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Artículo de método

Óptima preparación de formol fijada muestras para péptidos basados en matriz asistida por láser de desorción/ionización espectrometría de masas de flujos de trabajo

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DOI:

10.3791/56778

16 de enero de 2018

En este artículo

Resumen

Este protocolo describe un método reproducible y confiable para la preparación a base de la sublimación de formalina fijada destinado para el spectrometry total de la proyección de imagen del tejido.

Resumen

El uso de desorción/ionización láser asistida por matriz, espectrometría de masas (MALDI MSI) la proyección de imagen se expandió rápidamente, ya que esta técnica analiza una serie de biomoléculas de las drogas y los lípidos a N-glycans. Aunque existen diversas técnicas de preparación de muestras, detección de péptidos del formaldehído conservada los tejidos sigue siendo uno de los retos más difíciles para este tipo de análisis de espectrometría de masa. Por esta razón, hemos creado y optimizado una robusta metodología que conserva la información espacial contenida en la muestra, mientras que el mayor número de péptidos ionizables. También hemos destinado para lograrlo de una manera simple y rentable, eliminando así posibles error de sesgo o preparación, que puede ocurrir cuando utiliza instrumentación. El resultado final es un protocolo reproducible y de bajo costo.

Introducción

Espectrometría de masas del desorción/ionización láser asistida por matriz (MALDI MSI) la proyección de imagen ha sido empleada como una técnica de imagen basado en dos décadas1,2, análisis de una gama de biomoléculas, incluyendo: lípidos3, péptidos2 ,4, proteínas2,5, metabolitos6,7, N-glycans8y moléculas sintéticas como drogas terapéuticas9,

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Protocolo

PRECAUCIÓN: Todas las precauciones de seguridad se deben seguir al realizar este procedimiento, incluyendo el uso de equipos de protección personal (EPP) (por ejemplo, batas de laboratorio, guantes de nitrilo, gafas de seguridad, etc.)

1. preparación de reactivos y equipos

  1. Preparación de soluciones
    1. Para preparar 500 mL de líquido de Carnoy, mezcle 100% etanol (EtOH), cloroformo y ácido acético glacial en un 6:3:1 cociente de v/v/v en un frasco limpio de Schott.
    2. Para hacer líquido nitrocelulosa (NC), disolver la membrana NC (comúnmente utilizada en el borrar occidental) en ac....

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Resultados

Si se siguen correctamente, este protocolo produce imágenes que representan claramente la morfología gruesa del tejido sin cualquier arañazos u otras deformaciones (figura 1). La validación ideal para una preparación de la ejecución correcta de la muestra, es la capacidad de distinguir diferentes estructuras físicas cambiando la molécula ser visto (figura 2).

Es una bue.......

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Discusión

Este protocolo fue diseñado para maximizar la generación de especies moleculares ionizables eliminando deslocalización de analitos. Los factores clave incluyen usando el mismo principio primordial al aplicar la matriz, digerir la muestra o recristalización después de la sublimación24; es decir, que una incluso deposición de vapor, de matriz o de lo contrario, debe ser creado y mantenido. Pipeteo lavados solvente para recristalización y la digestión, uniformemente por debajo de la muestra, impide c.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflicto de intereses o interés comercial para revelar

Agradecimientos

Los autores desean reconocer la Fundación de escuela médica de Sydney y azul y Fundación para la financiación de parte de este trabajo a través de su programa de becas de doctorado para la investigación de la enfermedad de Alzheimer y una subvención del descubrimiento del arco (DP160102063) otorgado a PKW.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
CriomicrótomoLeicaCM3050Para la preparación y sección de tejido.
Portaobjetos de microscopio de óxido de indio y estañoBruker8237001Para la preparación y sección de tejido.
Tarros CoplinSigma AldrichS5516Para la preparación y sección de tejidos.
Olla a presiónKambrookKPR620BSSPara la preparación y sección de tejidos.
SublimadorChem GlassNAPara el procedimiento de sublimación. Similar en diseño a la CG-3038, sin embargo, fue hecha a medida 
Baño de arenaNANAPara el procedimiento de sublimación. Arena de río de grado fino contenida en papel de aluminio plegado procedente del exterior, no de ninguna empresa específica
Placa de Petri de vidrioSigma Aldrich CLS70165100Para el procedimiento de sublimación.
Bomba de vacíoNANAPara el procedimiento de sublimación. Obtenido como pieza de repuesto de un viejo espectrómetro de masas 
Trampa fríaChem GlassCG-4510-02para procedimiento de sublimación.
Placa calienteJohn MorrisEW-15956-32. Para el procedimiento de sublimación.
Placa de Petri de plásticoSigma Aldrich Z717223Para el procedimiento de sublimación.
37 y s° Incubadora C,NANAPara el procedimiento de sublimación. No aplicable, la incubadora no es estéril y tiene más de 30 años 
Papel secanteSigma AldrichP7796Para el procedimiento de sublimación.
Nitrocelulosa Sigma AldrichN8395Para el lavado de correderas.
AcetonaSigma Aldrich650501Para el lavado de portaobjetos.
XilenoSigma Aldrich 214736Para el lavado de portaobjetos.
100% EtOHSigma Aldrich1.02428Para el lavado de correderas.
70% EtOHSigma AldrichNAPara el lavado de correderas. Hecho en laboratorio con un 95% de etanol de stock  
CloroformoSigma AldrichC2432Para el lavado de portaobjetos.
Ácido Acético GlacialSigma AldrichARK2183Para el lavado de portaobjetos.
Tris HCL pH 8.8Sigma AldrichTRIS-ROPara la escisión proteolítica. Polvo hecho a 1M seguido de equilibrio con 32% de HCl a PH 8.8
Milli Q Agua ultrapuraSigma AldrichNAPara la escisión proteolítica. Purificación realizada internamente por el sistema de purificación de agua sartorio
Bircarbonato de amonioSigma AldrichA6141Para la escisión proteolítica.
TripsinaSigma AldrichT0303Para la escisión proteolítica.
CHCA MatrixSigma AldrichC2020Para recristalización.
AcetonitriloSigma Aldrich1.00029Para la recristalización.
Ácido trifluoroacético (TFA) Sigma Aldrich302031Para la recristalización.
, :

Referencias

  1. Schwartz, S. A., Reyzer, M. L., Caprioli, R. M. Direct tissue analysis using matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry: practical aspects of sample preparation. J Mass Spectrom. 38 (7), 699-708 (2003).
  2. Caprioli, R. M., Farmer, T. B., Gile, J.

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Reimpresiones y permisos

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