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Artículo de método

Los geles de poliacrilamida para invadopodios y Fuerza de tracción Ensayos sobre las células cancerosas

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DOI:

10.3791/52343

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4 de enero de 2015

 , 
1Department of Otolaryngology, Vanderbilt University Medical Center

En este artículo

Resumen

Rigidez mecánica en el microambiente tumoral juega un papel fundamental en el impulso de comportamiento maligno mediante el aumento de la actividad invadopodios y actomyosin contractilidad. Geles de poliacrilamida utilizando (PaaS), ensayos de invadopodios y de la fuerza de tracción se pueden utilizar para estudiar las propiedades invasivas y contráctiles de las células cancerosas en respuesta a la matriz rigidez.

Resumen

Tejidos tumorales rígidos han sido fuertemente implicados en la regulación de la migración celular y la invasión del cáncer. La migración invasiva a través de tejidos reticulados se ve facilitada por los salientes de actina-ricos llamados invadopodios que proteolíticamente degradan la matriz extracelular (ECM). Actividad invadopodios ha demostrado ser dependiente de la rigidez ECM y célula de cáncer de fuerzas contráctiles que sugieren que las señales de rigidez pueden regular estas estructuras subcelulares a través de la contractilidad actomiosina. Propiedades invasivas y contráctiles de las células cancerosas pueden ser correlacionados in vitro utilizando ensayos invadopodios y de la fuerza de tracción sobre la base de geles de poliacrilamida (PAA) de diferentes rigideces. Propiedades invasivas y contráctiles de las células cancerosas pueden ser correlacionados in vitro utilizando ensayos invadopodios y de la fuerza de tracción sobre la base de geles de poliacrilamida (PAA) de diferentes rigideces. Aunque existen algunas variaciones entre los dos ensayos, el protocolo presentado aquí proporciona un método para crear FCA ésimoa se puede utilizar en ambos ensayos y son fácilmente adaptables a las necesidades biológicas y técnicas específicas de los usuarios.

Introducción

La rigidez de la ECM asociado al tumor ha sido identificado como un factor significativo en la conducción de comportamiento maligno mediante el aumento de la contractilidad actomyosin 1-3. Mientras que este efecto se ha demostrado principalmente con células de cáncer de mama, la rigidez de la matriz se ha encontrado para alterar las propiedades invasivas de las células derivadas de una variedad de cánceres 4-8 lo que sugiere que la rigidez tumor pueden desempeñar un papel en otro tipo de cánceres. Para penetrar en los tejidos entrecruzados durante la migración invasivo, las células cancerosas utilizan protuberancias adhesivas actina-ricos conocidos como invadopodios que localizar proteinasas para degradar focalmente el ECM 9. Invadopodios se consideran una característica de las células invasoras y han sido implicados en la invasión de células tumorales y la metástasis 10,11. El trabajo previo ha mostrado que la rigidez de la matriz puede regular los números invadopodios y la degradación de ECM asociado 4,12 través de la miosina II actividad y proteínas mechanosensitive 12. Dado quecorrelación entre la densidad del tumor y la agresividad del cáncer 13,14, estos resultados sugieren un mecanismo por el cual las células cancerosas pueden responder a los tejidos tumorales rígidos para conducir la invasión y la metástasis a través de la contractilidad actomiosina.

En rigidez ECM vitro y en la densidad del tejido vivo se ha demostrado para regular el comportamiento invasivo de las células cancerosas 1,15-17. Mientras que la contractilidad actomyosin parece ser importante en este proceso, la corriente de conflicto estudios en cuanto a si la capacidad metastásica se correlaciona con aumento o disminución de las fuerzas contráctiles 6,18-20. Además, aún se desconoce si estas fuerzas median directamente la actividad invadopodios 21. Recientemente, hemos encontrado que las fuerzas contráctiles célula cancerosa dependían de la rigidez de la matriz y fueron predictivos de la degradación de ECM por invadopodios 5. Estos resultados sugieren que las fuerzas celulares pueden desempeñar un papel importante en la progresión del cáncer mediando invadopodios actividad en respuesta a las propiedades mecánicas del microambiente del tumor.

Para correlacionar propiedades invasivas y contráctiles de las células cancerosas 5, modificamos un protocolo para la creación de FCA con diferentes rigideces que se utilizó anteriormente para investigar la actividad invadopodios rigidez dependiente 4,12,22. Por reticulación químicamente fibronectina plasmática humana en todo el FCA, estos hidrogeles modificados se pueden utilizar como la base para tanto invadopodios y los ensayos de fuerza de tracción para asegurar que las células experimentaron las mismas rigideces en ambos experimentos 5. En los ensayos de invadopodios, la fibronectina proporciona un dominio de unión natural para la gelatina para vincular el ECM superpuesto a la FCA para detectar degradación de la matriz. En los ensayos de fuerza de tracción, la fibronectina proporciona un ligando para la adhesión celular directa para detectar desplazamientos de microesferas utilizadas para calcular las fuerzas de tracción celulares. Este método resulta en lo que hemos llamado blando, duro,y PAA rígidos que están unidos a los platos con fondo de cristal y tienen módulos de elasticidad, E, de 1.023, 7.307 y 22.692 Pa 5 que abarcan la gama de propiedades mecánicas reportados para los tejidos normales y cancerosos 23.

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Protocolo

1. Preparación de cubreobjetos de vidrio para FCA

  1. Clean 12 mm cubreobjetos con toallitas bajos pelusa.
  2. Llama el cubreobjetos mm 12 y el cubreobjetos de 14 mm en la cúpula de cada 35 mm de vidrio plato inferior pasándolos a través de un mechero Bunsen con unas pinzas.
  3. Tratar los micropocillos con 200 l de NaOH 0,1 N durante 5 min a temperatura ambiente.
  4. Aspirar y aire sequen los pocillos durante 30 minutos.
  5. Tratar a los pocillos con 50 a 100 l de 3-aminopropiltrimetoxisilano durante 10 min a temperatura ambiente en la campana de humos. Este producto químico reacciona con el plástico; por lo tanto, utilizar pipetas de vidrio y no llene los pocillos completamente para evitar el contacto con el plástico plato.
  6. Lavar los pocillos con agua ultrapura durante aproximadamente 10 min hasta que el 3-aminopropiltrimetoxisilano se vuelve claro.
  7. Lavar los pocillos con agua ultrapura dos veces utilizando un frasco.
  8. Lavar los pocillos con 2 ml de agua ultrapura unt temperatura ambiente en un agitador ajustado a una velocidad media (~ 1 Hz) durante 10 min.
  9. Aspirar y aire sequen los pocillos durante 30 minutos.
  10. Tratar los pocillos con 2 ml de solución de glutaraldehído al 0,5% a temperatura ambiente en un agitador ajustado a una velocidad media (~ 1 Hz) durante 30 min.
  11. Lavar los pocillos con 2 ml de agua ultrapura a temperatura ambiente en un agitador a velocidad media (~ 1 Hz) durante 10 min. Repetir dos veces más para un total de 30 min.
  12. Pocillos secos en un ángulo empinado (60º o más) durante 30 minutos.
    Nota: Los platos se pueden almacenar durante 2 meses en un desecador.

2. Preparación de la FCA para invadopodios ensayos

  1. Para una solución de la PAA suave (8% de acrilamida y 0,05% BIS) 1 ml, combinar 200 l de 40% de acrilamida, 25 l de 2% BIS y 574 l de agua ultrapura (Tabla 1).
  2. Para una solución de la PAA duro (8% de acrilamida y 0,35% BIS) 1 ml, combinar 200 l de 40% de acrilamida, 175 & #181; l de 2% BIS, y 409 l de agua ultrapura (Tabla 1).
  3. Para una solución de la PAA rígido (12% de acrilamida y 0,60% BIS) 1 ml, combinar 300 l de 40% de acrilamida, 300 l de 2% BIS, y 169 l de agua ultrapura (Tabla 1).
  4. Desgasificar las soluciones para 15 min. Añadir 200, 215, y 230 l de 1 mg / ml de fibronectina de plasma humano en agua ultrapura a las soluciones de PAA blandos, duros, y rígidas, respectivamente. Para todas las soluciones, añadir 1 l de / ml de éster de ácido acrílico N-hidroxisuccinimida 10 mg (NHS), 5 l de un persulfato de amonio 100 mg / ml, y 2 l de N, N, N ', N'-tetrametiletilendiamina (TEMED ; Tabla 1). Mezclar con pipeteo suave y evitar la creación de burbujas en soluciones.

PAA
(1 ml) 		40%
AA
(L) 		2%
BIS
(L) 		Ultrapura
Agua
(L) 		1 mg / ml
FN
(L) 		10 mg / ml
NHS Ester
(L) 		100 mg / ml
APS
(L)
TEMED
(L) 		Elástico
Módulo
(Pa)
Suave 200 25 574 200 1 5 2 1023
Duro 200 175 409 215 1 5 2 7307
Rígido 300 300 169 230 1 5 2 22692

Tabla 1: Ingrediente volumes y que resulta módulos elásticos para FCA blandos, duros y rígidos utilizados en los ensayos invadopodios. AA = acrilamida, FN = fibronectina, APS = persulfato de amonio.

  1. Pipetear 8,48 l de la solución de PAA en el centro de cada pocillo.
    Nota: Este volumen se obtiene teóricamente un PAA de 75 micras de espesor.
  2. Baje suavemente el lado flameado del cubreobjetos de 12 mm a la gota en el pocillo, en pinzas.
  3. Deje que la solución PAA intercalada para polimerizar durante 15-30 minutos. Verifique polimerización marcando la solución sobrante.
  4. Añadir 2 ml de 1x PBS a cada placa y retirar los cubreobjetos de 12 mm con pinzas.
    Nota: 10x PBS se produce en el laboratorio y compuesta por 0.011 M KH 2 PO 4, NaCl 1,54 y 0,056 M Na 2 HPO 4.
  5. Lavar los pocillos con 2 ml de PBS 1x a temperatura ambiente durante 5 min. Repetir dos veces más para un total de 15 min.

3. Preparación de FCA para la tracción de la Fuerza ensayos

  1. Para una solución de la PAA suave (8% de acrilamida y 0,05% BIS) 1 ml, combinar 200 l de 40% de acrilamida, 25 l de 2% BIS y 566 l de agua ultrapura (Tabla 2).
  2. Para una solución de la PAA duro (8% de acrilamida y 0,35% BIS) 1 ml, combinar 200 l de 40% de acrilamida, 175 l de 2% BIS, y 401 l de agua ultrapura (Tabla 2).
  3. Para una solución de la PAA rígido (12% de acrilamida y 0,60% BIS) 1 ml, combinar 300 l de 40% de acrilamida, 300 l de 2% BIS, y 161 l de agua ultrapura (Tabla 2).
  4. Desgasificar las soluciones para 15 min. Añadir 200, 215, y 230 l de 1 mg / ml de fibronectina de plasma humano a las soluciones de PAA blandos, duros, y rígidas, respectivamente. Sonicar 8 l de 200 nm microesferas rojas fluorescentes (excitación / emisión de 580/605 nm) durante 30 segundos. Para cada solución, añadir 8 l de 200 microesferas fluorescentes rojas nm,1 l de ácido acrílico 10 mg / ml de éster de NHS, 5 l de una persulfato de amonio 100 mg / ml, y 2 l de TEMED (Tabla 2). Mezclar con pipeteo suave y evitar la creación de burbujas en soluciones.

PAA
(1 ml) 		40%
AA
(L) 		2%
BIS
(L) 		Ultrapura
Agua
(L) 		1 mg / ml
FN
(L)
Micro-esferas
(L) 		10 mg / ml
NHS Ester
(L) 		100 mg / ml
APS
(L)
TEMED
(L) 		Elástico
Módulo
(Pa)
Suave 200 25 566 200 8 1 5 2 1023
Duro 200 175 401 215 8 1 5 2 7307
Rígido 300 300 161 230 8 1 5 2 22692

Tabla 2:. Volúmenes de ingredientes y resultando módulos elásticos para FCA blandos, duros y rígidos utilizados en los ensayos de la fuerza de tracción AA = acrilamida, fn = fibronectina, APS = persulfato de amonio.

  1. Pipetear 8,48 l de la solución de PAA en el centro de cada pocillo.
    Nota: Este volumen se obtiene teóricamente un PAA de 75 micras de espesor.
  2. Baje suavemente el lado flameado del ªe 12 mm cubreobjetos sobre la gota en el pocillo, en pinzas.
  3. Deje que la solución PAA intercalada para polimerizar durante 15-30 minutos. Verifique polimerización comprobando solución sobrante.
  4. Añadir 2 ml de 1x PBS a cada placa y retirar los cubreobjetos de 12 mm con pinzas.
  5. Lavar los pocillos con 2 ml de PBS 1x a temperatura ambiente durante 5 min. Repetir dos veces más para un total de 15 min.

4. Preparación de ECM para invadopodios ensayos

  1. Calentar la solución de gelatina (gelatina al 1% y 1% de sacarosa) a 37 ° C.
  2. Tratar los FCA con 150 l de la solución de gelatina durante 1 min luego cuidadosamente aspirado desde el fondo de los pocillos al sostener los platos con fondo de cristal en un ángulo de 45 °.
  3. Se seca la capa fina restante de gelatina sobre las DAP en los micropocillos en un ángulo empinado (60 ° o mayor) para optimizar el secado durante 60 min.
  4. Tratar los pocillos con 2 ml de una solución fría de glutaraldehído 0,5% en iCE para 15 min seguido por temperatura ambiente durante 30 min.
  5. Lavar los pocillos con 2 ml de PBS 1x para una 5 min. Repetir dos veces más para un total de 15 min.
  6. Tratar los pocillos con 2 ml de una solución de borohidruro de sodio durante 1 min. Golpee suavemente los platos en el banco para eliminar las burbujas que se forman en la superficie de la gelatina.
  7. Aspirar y lavar los pocillos con 2 ml de PBS 1x durante 5 min. Repetir dos veces más para un total de 15 min.
  8. Se diluye una solución de fibronectina de plasma humano marcado con FITC a 50 g / ml con un PBS 1X y se centrifuga a 175.000 xg a 4 ° C durante 15 min. Cualquiera de adquirir comercialmente disponible fibronectina etiquetado o la etiqueta de la siguiente manera:
    1. Disolver 5 mg de fibronectina en 10 ml de tampón de borato (metaborato de sodio tetrahidratado 170 mM y NaCl 40 mM) y el lugar en tubos de diálisis.
    2. Etiqueta de la fibronectina mediante la colocación de la tubería en 200 ml de tampón de borato que contiene 6 mg de FITC disuelto a temperatura ambiente en un agitador magnéticofijado en la posición más baja de 1,5 horas en la oscuridad.
    3. Se dializa con 500 ml de una PBS 1x en un agitador magnético fijado en la posición más baja durante 3 días en una habitación oscura y fría (4 ° C) con dos volúmenes cambia un día.
    4. La concentración de fibronectina marcada con FITC calcular sobre la base de la densidad óptica de alícuotas diluidas (1: 200) a 280 nm y 493 nm como [OD 280 - (0,36 x OD 493)] / 1,4 veces el factor de dilución de 200 veces 2 (que representa para el glicerol concentración de la fibronectina en el paso siguiente) resulta en unidades de mg / ml.
    5. Dializar noche en una solución de glicerol al 50% en un agitador magnético fijado en la posición más baja durante la noche en una habitación fría oscuridad a 4 ° C.)
  9. Tratar los micropocillos con 150 l de la solución de fibronectina marcada con FITC a temperatura ambiente durante 60 min en la oscuridad.
  10. Aspirar cuidadosamente la solución de fibronectina marcada con FITC desde el fondo de los pocillos al sostener los platos con fondo de cristal enun ángulo de 45 ° y luego se llenan los platos inferiores de vidrio con solución de etanol al 70% a temperatura ambiente durante 10 min en una campana de cultivo de células oscuro para la esterilización. También llenar tapas de los recipientes de vidrio de fondo o limpiar con toallitas bajos pelusa empapado en etanol al 70%.
  11. Lave los platos con fondo de cristal, llenándolos con 1x PBS durante 5 min. Repetir dos veces más con 2 ml de PBS 1x para un total de 15 min.

5. Preparación e Imagen de invadopodios ensayos

  1. Añadir 25,000 células cancerosas en 2 ml de medio invadopodios (1: 1 DMEM y medio RPMI 1640 con 5% de suero baja en proteínas, suero bovino fetal al 10%, y 20 ng / ml de factor de crecimiento epidérmico recién añadido) a los platos de fondo de cristal y incubar durante la noche.
  2. Aspirar y tratar las microcubetas con 2 ml de una solución de paraformaldehído al 3,7% a temperatura ambiente en la oscuridad durante 20 min para fijar las células.
  3. Después de dos lavados rápidos con 2 ml de PBS 1x, tratar los micropocillos con 2 ml de una solución de 0,1% de Triton X-100 en tempe habitaciónratura en la oscuridad durante 5 min para permeabilizar las células.
  4. Después de un lavado rápido con 2 ml de PBS 1x, tratar las microcubetas con 3% de albúmina de suero bovino solución de bloqueo a temperatura ambiente en la oscuridad durante 60 min para bloquear las células.
  5. Incubar los pocillos con 150 l de anticuerpo de ratón anti-cortactin (1: 750) en solución de bloqueo a temperatura ambiente en la oscuridad durante 60 min.
  6. Lavar los pocillos con 2 ml de PBS 1x para 5 min. Repetir dos veces más para un total de 15 min.
  7. Incubar los pocillos con 150 l de anticuerpo de cabra anti-ratón 633 de anticuerpos (1: 500) y 546 faloidina (1: 750) en solución de bloqueo a temperatura ambiente en la oscuridad durante 60 min.
  8. Lavar los pocillos con 2 ml de PBS 1x para 5 min. Repetir dos veces más para un total de 15 min.
  9. Añada seis gotas de medio de montaje para llenar cada pocillo y cubra con 22 x 22 cubreobjetos.
  10. Cortactin Imagen y actina para identificar invadopodios utilizando filtros de excitación y emisión de 632/647 nm y556/570 nm, respectivamente, utilizando una lente de inmersión en aceite de alta NA, 40X en un microscopio invertido de campo amplio. Del mismo modo, la imagen de fibronectina para identificar la degradación de ECM utilizando un filtro de excitación y emisión de 492/518 nm.

6. Preparación e Imagen de la fuerza de tracción Ensayos

  1. Añadir 15,000 células cancerosas en 2 ml de medio invadopodios a los platos con fondo de cristal y se incuba durante la noche.
  2. Aspirar medio en los platos de fondo de cristal y reemplazar con 2 ml de medio L-15, con los mismos suplementos (5% de suero baja en proteínas, suero bovino fetal al 10%, y 20 ng / ml de factor de crecimiento epidérmico recién añadido), pre -warmed a 37 ° C.
  3. Incubar los platos inferiores de vidrio en una cámara ambiental en un microscopio invertido pre-equilibrada a 37 ° C con alta humedad durante 1 hr.
  4. Tome cuatro conjuntos de imágenes con una alta NA, 40X lente de un microscopio de campo amplio invertida con una etapa automatizado para marcar posiciones celulares:
    1. Celdas de imagen sobre dep de los PAA utilizando contraste de fase ("fase" de la imagen).
    2. Image microesferas fluorescentes utilizando filtros de excitación y emisión de 560/645 nm, centrándose ligeramente por debajo de las células hasta que la primera capa de microesferas en la parte superior de la FCA entra en el foco ("estresados" imagen).
    3. Además, se centran en la parte inferior de la FCA (utilizando las microesferas como marcadores) y tomar una imagen (imagen "de abajo"). Nota: El propósito de esta imagen es para registrar la posición z para obtener el espesor PAA real en cada posición para el cálculo de la fuerza de tracción como se describe en resultados representativos.
    4. Después de estas imágenes han sido adquiridos en múltiples posiciones, mezclar suavemente en 220 l de solución al 10% de Triton-X para eliminar las células. Microesferas de la imagen en la parte superior de la FCA en cada posición como se describe anteriormente (imagen "nulo").

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Resultados

En el ensayo de invadopodios, invadopodios se identifican típicamente por colocalización de los marcadores como la actina y la cortactin en estructuras punteadas dentro del cuerpo de la célula (Figura 1). Tanto la degradación de forma activa y no degradante invadopodios puede ser contado y se diferencian por si estas estructuras están colocalized con áreas negras que carecen de señal fluorescente en la fibronectina marcada con FITC (Figura 1). Invadopodios se cuentan manualmente, y la d...

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Discusión

Se presenta un método para la fabricación de FCA que se pueden utilizar como la base para los ensayos de invadopodios y fuerza de tracción para correlacionar comportamientos celulares invasivas y contráctiles. Mientras FCA han sido utilizados para observar los efectos de rigidez en las células y calcular las fuerzas de tracción 18,24,27, este protocolo es el primero en desarrollar ensayos paralelos basados ​​en APA con las mismas rigideces correlacionar comportamientos celulares invasivos y contráctiles en re...

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Divulgaciones

Este trabajo fue apoyado por el Instituto Nacional del Cáncer de los Institutos Nacionales de Salud, bajo el premio número K25CA143412 (Parekh). Nos gustaría reconocer que el apoyo adicional fue proporcionada por el Departamento de Otorrinolaringología. El contenido es responsabilidad exclusiva de los autores y no representa necesariamente las opiniones oficiales de los Institutos Nacionales de Salud.

Agradecimientos

Los autores no tienen nada que revelar.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
3-AminopropiltrimetoxisilanoSigma-Aldrich281778
Acrilamida (40%)Bio-Rad161-0140
Ácido acrílico NHS ésterSigma-AldrichA8060preparar fresco en campana extractora 10 mg/ml en DMSO
Alexa Fluor 546 faloidinaLife TechnologiesA22283también puede utilizar rodamina
Persulfato de amonioBio-Rad161-0700preparar una solución fresca al 10% en 1x PBS
Aqua Poly/MountPolysciences18606usar 6 gotas para llenar micropocillos
BIS (2%)Bio-Rad161-0142
Albúmina sérica bovinaRPIA30075hacer 3% para la solución de bloqueo en 1x PBS y almacenar en 4 ° C
Cubreobjetos (12 mm)Fisher Scientific12-545-80
Sigma-AldrichD9777preequilibrado en tampón de borato durante 15 - 30 min
DMEMCellgro10-013-CVúselo para hacer medio de invadopodia
DMSOSigma-AldrichD8418úselo para hacer ácido acrílico solución de éster NHS
Factor de crecimiento epidérmico Vida TecnologíasPHG0311utilizar para hacer que el medio de invadopodia
EtanolPHARMCO-AAPERE200diluido con agua ultrapura al 70%
FBSThermo ScientificSH30070.03uso para hacer que el medio de invadopodia
FITCSigma-AldrichF7250proteja de la luz
GelatinaPolysciences00639Por lo general, prepare 10 ml de solución de sacarosa al 1% / gelatina al 1% en PBS y almacene a 4 grados; C (precaliente PBS para disolver la gelatina fácilmente)
Platos con fondo de vidrio (cubreobjetos de 35 mm)MatTekP35G-0-14-Clos cubreobjetos no están recubiertos
de glutaraldehído (25%)Polysciences01909diluido con 1x PBS al 0,5%
Anticuerpo anti-ratón de cabra Alexa Fluor 633Life TechnologiesA21050
Fibronectina de plasma humanoLife Technologies33016-015agregue 5 ml de agua ultrapura para hacer 1 mg/ml; alícuota en volúmenes basada en el uso para evitar ciclos excesivos de congelación y descongelación
KH2PO4EMD MilliporePX-1565-1uso para fabricar 10 veces el stock de PBS
Anticuerpo anti-cortactina 4F11 para ratonesEMD Millipore05-180
Na2HPO4EMD MilliporeSX-0720-1uso para hacer 10x stock de PBS
NaClRPIS23020se usa para hacer 10x PBS stock y tampón de borato
NaOH (1 N)Sigma-AldrichS2770diluido con agua ultrapura a 0.1 N
Nu-Serum (suero bajo en proteínas)BD Biosciences355500uso para hacer medio de invadopodia
ParaformaldehídoAcros416785000Por lo general, haga un 10% de caldo en 1x PBS, prepare en una campana extractora y agregue unos pocos ml de NaOH fuerte para disolver el paraformaldehído fácilmente y luego vuelva a pH 7.4 con HCl)
PBS (estéril)Cellgro21-040-CVuso para cultivo celular
RPMI 1640Cellgro10-040-CVuso para hacer medio de invadopodia
Borohidruro de sodioSigma-Aldrich452882preparar fresco en campana extractora 1 mg/ml en 1x PBS
Metaborato de sodio tetrahidratoSigma-AldrichS0251se usa para hacer tampón de borato
SacarosaRPIS24060generalmente hace 10 ml de solución de sacarosa al 1% / gelatina al 1% en PBS y almacene a 4 & grados; C (precaliente PBS para disolver la gelatina fácilmente)
TEMEDBio-Rad161-0800
Triton X-100Alfa AesarA16046haga un 10% de caldo en 1x PBS y úselo tal cual para la eliminación de células en el ensayo de fuerza de tracción o diluya con 1x PBS para tinción
Tubo de diálisis

Referencias

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