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Artículo de método

Microscopía Multiphoton de cerebro de ratón Borrado Expresando YFP

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DOI:

10.3791/3848

23 de septiembre de 2012

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Microscopía multifotónica de órganos enteros de ratón es posible por ópticamente despejar el órgano antes de formación de imágenes, pero no todos los protocolos de preservar la señal fluorescente de proteínas fluorescentes. El uso de un método de compensación óptica con base de etanol y alcohol bencílico deshidratación: bencil benzoato de compensación, se muestran imágenes de alta resolución multifotónica de cerebro de ratón que expresa toda YFP.

Resumen

Microscopía multifotónica de generación armónica fluorescencia intrínseca y segundo (SHG) de órganos enteros de ratón se hace posible por ópticamente despejar el órgano antes de formación de imágenes. 1,2 Sin embargo, para los órganos que contienen las proteínas fluorescentes como GFP y YFP, protocolos ópticos de compensación que utilizan metanol deshidratación y clara usando bencil alcohol: benzoato de bencilo (BABB), mientras que no protegido de la luz 3 no preservan la señal fluorescente. El protocolo presentado aquí es una forma novedosa en la que realizar todo el órgano de compensación óptica en cerebro de ratón preservando al mismo tiempo la señal de fluorescencia de YFP expresan en las neuronas. Alterar el protocolo de intercambio de información óptica de tal manera que el órgano se deshidrata mediante una serie de etanol se ha encontrado para reducir el daño a las proteínas fluorescentes y preservar su señal fluorescente para formación de imágenes multifotónica. 4 Usando un método optimizado de compensación óptica con base de etanol y deshidratación cobro por parte BABBmientras protegida de la luz, se muestran imágenes de alta resolución multifotónica de proteína amarilla fluorescente (YFP) de expresión en las neuronas del cerebro de un ratón de más de 2 mm por debajo de la superficie del tejido.

Protocolo

1. Animal perfusión 5 y Compensación Total de cerebro de ratón

  1. La longitud total del procedimiento pueden variar dependiendo de la duración de tiempo utilizado por cada etapa de deshidratación, pero en total todo el proceso puede llevarse a cabo en dos días.
  2. Pesar ratones YFP y luego profundamente anestesiar con una inyección intraperitoneal de ketamina / xilazina (100 mg / kg: 10 mg / kg).
  3. Confirmar un plano quirúrgico de anestesia profunda antes de proceder a la cirugía. Entrada del animal cada 5 min para ver si reacciona a un dedo del pie firme o de pinzamiento del rabo. Si el animal reacciona, una dosis suplementaria (1/3....

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Discusión

Mientras estándar colorantes orgánicos son compatibles con una amplia gama de disolventes orgánicos, y por lo tanto no suponen un reto particular para la limpieza de los protocolos, las proteínas fluorescentes a menudo son menos tolerantes a los cambios en el disolvente. 4 El objetivo del presente trabajo fue superar una limitación seria de anteriores protocolos de compensación óptica donde se perdió la fluorescencia de XFPs o gravemente degradada. Las imágenes que se presentan demuestran que la fluorescencia.......

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Divulgaciones

Los experimentos con animales se realizaron de conformidad con las directrices y regulaciones establecidas por el animal de Atención Institucional de la Universidad de Yale y el empleo.

Agradecimientos

Nos gustaría dar las gracias a Jacob Solís por su ayuda en la edición de vídeo.

Este trabajo fue financiado en parte por un premio CARRERA NSF DBI-0953902 a MJ Levene.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Nombre del reactivo Empresa El número de catálogo Comentarios
Phosphate Buffered Saline Sigma-Aldrich, Inc. D8537 500 ml, pH 7,2
Paraformaldehído Microscopía Electrónica de Ciencias 15710 10 x 10 ml, paraformaldehído al 16%
Alcohol de etilo Americana Bioanalytical AB00515-00500 500 ml, 200 pruebas
Alcohol de etilo Productos Pharmco, Inc. 111000190 1 gal., 190 pruebas
Alcohol bencílico Sigma-Aldrich, Inc. 402834 500 ml, 99 +%
Benzoato de bencilo Sigma-Aldrich, Inc. B6630-IL 500 ml, ≥ 99%
5X/0.5 NA objetivo Nikon AZ Harina Plan de 5X 15 WD

Referencias

  1. Parra, S. G., Chia, T. H., Zinter, J. P., Levene, M. J. Multiphoton microscopy of cleared mouse organs. J. Biomed. Opt. 15, 036017(2010).
  2. Vesuna, S., Torres, R., Levene, M. J. Multiphoton fluorescence, second harmonic generation, and fluorescence....

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Aclaramiento ópticoexpresión de YFPdeshidratación con etanolaclaramiento con BABBimagen del cerebro de ratónpreservación de proteínas fluorescentesgeneración de segundo armónicotransparencia tisularimagen de tejido profundo