salida de medio libre de suero con el NO aceptante)
6. Se incuban las células durante 2 horas en cultivo celular incubadora (37 ° C, 5% de CO _2). Duración de la incubación de eflujo puede variar desde 30 minutos a 8 horas si es necesario.

5. Procesamiento de Samples

1. Después de 2 horas de incubación revisar las células bajo el microscopio.
2. Recoger los medios de comunicación en tubos de 1,5 ml de microfuga. Girar a 14.000 rpm durante 1-10 min a temperatura ambiente para eliminar los desechos celulares.
3. Transferir 100 l medios en 7 ml de vial de centelleo. Añadir 5 ml de Plus Insta-gel (PerkinElmer) y la mezcla de vórtice. Almacenar las muestras restantes a 4 ° C.
4. Colocar las placas en el congelador durante 30 minutos. Añadir 500 l DH ₂ O a cada pocillo. Ver células bajo el microscopio para asegurar que todas las células han levantado desde el fondo de los pozos. Si todavía adheridas, o bien deje los platos con dH ₂ O a 4 ° C durante la noche pozos o rasguño.
5. Una vez que todas las células ya han despegado, pipetee hacia arriba y hacia abajo para romper agregados celulares. Transferir 100 l en 7 ml viales de centelleo. Añadir 5 ml de Plus Insta-gel (PerkinElmer) y la mezcla de vórtice. Guarde el resto de las placas a 4 ° C.
6. Coloque viales de centelleo en un contador de centelleo. Configurar el contador para contar a ^[3H] endpm unidades.

6. El análisis de los resultados

1. La tasa de eflujo de colesterol se expresa generalmente como una proporción de colesterol a partir de células movido al aceptor. La siguiente fórmula se utiliza:

2. El flujo de salida específica se calcula como la diferencia entre el flujo de salida en la presencia o ausencia del aceptor (blanco).

7. Línea de tiempo

8. Los resultados representativos

Un ejemplo de un resultado de un experimento eflujo de colesterol se muestra en la fig. 1. En este experimento, THP-1 monocitos humanos se diferencian en macrófagos y el eflujo de colesterol a receptores diferentes eraprobado. Eflujo de colesterol y medio sin aceptantes ("en blanco") fue de 0,79% y este valor fue considerado como un flujo de salida no son específicos y se restará de los demás valores. Eflujo de colesterol para la salud humana apoA-I (concentración final de 30 mg / ml) fue de 4,75%. Una muestra de plasma de referencia se incluyó en este experimento para controlar la variabilidad inter-experimental. Una muestra de referencia se puede utilizar para la normalización de datos a través de un gran número de experimentos, pero hemos encontrado prudente repetir el ensayo si la variabilidad es alta. Un plasma del paciente (concentración final 2%) se puso a prueba antes y después de que el paciente fue tratado con medicamentos. Se concluyó que en este medicamento paciente tenía un impacto negativo en la capacidad de plasma para apoyar el eflujo de colesterol.

Otro ejemplo de un resultado del experimento eflujo se muestra en la fig. 2. En este experimento RAW 264.7 macrófagos fueron activados o no activados por incubación durante la noche con agonista LXR A-901317 (concentración final1 mol / L) y el eflujo de colesterol a la misma muestra de plasma humano (2%) se ensayó. Se concluyó que la activación de la expresión celular de los transportadores ABC con agonista LXR aumenta la capacidad de las células para liberar el colesterol a aceptor extracelular.

Figura 1. Eflujo de colesterol de células THP-1 a aceptores diversos. Porcentaje de eflujo de colesterol (es decir, la proporción de colesterol marcado movido a partir de células al aceptor especificado) se muestra después de la sustracción de los valores en blanco. La media ± desviación estándar de las determinaciones de cuatro ejemplares, * p <0,05.

Figura 2. Eflujo de colesterol de RAW 264.7 activado o no activado con agonista LXR al plasma humano. Porcentaje de eflujo de colesterol (es decir, la proporción de colesterol marcada movido de células para elaceptor se especifica) se muestra después de la sustracción de los valores en blanco. La media ± desviación estándar de las determinaciones de cuatro ejemplares, * p <0,001.

Discusión

El método descrito para medir el eflujo de colesterol está diseñado para medir el movimiento de colesterol de las células a un aceptor de colesterol extracelular. Hay varias consideraciones importantes en la comprensión de esta metodología.

Etiquetado y el equilibrio

En la metodología descrita colesterol marcado se añadieron al suero que contiene suero. Aunque nunca investigado en detalle, se supone que el colesterol se incorpora en las lipoproteínas de suero y que ...

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Reactivos \ células	HeLa	THP-1	RAW	HUVEC	BHK-21	HFF
Medios completos	RPMI - 10% de FCS - 1% de L-glutamina - Pen 0,2% por estreptococos			M199 - 5% de FCS - 1% de L-glutamina - Pluma de 1% por estreptococos - HEPES al 2% (1M) - 7% de las células endoteliales suplemento de crecimiento (ECG)	DMEM - 10% de FCS - 1% de L-glutamina - Pen 0,2% por estreptococos
Medio libre de suero	RPMI - 1% de L-glutamina - Pen 0,2% por estreptococos			M199 - 1% de L-glutamina - Pluma de 1% por estreptococos - HEPES al 2% (1M) - 7% de células endoteliales crecenº suplemento (ECG)	DMEM - 1% de L-glutamina - Pen 0,2% por estreptococos
Paso Método	1 x Tripsina	Suspensión	Raspar	1 x Tripsina
Paso Relación	03:10	01:03		01:20	01:03	01:03
Activación de las células (opcional)		A-901317 - LXR-agonista - Concentrado final. 4 micras,
Otros reactivos		forbol 12-miristato 13-acetato (PMA) - Diferenciación celular - Concentrado final. 0.1μg/ml