Summary
קומפלקסי חלבונים מרובים רכיבים ממלאים תפקידים חיוניים בתפקוד ופיתוח סלולריים. כאן אנו מתארים שיטה המשמשת לבודד חלבון מתחמי יליד מעוברי דרוזופילה לאחר in vivo crosslinking ואחריו טיהור של מתחמי crosslinked לניתוח מבנה פונקציה שלאחר מכן.
Abstract
תהליכים תאיים רבים נשלטים על ידי קומפלקסי חלבוני multisubunit. לעתים קרובות מתחמים אלה מהווים transiently ודורשים סביבה מקורית להרכבה. לכן, כדי לזהות קומפלקסי חלבונים פונקציונליים אלה, חשוב לייצב אותם in vivo לפני תמוגה תא וטיהור שלאחר מכן. כאן אנו מתארים שיטה המשמשת לבודד מתחמים גדולים בתום לב חלבון מעוברי דרוזופילה. שיטה זו מבוססת על permeabilization עובר וייצוב של מתחמים בתוך את העוברים על ידי in vivo crosslinking באמצעות ריכוז נמוך של פורמלדהיד, אשר יכול בקלות לחצות את קרום התא. בהמשך לכך, מורכב החלבון של עניין הוא immunopurified ואחריו טיהור ג'ל ונותח על ידי ספקטרומטריית מסה. אנו מדגימים שיטה זו באמצעות טיהור של חלבון מורכב טיודור, שהוא חיוני להתפתחות תאי מין. טיודור הוא חלבון גדול, המכיל תחומים טיודור מרובים - קטןמודולים כי אינטראקציה עם arginines או lysines מפוגלים של חלבוני יעד. שיטה זו יכולה להיות מותאמת לבידוד של קומפלקסי חלבוני יליד מהאורגניזמים ורקמות שונים.
Introduction
בידוד של מכלולי חלבון multisubunit ומתחמי ה-DNA או RNA-חלבון מתבצע לזהות קומפלקסי חלבונים, לוקוסים הגנומי מוכרים על ידי חלבוני רגולטורים-DNA מחייבת או מטרות RNA של חלבוני RNA מחייבים. שיטות שונות מאפשרות זיהוי הגנום של אתרי ה-DNA המוכרים על ידי גורמי שעתוק או חלבוני הכרומטין (שבב-seq) 1 ומטרות RNA הקשורים בחלבון נתון מחייב-RNA (CLIP-seq) 2. הספריות של cDNAs נגזר RNA או DNA מטרות מכן רצף עמוק. שיטות אלה משתמשות כימיות או cross-linking כדי לייצב את מתחמים ואחרי immunoprecipitation (IP) עם נוגדנים נגד מרכיב חלבון של המתחם למד מושרה UV.
במהלך ההתפתחות של האורגניזם, קומפלקסי חלבונים רבים יוצרים transiently. לכן, זה הכרחי כדי לנתח את ההרכב ותפקוד של קומפלקסים אלה in vivo כדי להבין את המנגנונים המולקולריים השולטים development. ניתוח כזה in vivo יהיה מעולה במבחנת גישה שכן הוא כמעט בלתי אפשרי לשחזר ריכוזי יליד מרכיבי האינטראקציה והסביבה ביוכימית תאית במבחנה. כאן אנו מדגימים vivo בגישה שאנחנו בהצלחה להשתמש כדי לבודד את מערכות חלבון גדולות מעוברי דרוזופילה. בשיטה זו, קומפלקסי חלבונים בעוברי החיים הם crosslinked עם ריכוז נמוך של פורמלדהיד, ולאחר מכן מתחמי חלבון של עניין מבודדים על ידי IP עם נוגדנים נגד מרכיב ידוע של מתחמים ואחריו טיהור ג'ל של מתחמים וניתוח ספקטרומטריית מסה כדי לזהות רכיבים מורכבים לא ידועים. מאז פורמלדהיד הוא מסוגל לחדור את קרום התא ויש לו מגוון crosslinking של 2.3-2.7 3, ניתן crosslinked קומפלקסי חלבוני in vivo והרכיבים המורכבים צפויים להיות קרוב אחד לשני. שבמאמר זהמתאר שיטה זו באמצעות הבידוד של טיודור (TUD) חלבון מורכב לדוגמא ירושלים. TUD הוא חלבון בתאי מין שהוא חיוני להתפתחות תאי המין 4-7. חלבון זה מכיל 11 תחומים TUD ידועים אינטראקציה עם arginines או lysines מפוגלים של פוליפפטידים אחרים 8-10.
בעבר, יש לנו שנוצרו קו דרוזופילה מהונדס המבטא HA-מתויג TUD הפונקציונלי 5 ולכן, נוגדן אנטי HA ספציפי משמש לניתץ מורכב TUD לאחר crosslinking.
בנוסף לcrosslinks חלבונים, פורמלדהיד יכול ליצור crosslinks חומצת חלבון גרעין, והוא משמש בניסויי שבב seq. יתר על כן, בדרוזופילה, in vivo crosslinking עם פורמלדהיד אפשר זיהוי של יעד RNA חלבון helicase Vasa RNA 11.
ואילו במאמר זה אנו מתארים שיטה לin vivo crosslinking ופורification של קומפלקסי חלבונים מעוברי דרוזופילה, שיטה זו יכולה להיות מותאמת לאורגניזמים וברקמות אחרים.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. הכנת צלחות מיץ-אגר גדולות של אפל
- כדי להפוך את 4 צלחות, להוסיף 375 מיליליטר H 2 O, אגר זבוב 11.25 גרם ובר ומערבבים בבקבוק 1,000 מיליליטר. זה מיקס א החיטוי מיקס עם מכסה הבקבוק כתרים על מחזור 30 דקות-עיקור אחד עבור מוצרים נוזליים באופן רופף.
- הוספה 125 מיץ מיליליטר תפוח, 12.5 סוכר שולחן גרם ובר ומערבבים לכוס 500 מיליליטר. זה המיקס B. חום המיקס B על פלטפורמה מחוממת תוך כדי ערבוב ולשמור על הטמפרטורה בכ 70 ° C עד מעוקר של המיקס הוא סיים.
- עם השלמת מיקס מעוקר, להעביר מיקס B למערבב א שמור ערבוב את התערובת בשילוב בעדינות ולתת לו להתקרר במשך 15 דקות. הימנע על קירור וההתמצקות אגר הביאה לפני התוספת של חומר משמר.
- הפוך פתרון 4-hydroxybenzoate תיל 10% (משקל / נפח) באתנול. זה ישמש כחומר משמר. הוספת 3.75 מיליליטר של הפתרון לתערובת מיץ התפוחים אגר לעיל. שמור ערבוב במשך another 5 דקות.
- יוצקים את תערובת מיץ תפוחים אגר מיליליטר 125 עם חומר משמר לכל פלסטיק 300 2 סנטימטר או צלחת קלקר. תן לזה להתקרר לRT ולחזק. הימנע מיצירה של בועות אוויר בעת המזיגה.
הערה: צלחות מיץ התפוחים אגר מוכנות לשימוש באופן מיידי. כסה צלחות שאינן בשימוש עם עוטף ברור ולאחסן ב 4 מעלות צלזיוס למשך עד שבוע.
2. אוסף תסיסנית וטיפול טרום crosslinking
- טען כלוב אוכלוסייה עם כ 40,000 50,000 זבובים שממנו העוברים ייאספו.
- בצע שתי צלחות המכילה כל אחת 125 מיליליטר של קמח תירס, מולסה הסטנדרטי בינוני 12 ומפזר כ 4 גרם של שמרי אופה מיובש על כל צלחת. הנח צלחות אלה לתוך כלוב האוכלוסייה בC חממת 25 ° ל48 שעות לפטם את הזבובים.
- צלחות מיץ אגר חמות 2 תפוחים ל25 ° C. מפזר כ 1 גרם של שמרים יבשים אופה בכלצלחת. מניחים את 2 הצלחות בכלוב האוכלוסייה להתחיל לאסוף 0-1 עוברי HR-ישן.
- קח את הצלחות בסוף אוסף 1 שעות. החלף עם 2 צלחות חדשות, אם יש צורך בסיבוב של אוסף אחר.
- להוסיף מספיק מים כדי לכסות את הצלחות וresuspend את העוברים בעדינות עם מברשת צבע עדינה. יוצקים את עוברי resuspended דרך מסננת שתי שכבה עשויה מרשת תיל פלדה אל חלד.
הערה: השכבה העליונה עשויה רשת גודל נקבובית בינוני (850 מיקרומטר) אשר אוספת חלקי זבוב גדולים בעת נותן דרך עוברים. השכבה התחתונה עשויה מרשת בסדר (75 מיקרומטר) אשר אוספת עוברים בעת נותן באמצעות שמרים ומים. - השתמש במברשת הצבע העדינה להעביר את העוברים שנאספו לתוך סל איסוף נעשה עם צינור 50 מיליליטר ורשת ניילון דק. יש לשטוף את העוברים לזמן קצר במים ולאחר מכן למחוק את הרשת על מגבות נייר לייבוש.
- לטבול את העוברים באקונומיקת 50% עם מתערבל בעדינות במשך 3 דקות. יש לשטוף יסודיly עם מים כדי להסיר כל אקונומיקה שנותרה. למחוק את הרשת על מגבות נייר לייבוש.
- לטבול את עוברי dechorionated בisopropanol עם תסיסה עדינה ל15 שניות או עד שההתמוטטות של גושים רב עובר (זה לא אמור לקחת זמן רב יותר מאשר 30 שניות). למחוק את הרשת על מגבות נייר לייבוש ביסודיות.
- לטבול את העוברים בheptane במשך 5 דקות תוך השימוש בפיפטה כדי להזרים heptane על העוברים כדי לשמור אותם מושעים. למחוק את הרשת על מגבות נייר לייבוש.
- יש לשטוף את העוברים עם זרמים של בופר פוספט, pH 7.4 (PBS) המכילים 0.1% טריטון X-100 (PBST) במשך 3 דקות.
- לפרק את סל האיסוף ולהעביר את העוברים יחד עם הרשת לצינור 15 מיליליטר מכיל 10 PBST מיליליטר. להפוך את הצינור בעדינות כדי לשטוף את העוברים מחוץ לרשת.
- הסר את הרשת מהצינור. שים את הצינור במצב אנכי ולתת את העוברים לשקוע לחלק התחתון של הצינור על ידי כוח הכבידה.
הערה: כ 100-300μl של עוברים צפוי לאוסף 1 שעות מכלוב אחד. - הסר את PBST ותמשיך לבצע crosslinking באופן מיידי.
3. בvivo crosslinking של עוברים שנאספו
- הכן פורמלדהיד 0.2% בPBST מייד לפני השימוש. הוסף 10 מיליליטר של מקבע פורמלדהיד לעוברים ולדגור על 25 ° C עם תסיסה עדינה על שייקר רוטרי 10 דקות. בטל מקבע שאינו בשימוש על ידי סופו של היום.
- להרוות את תגובת crosslinking
- בסופו של crosslinking, בואו העוברים לשקוע לתחתית של התחתית.
- הסר את פתרון פורמלדהיד. מייד להוסיף 10 מיליליטר של 0.25 M גליצין בPBST כדי להרוות את תגובת crosslinking. לדגור על 25 ° C עם תסיסה עדינה על שייקר סיבובי למשך 5 דקות.
- בואו העוברים לשקוע לתחתית של התחתית. הסר את הפתרון להרוות. לשטוף את העוברים עם 10 מיליליטר של PBST שלוש פעמים.
- להסיר לחלוטין את Pפתרון לשטוף BST באמצעות פיפטה. עוברי חנות ב -80 מעלות צלזיוס עד לשימוש.
4. לדוגמא הכנת חלבון וImmunoprecipitation
- Homogenize עוברי crosslinked 500 μl באמצעות homogenizer Dounce ב2 מאגר תמוגה מיליליטר (0.5 M אוריאה, 0.01% SDS, 2% Triton-X 100, פלואוריד 2 מ"מ phenylmethanesulfonyl [PMSF] ומעכבי פרוטאז קוקטייל PBS).
הערה: בצע את זה ואת השלבים הבאים בRT אלא אם צוין אחרת. - העבר את lysate ל1.5 צינורות צנטריפוגה מיליליטר ועדינות רוק על במה מסתובב במשך 15 דקות כדי להבטיח תמוגה יסודית. צנטריפוגה lysate XG 16,000 במשך 5 דקות עד גלולה פסולת הסלולר. שמור את supernatant בצינור מיליליטר נקי 15.
- הוסף 40 μl חרוזים agarose אנטי HA בלועים לsupernatant ולדגור על פלטפורמה מסתובבת ל2.5 שעה.
- גלולה חרוזים על ידי צנטריפוגה ב2,500 XG במשך 5 דקות. הסר את supernatant אך להשאיר את approximately 250 μl בצינור. Resuspend את החרוזים supernatant נותר ולהעביר לטור ספין 1.5 מיליליטר עם מסנן נקבובית 10-מיקרומטר.
- צנטריפוגה עמודת הספין על XG 12,000 ל10 שניות וזורקים את הזרימה דרך.
- שטוף את החרוזים על ידי הוספת 200 לשטוף חיץ μl (0.1 M גליצין, 1 M NaCl, IGEPAL 1% CA-630, Tween-20 0.1%, ב-PBS). צנטריפוגה העמודה ב12,000 XG במשך 10 שניות וזורקים את הכביסה. חזור על לשטוף פעמים נוספות.
- הוסף 40 חיץ elution μl (2 מ"ג / מיליליטר HA-peptide בPBS) לחרוזים ולדגור על 37 מעלות צלזיוס במשך דקות 15 עם תסיסה עדינה כל 5 דקות. צנטריפוגה העמודה ב12,000 XG במשך 10 שניות ולאסוף את eluate.
- לאשר elution של המתחם על ידי ניתוח כתם המערבי באמצעות אנטי HA נוגדן 13.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
היעילות של crosslinking והטיהור המוצלחת של החלבון המורכב TUD crosslinked נותחו על ידי SDS-PAGE על 3% - 7% ג'ל צעד (איור 1) ואחריו כתם מערבי (איור 2).
מטרת שימוש ב3% - ג'ל שלב 7% מבוססת על ההפרדה היעילה של חלבונים מורכבים TUD crosslinked מהחלבון שנותר uncrosslinked TUD והריכוז המורכב. מתחת in vivo תנאי crosslinking שלנו שהוזכרו לעיל, חלק גדול מחלבון TUD יכול עדיין להישאר uncrosslinked. חלבון TUD חופשי זה הייתי copurify עם מורכב crosslinked במהלך IP עד הפרדה ידי-SDS. למרות גדול בגודל, uncrosslinked חלבון TUD (285 KDA) נודד על פני 3% - גבול 7% ללא שמירה ברורה. בעוד שחלבון מורכב TUD crosslinked עם משקל מולקולרי גדול יותר היה מתקשה נודדים מעבר לגבול ג'ל, וכתוצאה מכך הדואר מורכב ש" לכודים "והתרכזתי בגבול או" עוקב "בסמוך לגבול ולכן, הפרדה מחלבון TUD בחינם.
הכללתו של בקרה נאותה היא קריטית כדי לאמת את הספציפיות של פרוטוקול crosslinking זה. לכן, השתמשנו עוברים לבטא חלבון ה-GFP-tagged HA 14 כדי לפקח על היקף crosslinking. יש לנו לבצע ניסויי פיילוט של ריכוזים שונים פורמלדהיד (0.1% - 2%) על עוברים להביע GFP וחלק מתויג-HA של התוצאות (0.1% - 0.5%) מוצג כאן (איור 3). ברור שרוב המוחלט של חלבון ה-GFP בעוברים שטופלו (פורמלדהיד עד 0.5%) נשארו uncrosslinked, אשר תוקף כי פרוטוקול crosslinking שלנו עושה לא חלבון המטרה Crosslink למולקולות המקיפות אקראיות. בפרט, 0.2% טיפול פורמלדהיד (איור 3, מסלול 5 ו -6) לא הראה כל מוצרי crosslinked בהשוואה לuncrשליטת osslinked (איור 3, מסלול 1 ו -2), למרות זמן החשיפה ארוך של הסרט, שהצדיק עוד יותר הבחירה של פורמלדהיד 0.2% שלנו בפרוטוקול זה. עם זאת, תמיד צריכים להיות crosslinked עוברי שליטת ה-GFP במקביל לcrosslinking המורכב TUD באותם תנאים ודגימות חלבון ה-GFP השליטה צריך להיות מנוהל על 3% - 7% ג'ל הצעד יחד עם דגימות מורכבות TUD הבאים ה-IP. בנוסף, שניהם מורכב TUD ושליטת GFP המתאים 3% - אזורי ג'ל 7% יש נכרת והוגשו לניתוח ספקטרומטריית מסה כדי לקבוע מועמדים חיוביים כוזבים שיהיו נוכח בשתי להקה מורכבת TUD ושליטת ה-GFP.
את האפקטיביות של vivo crosslinking בנקבעו על ידי השוואת חלבון TUD חופשי ומורכב TUD משליטת uncrosslinked ודגימות עוברי crosslinked בהתאמה (איור 2 א). חלבון TUD חינם מעוברי שליטת uncrosslinked כמעט exclusively נדד על פני 3% - גבול 7% עם כמות מינימאלית נשמרה בסמוך לאזור הגבול (איור 2 א ', מסלול 1). בניגוד לכך, את עוברי crosslinked הראו הנוכחות של קומפלקס crosslinked משקל מולקולרי הגדול TUD ב3% - 7% גבול ג'ל (איור 2 א ', מסלול 2). זה הראה באופן ברור כי הליך crosslinking crosslinked בהצלחה כ 50% בסך הכל חלבון TUD עם in vivo שותפיה אינטראקציה (השווה מסלול איור 2 א 1 ו -2).
Elution התחרותי עם HA-peptide אישר את הטיהור המוצלחת וחיזק את הספציפיות של החלבון המורכב TUD המטוהרים (איור 2). שבריר elution ידי HA-peptide הכיל המורכב התרכז סביב 3% - אזור גבול 7% וגם חלבון TUD חופשי (איור 2 ב, מסלול 1). חיץ מדגם SDS הבא eluted בעיקר בחינם TUD שנותר על חרוזים וכמות מזערית של מתחם TUD (
. איור 1 תרשים של 3% -. ג'ל שלב 7% משמש ל- SDS 3% - 7% ג'ל הצעד הוא להפיל באופן ידני בצורה כזאת שהוא מכיל שלוש שכבות. מלמעלה עד למטה, שכבות אלה הן 3% ג'ל ערימה, 3% ג'ל הפרדה ו7% ג'ל הפרדה. כדי לעבוד עם מערכת ה-Mini-משנה הצורה (Bio-Rad) המשמשת בכתב היד הזה, את הגובה של 3% ג'ל ההפרדה היה עשוי להיות כ 1 סנטימטר כמתואר בתרשים.
הערה: 3% ג'ל לערום ושכבות ג'ל המפרידות 3% הם מאוד שבירים כל כך להשתמש בזהירות בעת הטיפול בג'ל כדי למנוע עיוות של שכבות אלה.
"Src =" upload/51387/51387fig2highres.jpg / files/ftp_upload/51387/51387fig2.jpg "/>
. איור 2 תוצאות כתם מערביות של עוברי crosslinked ועוברים בקרת lysates וטיהור של חלבון מורכב טיודור ידי ה-IP לוח, מסלול 1, lysate חלבון הגולמי של עוברי שליטת uncrosslinked.; מסלול 2, lysate חלבון גולמי מעוברי crosslinked פורמלדהיד. לוח ב ', מסלול 1, elution ידי HA-peptide לאחר IP מlysate עובר crosslinked; מסלול 2, elution ידי 2 x חיץ מדגם SDS לאחר elution HA-פפטיד הראשוני. SDS-PAGE נדרס ב200 V ל3.5 שעה. נוגדן אנטי HA (1:1,000) שימש בכתם מערבי.
איור 3. תוצאות כתם מערביות של עוברי crosslinked ועוברים בקרה להביע GFP-tagged HA. 1 ליין, o lysate חלבון גולמיו עוברי שליטת uncrosslinked; מסלול 2, זהה למסלול 1, אבל פי שתיים מהסכום; מסלול 3, lysate חלבון הגולמי של עוברי crosslinked באמצעות פורמלדהיד 0.1%; מסלול 4, זהה למסלול 3 אלא פי שתיים מהסכום; מסלול 5, lysate חלבון הגולמי של עוברי crosslinked באמצעות פורמלדהיד 0.2%; נתיב 6, זהה למסלול 5, אבל פי שתיים מהסכום; נתיב 7, lysate חלבון הגולמי של עוברי crosslinked באמצעות פורמלדהיד 0.3%; מסלול 8, זהה לנתיב 7 אבל פי שתיים מהסכום. ליין 9, lysate הגולמי של עוברי crosslinked באמצעות פורמלדהיד 0.5%. SDS-PAGE נדרס ב200 V דקות 45 ב4% - ג'ל שיפוע 15%. נוגדן אנטי HA (1:1,000) שימש בכתם מערבי.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
פורמלדהיד כבר בשימוש נפוץ כמגיב crosslinking לזיהוי חלבונים ואינטראקציות חומצת חלבון גרעין. חדירות טובות שלה מסיסות וקרום תא, יחד עם התאימות לנהלי ספקטרומטריית מסה במורד הזרם, להפוך פורמלדהיד סוכן מועמד אידיאלי עבור יישומי crosslinking תאיים 3,15-17. בפרט, הוא השתמש בהצלחה כדי לזהות mRNAs הקשורים לושה, helicase RNA תאי נבט קריטי ב11 דרוזופילה. בנוסף, לפורמלדהיד אחת מהזרועות הקצרים ביותר spacer (2.3-2.7 Å) בקרב crosslinkers זמין מסחרי, מה שמרמז כי מולקולות היחידים שקיימות בסמיכות יהיו crosslinked בתנאים הנכונים, חיזוק ספציפי של השותפים באינטראקציה של חלבון המטרה . מהסיבות האמורות לעיל, פורמלדהיד נבחר כסוכן crosslinking בפרוטוקול שלנו. עם זאת, זה לא צריך לשלול את usefulness של סוכני crosslinking אחרים ביישום vivo לעוברי דרוזופילה. עם זאת, יש לנו ניסיתי להשתמש dithiobis (propionate succinimidyl) (DSP), crosslinker N-hydroxysuccinimide (NHS) אסתר משפחה משמש לעתים קרובות בשילוב עם פורמלדהיד במבחני שבב 17,18, להחליף פורמלדהיד במחקר שלנו, אבל לא TUD לכאורה מורכב הושג עם crosslinker הזה מצד השני, DSP עשוי להיות יעיל לקומפלקסי חלבונים אחרים אשר צריך להיקבע על בסיס כל מקרה לגופו. בנוסף לin vivo גישת crosslinking, במבחנה crosslinkers מbismaleimidohexane משפחה (BMH) הוכח כיעיל בלכידת אינטראקציות בין חלבונים בעוברי דרוזופילה 14,19, עם זאת, בניסויים אלה התרחש crosslinking לאחר תמציות עובר נעשו.
זמן crosslinking, הטמפרטורה וריכוז פורמלדהיד הם העומדים השלושה הגדולותtors המשפיעים על יעילות crosslinking. הפרוטוקול שלנו נבדק באמצעות ניסויי פיילוט לכל גורם בודד, ולכן, זה כבר מותאם לcrosslinking של חלבון TUD והשותפים באינטראקציה שלה בעוברי דרוזופילה in vivo, תוך שמירה על האיזון בין הספציפיות של מתחם crosslinked ואת הסיכון של crosslinking מולקולות ספציפיות. crosslinking ספציפי מוביל לנוכחות של תוצאות חיוביות שגויות במתחם וחייב להיות מבוקר בקפידה עם שליטת חלבון שאינה קשורה, למשל ה-GFP, ששמשה בניסויים שלנו. בנוסף, תנאי crosslinking אופטימליים עשויים להשתנות עם מולקולות יעד שונות. לכן, באמצעות הפרוטוקול שלנו כנקודת התחלה, בפעם crosslinking האופטימלית, טמפרטורה וריכוז פורמלדהיד יצטרך להיקבע לקומפלקס חלבון נתונה של ריבית.
ברגע שהתנאים אופטימליים crosslinking הם הקימו אותו הוא קריטי לFOllow בדיוק בכל פעם שעוברת הם crosslinked כדי למזער crosslinking ספציפי. צעד חיוני נוסף הוא שטיפת חרוזים אחרי ה-IP עם ריכוז גבוה של NaCl (1 M) ושני חומרי ניקוי (IGEPAL CA-630 וTween-20) כדי להפחית ספציפי מחייב של חלבונים שאינם קשורים מתמציות עוברי לחרוזים.
הפרוטוקול שלנו תלוי בזיקה הגבוהה בין חלבון המטרה והנוגדנים המשמשים לניתץ מורכב החלבון במהלך IP. לכן, אפיטופ של הנוגדן בחלבון המטרה לא צריך להיות נהרס על ידי crosslinking וחייב להיות נגיש לנוגדנים במהלך IP. בנוסף, האינטראקציה חלבון נוגדנים היעד צריכה לעמוד בשוטף המחמיר שמטרתה ההפחתה של חלבוני רקע ספציפיים. דרישות אלה עבור ה-IP המוצלח עשויות למנוע אחד מהעסקת שילוב נוגדן epitope מסוים, עם זאת, זה צריך להיות אפשרי למצוא זוג נוגדנים epitope מתאים לחלבון של עניין. בפרט, epitope HA-התג והנוגדנים המקביל שימשו בהצלחה בפרוטוקול זה.
הפרוטוקול המתואר יכול לשמש לבידוד של קומפלקסי חלבוני ילידים במהלך שלבי התפתחות שונים וברקמות שונות. למרות שאנו מראים בשיטה זו לדרוזופילה, הפרוטוקול שלנו יכול להיות מותאם לאורגניזמים אחרים.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
יש המחברים אין לחשוף.
Acknowledgments
אנו מודים לירדן דייוויס, Yanyan לין, אריק Schadler וJimiao ג'נג לעזרה הטכנית שלהם בעבודה זו. עבודה זו נתמכה על ידי NSF קריירה להעניק MCB-1054962 לALA
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Drosophila agar | Lab Scientific (http://www.labscientific.com/) | FLY-8020-1 | Do not autoclave the water and agar mix for prolonged period of time as it will cause the apple juice plates to become fragile |
| Methyl 4-hydroxybenzoate | Sigma (http://www.sigmaaldrich.com/united-states.html) | H5501 | Other name: TEGOSEPT |
| Population cage | Flystuff (http://www.flystuff.com/) | 59-104 | |
| Fine nylon mesh | Flystuff (http://www.flystuff.com/) | 57-102 | When making the collection basket, cut the mesh slightly larger than the opening of the falcon tube cap to ensure a tight seal |
| Dounce homogenizer | Sigma (http://www.sigmaaldrich.com/united-states.html) | D8938-1SET | Chill the homogenizer on ice and prerinse with cold lysis buffer before use to prevent protein degradation |
| Protease inhibitor cocktail | Roche (http://www.rocheusa.com/portal/usa) | 4693132001 | PBS could be used to prepare concentrated protease inhibitor stock solution |
| Anti-HA agarose beads | MBL international (http://www.mblintl.com/) | 561-8 | The kit also includes HA-peptide and spin columns |
| HA-peptide | MBL international (http://www.mblintl.com/) | 561-8 | Prepare to 2 mg/ml with PBS |
| Spin Column | MBL international (http://www.mblintl.com/) | 561-8 | Spin columns are included as part of the kit |
| Isopropanol | Fisher Scientific (www.fishersci.com/) | BP26324 | |
| Triton X-100 | Fisher Scientific (www.fishersci.com/) | BP151-500 | |
| Heptane | Fisher Scientific (www.fishersci.com/) | H350-4 | |
| PBS | Invitrogen (https://www.lifetechnologies.com/us/en/home.html) | AM9625 | Dilute from 10X to 1X with nanopure water before use |
| Formaldehyde | Fisher Scientific (www.fishersci.com/) | BP531-500 | |
| Glycine | BioRad (www.bio-rad.com/) | 161-0724 | |
| SDS | BioRad (www.bio-rad.com/) | 161-0301 | |
| Urea | BioRad (www.bio-rad.com/) | 161-0730 | |
| Phenylmethanesulfonyl fluoride | Sigma (http://www.sigmaaldrich.com/united-states.html) | P7626-1G | Prepare 200 mM stock solution in isopropanol then dilute to working concentration of 2 mM in lysis buffer |
| IGEPAL CA-630 | Sigma (http://www.sigmaaldrich.com/united-states.html) | I8896-50ML | |
| Tween 20 | Fisher Scientific (www.fishersci.com/) | BP337-100 | |
| 15-ml tubes | USA Scientific (http://www.usascientific.com/) | 1475-0511 | |
| Bleach | Clorox brand | Dilute with equal volume of nanopure water to make 50% bleach | |
| 50-ml tubes | BD Biosciences (http://www.bdbiosciences.com/home.jsp) | 352098 | |
| Top layer sieve | Fisher Scientific (www.fishersci.com/) | 04-884-1AK | |
| Bottom layer sieve | Fisher Scientific (www.fishersci.com/) | 04-884-1BA |
References
- Landt, S. G., et al. ChIP-seq guidelines and practices of the ENCODE and modENCODE consortia. Genome research. 22, 1813-1831 (2012).
- Murigneux, V., Sauliere, J., Roest Crollius, H., Le Hir, H. Transcriptome-wide identification of RNA binding sites by CLIP-seq. Methods. , (2013).
- Sutherland, B. W., Toews, J., Kast, J. Utility of formaldehyde cross-linking and mass spectrometry in the study of protein-protein interactions. Journal of mass spectrometry : JMS. 43, 699-715 (2008).
- Creed, T. M., Loganathan, S. N., Varonin, D., Jackson, C. A., Arkov, A. L. Novel role of specific Tudor domains in Tudor-Aubergine protein complex assembly and distribution during Drosophila oogenesis. Biochemical and biophysical research communications. 402, 384-389 (2010).
- Arkov, A. L., Wang, J. Y., Ramos, A., Lehmann, R. The role of Tudor domains in germline development and polar granule architecture. Development. 133, 4053-4062 (2006).
- Boswell, R. E., Ptudor Mahowald, A. a gene required for assembly of the germ plasm in Drosophila melanogaster. Cell. 43, 97-104 (1985).
- Thomson, T., Lasko, P. Drosophila tudor is essential for polar granule assembly and pole cell specification, but not for posterior patterning. Genesis. 40, 164-170 (2004).
- Arkov, A. L., Ramos, A. Building RNA-protein granules: insight from the germline. Trends in cell biology. 20, 482-490 (2010).
- Gao, M., Arkov, A. L. Next generation organelles: Structure and role of germ granules in the germline. Molecular reproduction and development. , (2012).
- Liu, H., et al. Structural basis for methylarginine-dependent recognition of Aubergine by Tudor. Genes & development. 24, 1876-1881 (2010).
- Liu, N., Han, H., Lasko, P. Vasa promotes Drosophila germline stem cell differentiation by activating mei-P26 translation by directly interacting with a (U)-rich motif in its 3. UTR. Genes & development. 23, 2742-2752 (2009).
- Matthews, K. A. Drosophila melanogaster: Practical Uses in Cell and Molecular Biology. Methods in Cell Biology. Goldstein, L. S. B., Fyrberg, E. A. 44, Academic Press. 13-32 (1995).
- Sambrook, J., Russell, D. W. Molecular cloning: A laboratory manual. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. (2001).
- Thomson, T., Liu, N., Arkov, A., Lehmann, R., Lasko, P. Isolation of new polar granule components in Drosophila reveals P body and ER associated proteins. Mechanisms of development. 125, 865-873 (2008).
- Vasilescu, J., Guo, X., Kast, J. Identification of protein-protein interactions using in vivo cross-linking and mass spectrometry. Proteomics. 4, 3845-3854 (2004).
- Klockenbusch, C., Kast, J. Optimization of formaldehyde cross-linking for protein interaction analysis of non-tagged integrin beta1. J Biomed Biotechnol. 2010, 9275-9285 (2010).
- Nowak, D. E., Tian, B., Brasier, A. R. Two-step cross-linking method for identification of NF-kappaB gene network by chromatin immunoprecipitation. Biotechniques. 39, 715-725 (2005).
- Zeng, P. Y., Vakoc, C. R., Chen, Z. C., Blobel, G. A., Berger, S. L. In vivo dual cross-linking for identification of indirect DNA-associated proteins by chromatin immunoprecipitation. Biotechniques. 41, 694- (2006).
- Liu, N., Dansereau, D. A., Lasko, P. Fat facets interacts with vasa in the Drosophila pole plasm and protects it from degradation. Current biology : CB. 13, 1905-1909 (2003).
