Artículo de método

Un ensayo de transferencia de puntos de 5 mC cuantificando el nivel de metilación de ADN de la distredenciación de condrocitos In Vitro

DOI:

10.3791/55565

17 de mayo de 2017

En este artículo

Resumen

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Se presenta un método para cuantificar la metilación del ADN basado en la 5-mctilcitosina (5-mC) dot blot. Se determinaron los niveles de 5-mC durante la desdiferenciación de condrocitos. Esta técnica simple podría utilizarse para determinar rápidamente el fenotipo de condrocito en el tratamiento de ACI.

Resumen

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La desdiferenciación de condrocitos hialinos en condrocitos fibroblásticos acompaña a menudo la expansión monocapa de condrocitos in vitro . El nivel global de metilación del ADN de los condrocitos se considera un biomarcador adecuado para la pérdida del fenotipo de los condrocitos. Sin embargo, los resultados basados ​​en diferentes métodos experimentales pueden ser inconsistentes. Por lo tanto, es importante establecer un método preciso, simple y rápido para cuantificar los niveles globales de metilación del ADN durante la desdiferenciación de los condrocitos.

Las técnicas actuales de análisis de metilación en todo el genoma se basan en gran medida en la secuenciación genómica del bisulfito. Debido a la degradación del ADN durante la conversión de bisulfito, estos métodos requieren típicamente un gran volumen de muestra. Otros métodos utilizados para cuantificar los niveles globales de metilación del ADN incluyen la cromatografía líquida de alto rendimiento (HPLC). Sin embargo, la HPLC requiere digestión completa del ADN genómico. Además, el costo prohibitivo de la HPLC enLimita la aplicación más amplia de HPLC.

En este estudio, el ADN genómico (gDNA) se extrajo de condrocitos humanos cultivados con un número variable de pasajes. El nivel de metilación de gDNA se detectó usando un ensayo dot blot de metilación específica. En este enfoque dot blot, una mezcla de gDNA que contenía el ADN metilado a detectar se colocó directamente sobre una membrana N + como un punto dentro de un patrón de plantilla circular previamente dibujado. Comparado con otros enfoques basados ​​en electroforesis en gel y otros procedimientos de transferencia de material complejos, el método dot blot ahorra tiempo significativo. Además, las manchas de puntos pueden detectar el nivel de metilación del ADN global usando un anticuerpo de 5 mC comercialmente disponible. Encontramos que el nivel de metilación del ADN difería entre los subcultivos monocapa, y por lo tanto podría desempeñar un papel clave en la desdiferenciación condrocitos. El punto blot de 5 mC es un método confiable, simple y rápido para detectar el nivel general de metilación del ADN a evaluarE fenotipo de condrocito.

Introducción

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El implante autólogo de los condrocitos (IAC) es un procedimiento relativamente nuevo y de última generación para tratar los defectos del cartílago articular 1 , 2 . Uno de los pasos cruciales en ACI es la amplificación de condrocitos a través de cultivo monocapa in vitro . Durante la amplificación, los condrocitos hialinos pierden fácilmente su fenotipo y se desdiferencian, lo cual es indeseable para el tratamiento con ACI 3 , 4 . Para optimizar el resultado del tratamiento con ACI, se debe determinar la extensión de la desdiferenciación de los condrocitos antes de la replantación. Es imperativo establecer una manera económica y rápida de determinar el estatus de los condrocitos. Recientemente, la asociación entre la metilación del ADN y la desdiferenciación de los condrocitos ha atraído mucha atención 4 , 5 , 6 . La metilación del ADN es un proceso porLos grupos metilo se añaden al ADN, dando como resultado la conversión de residuos de citosina en 5-metilcitosina (5-mC).

Para dilucidar la biología de la metilación del ADN en la desdiferenciación de los condrocitos, el primer paso es evaluar el nivel de metilación del ADN de los condrocitos, que hasta ahora ha resultado difícil. La secuenciación genómica del bisulfito es la técnica más utilizada para analizar la metilación del ADN 7 , 8 . En este ensayo, la conversión de bisulfito causa la degradación del ADN, y por lo tanto se debe proporcionar una cantidad sustancial de muestra para el ensayo. Además, se ha utilizado la cromatografía líquida de alto rendimiento (HPLC) para cuantificar los niveles globales de metilación del ADN 9 , 10 . Sin embargo, el análisis de HPLC requiere la digestión del ADN genómico. Además, se requieren instrumentos experimentales avanzados y costosos. Por lo tanto, además del alto costo, estos procedimientos experimentales son contra del tiempoUming Los anticuerpos anti-5-mC se han vuelto comercialmente disponibles, lo que ha creado la posibilidad de inmunotransferencia de ADN genómico que contiene 5 mC de genomas complejos.

En este informe, hemos extraído ADN genómico de los condrocitos cultivados en una serie de monocapas culturas. Se utilizó un ensayo dot blot para evaluar el contenido de 5 mC en los condrocitos humanos con diferentes números de pasajes. Se encontró que el contenido de 5-mC se incrementó en condrocitos altamente desdiferenciados en comparación con los condrocitos con desdiferenciación de bajo grado. Además, se identificó una relación entre el estado de desdiferenciación y los niveles de 5-mC. Finalmente, se informó de que los cambios en el contenido de 5-mC se asociaron con el fenotipo condrocito. Por lo tanto, el ensayo de transferencia de puntos de 5 mC es un método confiable, simple y rápido para detectar el nivel de metilación del ADN en los condrocitos.

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Protocolo

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Este estudio fue aprobado por el Comité de Ética Humana del Segundo Hospital Popular de Shenzhen.

1. Colección de Tejido Articular Humano y Cultura de Condrocitos

  1. Preparación de materiales
    1. Preparar el medio de águila modificada de Dulbecco (DMEM) suplementado con 10% de suero bovino fetal y 1% de penicilina-estreptomicina. Preparar 1 mg / ml de colagenasa II, 0,25% de tripsina-EDTA, solución salina tamponada con fosfato (PBS) y un colador celular (40 μm de nylon).
  2. Colección de tejido del cartílago articular humano
    1. Aislar el cartílago articular de las articulaciones de la rodilla de los pacientes donantes después del trauma. Obtenga el consentimiento informado de todos los participantes.
    2. Dice el cartílago en 1-2 mm 3 piezas utilizando un escalpelo estéril y digerir los condrocitos del cartílago picados con 1 mg / ml de colagenasa II en DMEM a 37 ° C durante 12-16 h.
    3. Filtrar la cel resultanteL de suspensión a través de un filtro de células (40 μm) y lavar dos veces con PBS.
    4. Contar células con un hemocitómetro y semilla a una densidad de 20.000-30.000 células / cm2 en DMEM suplementado con suero bovino fetal al 10% (FBS) y 1% de penicilina-estreptomicina.
    5. Cultivo en una incubadora a 37 ° C.
  3. Expansión de condrocitos monocapa
    1. Cosecha de células subconfluentes usando tripsina-EDTA al 0,25% y re-plancha a una densidad de 6,600 células / cm2. Cambiar el medio dos veces por semana.
    2. Condrocitos de la cultura en monocapas para hasta seis pasajes y evaluar en los pasos 1, 2, 3, 4 y 5.

2. Extracción de ADN genómico (gDNA)

  1. Recoger las células y resuspender en 500 μ l de buffer de lisis (15 mM Tris pH 8,0, 10 mM EDTA pH 8,0, 0,5% SDS, 200 μ g / mL RNasa A) por 10 millones de células. Resuspender las células pipeteando y la inversión rápida, y luego incubar durante 1 h a 37 ° C.
  2. UNDd proteinasa K a una concentración de 160 μg / ml de lisado celular e invertir la mezcla vigorosamente. Incubar 6 h a 55 ° C.
  3. Añadir un volumen de Tris pH 7,9 saturado fenol: cloroformo: alcohol isoamílico (25: 24: 1) a la muestra. Vortex o agitar la muestra a mano a fondo durante aproximadamente 20 s.
  4. Centrifugar la muestra a temperatura ambiente durante 5 min a 13.000 x g. Retirar la fase acuosa superior y transferir la capa a un tubo nuevo.
  5. Extraer con un volumen igual de cloroformo para eliminar fenol y transferir la fase acuosa superior a un tubo nuevo.
  6. Precipitar el ADN añadiendo 0,1 volumen de muestra de acetato de sodio 3 M pH 8,0 y 2 volúmenes de etanol al 100%.
  7. Guarde el tubo a -20 ° C durante la noche para precipitar el gDNA.
  8. Centrifugar la muestra a 4 ° C durante 10 min a 16.000 xg para sedimentar gDNA.
  9. Lavar la muestra tres veces con etanol al 70% y centrifugar a 4 ° C durante 2 min a 13.000 x g.
  10. Quitar el supernatanT cuidadosamente y luego seque al aire. Resuspender el ADN en Tris 10 mM pH 8,0, EDTA 0,1 mM.

3. Perfiles de metilación de ADN

  1. Utilizar un kit de metilación de ADN para realizar la reacción de conversión de bisulfito utilizando un total de 500 ng del ADN genómico, de acuerdo con el protocolo del fabricante. Eluir en 10 μl de tampón de elución (50 ng / μl).
  2. Realice el perfilado de metilación del ADN utilizando un kit comercial de acuerdo con el protocolo del fabricante.

4. Análisis de transferencia de puntos

  1. Desnaturalizar el ADN aislado (1 mg por muestra) en NaOH 0,1 M durante 10 min a 95 ° C. Neutralizar el ADN con 1 M NH 4 OAc en hielo, y luego diluir dos veces. Poner 2 μL del ADN genómico diluido en serie en una membrana N + .
  2. Secar la membrana a 80 ° C durante 30 min.
  3. Bloquear sitios de unión a anticuerpos no específicos sumergiendo la membrana N + en BSA al 5% en TBS-T durante 1 h. Utilice una placa de Petri de 10 cm como reactivoIon a temperatura ambiente.
  4. Después de lavar 5 minutos tres veces en TBST, incubar la membrana con un anticuerpo monoclonal de ratón anti-5-metilcitosina (1: 1.000) en TBS-T a 4ºC durante la noche.
  5. Lavar la membrana durante 5 min tres veces en TBS-T, e incubar después con un anticuerpo secundario, inmunoglobulina-G (IgG) de ratón oveja conjugada con HRP (1: 5.000) en TBS-T durante 1 h a temperatura ambiente.
  6. Lavar la membrana durante 5 min tres veces en TBS-T.
  7. Añadir el substrato enzimático a la membrana e incubar durante 5-10 min. Visualizar la señal del anticuerpo secundario utilizando un kit de quimioluminiscencia de acuerdo con las instrucciones del fabricante.

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Resultados

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Los condrocitos se cultivaron en una monocapa hasta el paso 6 (P6). Los condrocitos mostraron cambios fenotípicos progresivos con pases sucesivos del cultivo monocapa. La morfología de los condrocitos P0 era ronda, mientras que las células se convirtió muy pellizcado y aplanado con pases sucesivos hasta P6 ( Figura 1 ]. Este cambio de morfología es típico del proceso de desdiferenciación de condrocitos. Mientras tanto, los resultados del mapa de calor indicaron que el ni...

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Discusión

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Desdiferenciación de condrocitos in vitro compromete gravemente el resultado de la ACI en el tratamiento de la reparación de defectos del cartílago [ 11 , 12] . Para optimizar el resultado ACI, es crucial evitar el uso de condrocitos desdiferenciados [ 13] . Los estudios han sugerido que el nivel general de metilación del ADN está asociado con la extensión de la desdiferenciación de los condrocitos 4 ...

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Divulgaciones

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Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Agradecimientos

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Este trabajo fue apoyado por las subvenciones siguientes: Fundación de Ciencias Naturales de China (No. 81572198; No. 81260161; No. 81000460); Fundación de Ciencias Naturales de la Provincia de Guangdong, China (No. 2015A030313772); Proyecto financiado por la Fundación de Ciencia Postdoctoral de China (No. 2013M530385); La Fundación de Investigación Médica de la provincia de Guangdong, China (No. A2016314); Proyectos de Ciencia y Tecnología de Shenzhen (No. JCYJ20160301111338144; No. JSGG20151030140325149; No. JSGG20140519105550503; No.GJHZ20130412153906739; No. JCYJ20140414170821160; No.JCYJ20140414170821200).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
DMEMGibco Inc.11965 y ndash; 092Cálido en 37 ° C Baño de agua antes de usar
solución salina tamponada con fosfato (PBS)HyClone Inc.SH30256.01BD-PBS, libre de Ca2+/Mg2+
FBSGibco Inc.10099-141
0.25% Tripsina/EDTAGibco Inc.25200-056
Penicilina-estreptomicina al 1%Gibco Inc.15140-122
CloroformoMallinckrodt4440
Alcohol isoamílicoSigmaI-3643
FenolGibco BRL15513-039
Proteinasa KGibco BRL24568-2
Tampón TAE Bio Whittaker16-011V
Agua DestiladaGibco BRL15230-170
1 M Tris-HClBiosharp Inc.BL514A
Tween20Biotopped Inc.
BSAProliant Inc.68700
Colagenasa, Tipo IISigma-AldrichC6885
[header]
Equipment
HemocytometerISOLAB Inc.075.03.001
Plato Falcon de 100 mmTubos
CorningTPP AG91050Esterilizado por rayos gamma
Centrífuga de alta velocidadEppendorf5804R
ThermoMixerMIULABMTH-100
Incubadora de células de dióxido de carbonoThermo scientific3111
Sistema de análisis de quimioimagenUVITEC CambridgeALLIANCE
C58H114O26 de centrífuga 353003

Referencias

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  1. Brittberg, M., et al. Treatment of deep cartilage defects in the knee with autologous chondrocyte transplantation. N Engl J Med. 331, 889-895 (1994).
  2. Pareek, A., et al. Long-Term Outcomes After Autologous Chondrocyte Implantation: A Systematic Review at Mean Follow-Up of 11.4 Years. Cartilage. 7 (4), 298-308 (2016).
  3. Duan, L., et al. Cytokine networking of chondrocyte dedifferentiation in vitro and its implications for cell-based cartilage therapy. Am J Transl Res. 7 (2), 194-208 (2015).
  4. Ma, B., et al. Gene expression profiling of dedifferentiated human articular chondrocytes in monolayer culture. Osteoarthritis Cartilage. 21 (4), 599-603 (2013).
  5. Duan, L., Liang, Y., Ma, B., Zhu, W., Wang, D. Epigenetic regulation in chondrocyte phenotype maintenance for cell-based cartilage repair. Am J Transl Res. 7 (11), 2127-2140 (2015).
  6. Duan, L., et al. DNA methylation profiling in chondrocyte dedifferentiation in vitro. J Cell Physiol. , [Epub ahead of print] (2016).
  7. Bhat, S., et al. DNA methylation detection at single base resolution using targeted next generation bisulfite sequencing and cross validation using capillary sequencing. Gene. , (2016).
  8. Shi, X. W., et al. Exploring Genome-wide DNA Methylation Profiles Altered in Kashin-Beck Disease Using Infinium Human Methylation 450 Bead Chips. Biomed Environ Sci. 29 (7), 539-543 (2016).
  9. Li, X. L., et al. Optimization of an HPLC Method for Determining the Genomic Methylation Levels of Taxus Cells. J Chromatogr Sci. 54 (2), 200-205 (2016).
  10. Maghbooli, Z., et al. Global DNA methylation as a possible biomarker fordiabetic retinopathy. Diabetes Metab Res Rev. 31 (2), 183-189 (2015).
  11. Barlic, A., Drobnic, M., Malicev, E., Kregar-Velikonja, N. Quantitative analysis of gene expression in human articular chondrocytes assigned for autologous implantation. J Orthop Res. 26 (6), 847-853 (2008).
  12. Legendre, F., et al. Enhanced hyaline cartilage matrix synthesis in collagen sponge scaffolds by using siRNA to stabilizechondrocytes phenotype cultured with bone morphogenetic protein-2 under hypoxia. Tissue Eng Part C Methods. 19 (7), 550-567 (2013).
  13. Niethammer, T. R., et al. Analysis of the autologous chondrocyte quality of matrix-based autologous chondrocyte implantation in the knee joint. Int Orthop. 40 (1), 205-212 (2016).
  14. Hayatsu, H. The bisulfite genomic sequencing used in the analysis of epigenetic states, a technique in the emerging environmental genotoxicology research. Mutat Res. 659 (1-2), 77-82 (2008).
  15. Haque, N., Nishiguchi, M. Bisulfite sequencing for cytosine-methylation analysis in plants. Methods Mol Biol. 744, 187-197 (2011).
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Dot blot de 5 metilcitosinaensayo de metilaci n del ADNextracci n de ADN gen micoprocedimiento de dot blotdetecci n de anticuerpos contra 5 mCan lisis del fenotipo de los condrocitosimplantaci n de condrocitos aut logosm todo de desnaturalizaci n del ADNdetecci n por quimioluminiscencia

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