Artículo de método

La visualización de atado-gran superficie moléculas de ADN con un ADN Fluorescent Protein unión del péptido

DOI:

10.3791/54141

23 de junio de 2016

En este artículo

Resumen

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Presentamos un enfoque para visualizar grandes moléculas de ADN teñidas con péptido de unión al ADN de proteínas fluorescentes (FP-DBP) atadas a la superficie de vidrio recubierta de polietilenglicol (PEG) y avidina y estiradas con flujos de cizallamiento microfluídicos.

Resumen

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Las grandes moléculas de ADN atadas a la superficie de vidrio funcionalizada se han utilizado en física y bioquímica de polímeros, particularmente para investigar las interacciones entre el ADN y sus proteínas de unión. Aquí, reportamos un método que utiliza microscopía fluorescente para visualizar grandes moléculas de ADN atadas en la superficie. En primer lugar, los cubreobjetos de vidrio se biotinilan y pasivan mediante un recubrimiento con polietilenglicol biotinilado, que se une específicamente al ADN biotinilado a través de enlazadores de proteínas avidina y reduce significativamente la unión indeseable de interacciones no específicas de proteínas o moléculas de ADN en la superficie. En segundo lugar, las moléculas de ADN se biotinilan mediante dos métodos diferentes en función de sus terminales. El ADN de extremo romo se marca con dUTP biotinilado en su extremo hidroxilo 3', por transferasa terminal, mientras que el ADN de extremo pegajoso se hibrida con oligonucleótidos complementarios biotinilados por ADN ligasa. Finalmente, un flujo de cizallamiento microfluídico hace que las moléculas individuales de ADN se estiren a sus longitudes de contorno completas después de ser teñidas con péptido fluorescente de unión proteína-ADN (FP-DBP).

Introducción

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La visualización de grandes moléculas de ADN atados en superficies de vidrio o de talón se ha utilizado para la investigación de las interacciones ADN-proteína, la dinámica de proteínas sobre un sustrato de ADN, 1,2 y física de polímeros. 3,4 Una plataforma para grandes moléculas de ADN de una sola atados tiene unos pocos distinta ventajas en comparación con otros métodos de inmovilización de ADN. 5 en primer lugar, una molécula de ADN grande atado en la superficie tiene una conformación aleatoria bobina natural sin un flujo de cizallamiento, que es de importancia crítica para una proteína de unión a ADN de reconocer su sitio de unión....

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Protocolo

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1. ADN biotinilación

  1. La biotinilación de ADN de extremos romos usando transferasa terminal (TdT)
    Nota: El uso de ADN T4 (166 kpb), que es un ADN de extremos romos.
    1. Añadir 5 l de 2,5 mM CoCl 2, 5 l de 10 x tampón de reacción, 0,5 l de 10 mM de biotina-11-dUTP, 0,5 l de transferasa terminal (10 unidades), y 0,5 l de ADN T4 (0,5 g / l) a la mezcla de reacción. Hacer a un volumen final de 50 l mediante la adición de 38,5 l de agua.
    2. Incubar la mezcla de reacción a 37 ° C durante 1 hr.
      Nota: el tiempo de reacción extendido puede producir ADN de doble atado, es decir, es posible que biotinas et....

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Resultados

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La figura 1 muestra dos métodos de inmovilización de ADN diferentes en función de las estructuras terminales de la molécula de ADN. La Figura 1a ilustra cómo las moléculas de ADN de extremos pegajosos se hibridan con oligonucleótidos biotinilados complementarios, que están inmovilizados en la superficie PEG avidina-revestido. La Figura 1B muestra la adición de biotinilado ddNTP o dNTP para el grupo hidroxilo 3 'de un ADN de extremos romo.......

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Discusión

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Aquí presentamos una plataforma para la visualización de moléculas largas de ADN con biotina para el anclaje en las superficies. Hemos informado un enfoque para moléculas de ADN atados en una superficie recubierta de proteína de avidina con albúmina de suero bovino biotinilada. 6 En el enfoque anterior, se encontró una cuestión crucial de ADN foto-escisión causado por colorantes bis-de intercalación que manchan moléculas de ADN atado en el superficie. A medida que estos fluoróforos excitados continuamente tie.......

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Divulgaciones

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Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

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Este trabajo fue apoyado por la Beca de Investigación de la Universidad de Sogang de 201410036.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
1. Biotinilación de ADN
1.1) Biotinilación de ADN de extremo romo utilizando Transferasa Terminal (TdT)
Nueva Inglaterra BiolabsM0315SProvisto de tampón de reacción 10x, 2,5 mM de cloruro de cobalto
Biotina-11-dUTPInvitrogenR0081Biotina-ddNTP También está disponible
T4GT7 Fago: ADNNippon Gen318-03971
Ácido etilendiaminotetraacéticoSigma-AldrichE6758EDTA
1.2) Biotinilación de ADN de extremo pegajoso Usando ADN ligasa
T4 ADN ligasaNew England BiolabsM0202SProvisto de tampón de reacción 10x
Lambda Phage DNABioneerD-2510También disponible en New England Biolabs
2. Derivatización de superficie funcionalizada
2.1) Limpieza de pirañas
Marienfeld-Superior 010105022 mm x 22 mm, espesor n.º 1
BastidorFabricación personalizada Cinta
sellado de rosca de PTFEHan Yang Chemical Co. Ltd.3032292Teflon™
cinta Ácido sulfúricoJin Chemical Co. Ltd.S280823H2SO4,
peróxido de hidrógeno deJin Chemical Co. Ltd.H290423H2O2, 35% en agua
SonicatorDaihan Scientific Co. Ltd.WUC-A02HLimpiador
2.2) Aminosilanización en superficie de vidrio
N-[3-(Trimetoxisilil)propil]
etilendiamina
Sigma-Aldrich104884
Ácido acético glacialDuksan Chemicals414pureza del 99%
Jin Chemical Co. Ltd.M300318pureza del 99,9%
QorpakPLC-04907
Alcohol etílicoJin Chemical Co., Ltd.A30020299.9% Pureza
2.3) PEGilación del cubreobjetos
Bicarbonato de sodioSigma-AldrichS5761
Filtro de jeringaSartorius16534----------
Biotina-PEG-SCLaysan BioBiotina-PEG-SC-5000
mPEG-SVGLaysan BioMPEG-SVA-5000
AcetonaJin Chemical Co., Ltd.A300129
Portaobjetos de microscopioMarienfeld-Superior1000612~76 mm x 26 mm x 1  mm
3. Montaje de una cámara de flujo
acrílicoFabricación personalizada
Cinta de doble cara3MTipo transparente
Epoxi de secado rápido3M
Tubo de polietilenoCole-Parmer06417-11, 06417-21
Gas Tight 250 µ l JeringaHamilton81165
Bomba de jeringa NewEra Pump Systems Inc.NE-1000
4. Carga de muestras en la cámara de flujo
NeutravidinThermo Scientific31000
Tris baseSigma-AldrichT1503-5KGTrizma
base MicroscopioOlympusIX70
EMCCDCamera Q ImagingRolera EM-C2
Láser de estado sólido (488  nm)OxxiusLBX488
AlconoxAlconox Inc.
de teflón de pureza del 95% ultrasónico de mesa Alcohol metílico de Contenedor de polipropileno con K de pureza del 99% Soporte

Referencias

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  1. Smith, S. B., Finzi, L., Bustamante, C. Direct Mechanical Measurements of the Elasticity of Single DNA-Molecules by Using Magnetic Beads. Science. 258 (5085), 1122-1126 (1992).
  2. Finkelstein, I. J., Visnapuu, M. -L., Greene, E. C. Single-molecule im....

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Etiquetas

Fluorescent Protein DNA Binding PeptideDNA VisualizationSurface tethered DNA MoleculesBiotinylated DNAAvidin Protein LinkersPolyethylene Glycol CoatingMicrofluidic Shear FlowFluorescent MicroscopyDNA StretchingFlow Chamber Assembly

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