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Artículo de método

Desarrollo de proteínas recombinantes para el tratamiento de dolor crónico

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DOI:

10.3791/57071

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11 de abril de 2018

 ,  ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Translational Immunology, University Medical Center Utrecht, Utrecht University, 2Department of Rheumatology & Clinical Immunology, University Medical Center Utrecht, Utrecht University, 3Laboratory of Neuroimmunology and Developmental Origins of Disease, University Medical Center Utrecht, Utrecht University

En este artículo

Resumen

En este trabajo ofrecemos detalles de los métodos de producción y control de calidad de una proteína de fusión recombinante de IL4-10. También mostramos cómo probar la efectividad de esta proteína para resolver el dolor en un modelo murino de dolor inflamatorio.

Resumen

El dolor crónico es difícil de tratar y se necesitan urgentemente nuevos enfoques para resolver el dolor persistente. Citoquinas antiinflamatorias son candidatos prometedores para el tratamiento de afecciones debilitantes dolor debido a su capacidad para regular interacciones neuro-inmune aberrantes. Sin embargo, fisiológicamente funcionan en una red de varios cytokines, y por lo tanto su efecto terapéutico no puede ser óptimo cuando se utilizan como drogas independientes. Para superar esta limitación, hemos desarrollado una proteína de fusión de las citoquinas antiinflamatorias IL4 y IL10. Aquí, describimos los métodos de producción y control de calidad de la proteína de fusión recombinante de IL4-10 y probamos la eficacia de la proteína de la fusión de IL4-10 para resolver el dolor en un modelo murino de dolor inflamatorio persistente.

Introducción

Dolor crónico sigue siendo una de las más debilitantes y tratamiento problemas médicos del siglo XXI, que afecta a > 20% de la población adulta1,2. Sin embargo, los tratamientos para aliviar el dolor crónico son a menudo ineficaces o deben suspenderse debido a efectos secundarios graves3. Importante, actualmente fármacos disponibles sólo proporcionan alivio sintomático, pero no significativamente modificar o curar el dolor crónico. Aunque el dolor crónico parece ser un desorden neurológico, la evidencia sugiere la implicación del sistema inmune en el desarrollo de dolor crónico4,5. Por otra parte, están surgiendo enfoques inmune para tratar el dolor. Por ejemplo, citoquinas antiinflamatorias inhiben dolor en varios modelos de dolor crónico6,7,8. Sin embargo, citoquinas antiinflamatorias tienen una vida media corta, reduciendo sus efectos de inhibición de dolor. Por otra parte, citocinas antiinflamatorias más óptimo trabajan en concierto con los demás. Para superar estas limitaciones, hemos recientemente fusionados el antiinflamatorio cytokines interleukin-4 (IL4) y interleukin-10 (IL10) en una molécula. La proteína de la fusión de IL4-10 muestra una eficacia superior en la inhibición de dolor inflamatorio y neuropático crónico en comparación con el de citoquinas individuales9. Aquí describimos cómo se produce dicha proteína de fusión, purificados, y cómo se controla su calidad.

Proteína de la fusión de IL4-10 se produce en las células humanas por transitorios de la transfección de las células HEK293-F con un vector de expresión de pUPE llevando la secuencia de cDNA, codificación de la proteína de la fusión de IL4-10. Las células HEK293-F se eligen para permitir la modificación poste-de translación de la proteína, algo que no ocurre en sistemas de expresión bacteriana. Para optimizar glycan tapado con ácido siálico, cDNA codificación beta-galactósido-2, 3 sialil-transferasa se incorpora en el vector como un transgen segundo. La proteína de fusión se purifica mediante purificación de proteínas de afinidad de la cultura sobrenadante debido a que es más poderoso que la purificación por otros métodos por ejemplo tamaño de exclusión o cromatografía de intercambio iónico10,11. Para purificar la proteína de la fusión de IL4-10, que utilizamos en anticuerpos monoclonales hizo contra IL4. Evaluación de la pureza y la bioactividad de la proteína purificada de la fusión de IL4-10 se realizan como parte del control de calidad. Se evalúa la pureza de los lotes producidos por sodio dodecil sulfato poliacrilamida Gel electroforesis (SDS-PAGE) y cromatografía de exclusión de tamaño (HP-SEC) de alta presión. La bioactividad de la proteína de fusión de IL4-10 se evalúa midiendo su capacidad para inhibir el lipopolisacárido (LPS)-inducida por la producción de factor de necrosis tumoral alfa (TNFα) en cultivos de sangre entera y que comparan la combinación de la persona cytokines.

Por último, para poner a prueba la capacidad de inhibir el dolor crónico IL4-10 de proteínas de fusión, se describe cómo la proteína de fusión puede ser probada como analgésico en modelos de ratón ampliamente utilizado del dolor inflamatorio persistente12,13,14 . Aquí describimos los métodos de un modelo de dolor inflamatorio. Sin embargo, es importante tener en cuenta que otros modelos de dolor puede ser utilizado (por ejemplo, modelos de dolor neuropático), dependiendo de la investigación las preguntas que necesitan ser contestadas. Para evaluar el dolor en estos modelos, es importante utilizar una gran variedad de medidas conductuales que incluyen evocadas y dolor no evocado. Aquí, hemos descrito los métodos de evaluación de cambios en las respuestas conductuales evocadas mecánicamente y termal. Sensibilidad mecánica a los estímulos inocuos se evaluó utilizando el test de Von Frey, mientras que la sensibilidad térmica se evaluó mediante la prueba de Hargreaves. Lo importante, no evocados hiperalgesia/alodinia se mide mediante la prueba dinámica peso teniendo. Estas medidas son ampliamente aceptadas como medidas de dolor y obtener información importante sobre los umbrales de dolor y posible dolor experimentado por los animales15,16,17. Otras medidas para evaluar el dolor evocado no (p. ej., independiente del estímulo), como el test de preferencia de lugar condicionada, puede ser valioso18. Para evaluar el potencial del fármaco para inhibir el dolor, se realizó la administración intratecal de la proteína de fusión, ya que con esta vía de administración menos dosis de proteína para llegar a las zonas relacionadas con el dolor y evitar sistémica (lado a) efectos19, 20.

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Protocolo

Todos los experimentos con animales se realizaron conforme a las directrices internacionales y previa aprobación del Comité local de ético experimental. Sangre fue obtenida desde el servicio de donantes de Mini (Mini donantes Dienst, MDD) en la Universidad médica centro de Utrecht (UMCU) en los países bajos. El MDD ha recibido la aprobación positiva de la Comisión de ética médica de la UMCU (Medisch Ethische Toetscommissie) para el protocolo número 07-125/C.

1. Caracterización y producción de proteínas

  1. Cultivo de células
    Nota: Consulte la Tabla de materiales para medio de cultivo utilizado.
    1. Descongelar las células HEK293-F a 37 ° C hasta que haya un grupo pequeño de hielo. Transferir inmediatamente las células descongeladas a 10 mL de medio helada (4 ° C) y Centrifugue la suspensión celular a temperatura ambiente (RT) durante 4 minutos (min) x 500 g.
    2. Quite el medio y resuspender el precipitado de células en 10 mL de medio fresco a temperatura ambiente, seguida por centrifugación a 500 x g durante 4 minutos.
    3. Quite el sobrenadante y resuspender el precipitado de células en 5 mL de medio en RT. agregar la suspensión de células directamente en un frasco de 125 mL que contenga 25 mL de medio precalentado (37 ° C). Cultura de las células a 37 ° C, 8% CO2y 95% de humedad en un agitador orbital girando a una velocidad de 125 rpm.
    4. Subcultura las células dos veces a la semana. Utilizar una célula automatizada contador (véase Tabla de materiales) para evaluar el numero de celular y viabilidad celular. Semillas viables las células a una concentración de 3 x 105 células/mL en matraces Erlenmeyer. Mantenga el volumen total de medio de cultivo en 1/5 del volumen total de matraces de Erlenmeyer de cultura en todo momento para mantener una óptima aireación.
  2. Transfección
    Nota: Subcultivo las células de tres a cuatro veces antes de transfección y transfectarles cuando la viabilidad de las células es > 90%. Se evaluó la viabilidad celular por una automatizada (campo eléctrico multicanal) sistema de cellcounting basado en la integridad de la membrana plasmática. Vea la Tabla de materiales para el reactivo de transfección.
    1. Centrifugar las células a temperatura ambiente durante 4 min a 500 x g; Resuspender el precipitado de células en 10 mL de medio de cultivo precalentado (37 ° C) y diluir la suspensión de células a ~1.0 x 106 células/mL en un volumen total de 1 L. alícuota la suspensión de células en 10 alícuotas de 100 mL en matraces Erlenmeyer de 500 mL.
    2. Diluir 1 mg de ADN plásmido en medio esencial mínimo de 33 mL Suero reducido (MEM, véase Tabla de materiales) mezclando suave. En un tubo aparte, diluya 1.330 μl de reactivo de transfección en MEM mezclando suave. Incubar ambas soluciones a temperatura ambiente por 5 minutos agregar y mezclar el ADN diluido en MEM para el reactivo de transfección en MEM e incubar la mezcla durante 30 min a TA.
    3. Añadir la mezcla de reactivo de transfección de ADN a las células (cultivadas en la sección 1); Añadir 6,6 mL de la mezcla a cada 500 mL matraz Erlenmeyer que contenga 100 mL de células en el medio de cultivo. Mantener las células en las condiciones de cultivo anteriormente mencionado. Coseche el sobrenadante de cultivo que contiene proteína de fusión secretan IL4-10 tres días después de la transfección.
    4. Determinar la concentración de la proteína de la fusión de IL4-10 en el sobrenadante de cultivo mediante la realización de un ELISA de IL10 según protocolo del fabricante (véase Tabla de materiales).
      Nota: En condiciones de cultivo óptimo, la concentración de la proteína de fusión puede esperarse entre 2,5 y 5 μg/mL.
  3. Purificación de proteínas por cromatografía de afinidad
    Nota: Cromatografía de afinidad se realiza a temperatura ambiente. Sin embargo, todas aquellas fracciones (fracciones de sobrenadante, carga, flujo y elución de cultura) se mantienen en hielo durante el procedimiento.
    1. Par 10 mg de un hecho de casa en anticuerpo monoclonal contra IL4 a 1 g de CNBr - activado sepharose 4B, según protocolo del fabricante (véase Tabla de materiales). Vierta lentamente 2,5 mL de granos de sepharose acoplado en la columna de cromatografía de vidrio (30 cm de longitud y 1,5 cm de diámetro interior, véase Tabla de materiales).
    2. Bloquear el resto de sitios de las cuentas de la Unión al pasar 50 mL de tampón fosfato salino (PBS) que contiene 1% de seroalbúmina bovina a través de la columna. Lavar la columna con 25 mL de PBS (pH = 7,4) seguida por 12,5 mL de tampón de glicina de 0,1 M (pH = 2.5) y 25 mL de PBS (pH = 7,4).
    3. Pasar 100 mL de cultivo de células de HEK293 concentrada 10 veces sobrenadante a través de la columna a un flujo de 1 mL/min lavado de la columna con 50 mL de PBS.
    4. Eluir la proteína de la fusión de IL4-10 consolidada con 12,5 mL de tampón de glicina de 0,1 M (pH = 2.5) con un caudal de 1 mL/min y recogemos fracciones de 2,5 mL. Añadir 350 μl de tampón de Tris de 1 M (pH = 9) a cada fracción para llevar el pH a 7. Dializan fracciones neutralizadas durante la noche contra 2 L de PBS (pH = 7,4).
      1. Use tubería de la diálisis con 16 mm de diámetro seco y un corte de peso molecular de 3,5 K. Las fracciones dializadas con filtros desechables de 0,45 μm de diámetro de poro del filtro estéril. Almacenar la solución de la proteína de fusión de IL4-10 estéril en alícuotas a-80 ° C.
    5. Evaluar la pureza de la proteína de fusión de IL4-10 eluída por tinción de Coomassie 12% SDS-PAGE gel y HP-SEC (columna 3 μm s-2000). Para el análisis del HP-SEC, carga 40 μl de proteína en la concentración de ~ 1 mg/mL en la columna. Uso de 100 mM de tampón fosfato de sodio con cloruro de sodio de 150 mM (pH = 6.8) como fase móvil. Establecer la tasa de flujo de 1 mL/min.
    6. Determinar la concentración de cada lote de purificado proteína de fusión de IL4-10 por ELISA de IL10 y ensayo de proteína ácido Bicinchoninic (Kit de ensayo de proteína BCA, véase Tabla de materiales) según protocolos del fabricante.
    7. Uso IL10 recombinante humana para crear una curva estándar en el ensayo de ELISA. Para corregir la diferencia de tamaño entre IL10 recombinante (18 kDA) y IL4-10 proteína de fusión (34 kDa), la concentración obtenida se multiplican por un factor de 1.8.
  4. Bioactividad de la proteína de la fusión de IL4-10
    Nota: El análisis de sangre se realiza para cada lote de IL4-10 proteína de fusión producida y se compara la actividad de diferentes lotes como parte del control de calidad. El análisis de sangre se realiza en sangre humana fresca recogida el día de la prueba en tubos de heparina. Se obtuvo sangre de voluntarios sanos en nuestro servicio de donantes internos. Las muestras deben manipularse como potencialmente biológicas peligros.
    1. Preparar diluciones de la serie 3-fold de la proteína purificada de la fusión de IL4-10 en Medio RPMI (véase Tabla de materiales) en una concentración intervalo de 1.215 5 ng/mL.
    2. Preparar diluciones previas de LPS (100 ng/mL) y sangre humana que se diluye 4 veces en Medio RPMI.
    3. Pipetear las diluciones antes de la proteína de la fusión de IL4-10 LPS y sangre humana en una placa de 48 pozos. A cada pocillo, añadir 50 proteína de fusión de IL4-10 μl (concentración final 1-243 ng/mL) 75 μl de Medio RPMI, 25 LPS μl (concentración final 10 ng/mL) y sangre humana 100 μl (final diluido).
      Nota: Volumen Total por pozo es de 250 μl.
    4. Incubar la placa a 37 ° C, 8% CO2y 95% de humedad durante 18 horas.
    5. Evaluar la concentración de TNFα en sobrenadantes de cultivo mediante un ELISA de TNFα, según protocolo del fabricante.
    6. Calcular la inhibición de la respuesta inflamatoria por la proteína de la fusión de IL4-10 según la fórmula: % de inhibición = (1-(A-B)/(C-B)) x 100
      Nota: De aquí A = niveles TNFα en cultivos estimulados LPS tratados con proteína de la fusión de IL4-10, B = niveles TNFα en cultura sin estimular y C = los niveles de TNFα en cultura estimulada LPS.

2. ratón modelo de dolor inflamatorio persistente

Nota: Es importante utilizar ratones machos y hembras (C57Bl/6) ya que esto permitirá la identificación de efectos dependientes del sexo. En general, los ratones utilizados son entre 8-16 semanas de edad. Para determinar el número de animales requeridos, se deben realizar cálculos de energía. Herramientas basadas en web para realizar dichos cálculos se encuentran fácilmente en internet (por ejemplo, http://www.powerandsamplesize.com; http://www.sample-size.net).

  1. Inducción de dolor inflamatorio crónico
    Nota: Inducir dolor inflamatorio persistente en ratones adultos con inyecciones intraplantar de carragenina o adyuvante completo de Freud (CFA). Las diferentes pruebas no interfieren entre sí.
    1. Preparar la carragenina (2% p/v) disolviendo carragenina λ (véase Tabla de materiales) en 0.9% NaCl pasando la solución a través de una aguja de calibre 23 para asegurar que la carragenina se disuelva correctamente. Preparar una solución fresca directamente antes de realiza la inyección.
    2. Alternativamente, si se utiliza el CFA, mezclar la solución CFA correctamente antes de inyectar intraplantarly, debido a que el CFA es una emulsión agua en aceite que contiene 1 mg de Mycobacterium tuberculosis (H37Ra) calor muerto y seco, 0,85 mL de aceite de parafina y 0,15 mL mannide monooleato (véase Tabla de materiales).
      Nota: Jeringas de vidrio Hamilton con émbolos de metal se recomiendan para inyectar este compuesto debido a émbolos de goma pueden reaccionar con el aceite en el adyuvante.
    3. Inyección intraplantar
      1. Mantener el compuesto (pasos 2.1.1 o 2.1.2) en la jeringa a temperatura ambiente durante al menos 15 min antes de la inyección para permitir ajuste RT. inyectar 20 μl de la sustancia (o disolventes como control) por vía subcutánea en la pata trasera del ratón no anestesiados con un calibre 30 aguja.
      2. Inserte la aguja en la base de la dirección del pulgar en el talón y se inyectan el compuesto cuando se inserta la aguja aproximadamente 0,5 cm. Después de la inyección, retraiga lentamente la aguja mientras gira ligeramente la jeringa para evitar fugas de solución en el sitio de inyección.

3. dolor medidas

Nota: Asegúrese de que los investigadores realizando los experimentos conductuales son ciegos para el tratamiento de ratón. Es importante aclimatarse a los animales en el ambiente de examen antes de efectuar cualquier medición. Preferiblemente, la semana antes de iniciar los experimentos, los animales se colocan 1 - 2 veces durante 15-30 min en cada uno de los diversos dispositivos utilizados para realizar las pruebas. Manejo de machos y hembras en el mismo experimento, evaluar los machos independientemente de las hembras. Jaulas limpias y superficies extensivamente entre los diferentes grupos para evitar posibles efectos no deseados en el comportamiento de los diferentes sexos. Medir latencias de retiro de línea de base o mecánicos umbrales de dos a tres veces con precisión determinar los umbrales de la línea de base y determinar si éstas son estables antes de la inyección intraplantar de cualquier compuesto.

  1. Prueba de von Frey: sensibilidad mecánica a los estímulos inocuos
    1. Coloque los animales individualmente en jaulas de acrílico en un soporte de malla de alambre y permitir que los ratones para aclimatarse al menos 15 min antes de las mediciones.
    2. Evaluar la sensibilidad mecánica midiendo el umbral de retirada de la pata en respuesta a una serie calibrada de pelos de von Frey desde 0.02 hasta 4 g. considerar cualquier movimiento de la pata de pelo aplicada como una respuesta positiva del retiro. Aplicar los filamentos perpendiculares a la superficie de la pata con fuerza suficiente como para causar flexión ligeramente contra la piel y sostenga por ~ 3 s. hacer que el pelo no se tuerza durante la aplicación a la pata.
    3. Calcular el umbral de la pata-retiro de 50% usando el método de arriba hacia abajo15,21.
      Nota: El primer filamento aplicar es 0,4 g (dependiendo de los umbrales de estos ratones mostrar al inicio se pueden utilizar otros filamentos de partida). La falta de respuesta a un filamento indica que el siguiente filamento más grueso se utiliza en el siguiente estímulo, mientras que una respuesta positiva indica el uso del filamento más fino siguiente. El número de presentaciones del pelo está determinado por la primera respuesta diferencial; después de eso, se realizan aplicaciones más 5. Calcular que el umbral de 50% según los métodos descritos previamente15,21.
  2. Sensibilidad térmica: prueba de Hargreaves
    1. Colocar los animales en jaulas en una placa de vidrio previamente calentado (30 ° C) y permita que los ratones para aclimatarse durante al menos 15 min antes de las mediciones, espera hasta que los animales sientan todavía.
    2. Determinar tiempos de latencia de retirada de calor calentando la pata de los animales por un haz enfocado de luz visible utilizando un aparato de Hargreaves (véase Tabla de materiales).
      Nota: La intensidad de la viga se encuentra a 12%, porque con esta configuración de intensidad determinado experimentalmente, el haz de luz evoca una respuesta de retirada de un tiempo promedio de 8 s al inicio del estudio en ratones C57Bl/6. El ajuste de la intensidad se determinará por máquina individual y cepa de ratón. Tiempos de corte máxima de 20 s o más se utilizan para evitar lesiones a los animales.
    3. Medir los tiempos de latencia de retiro ~ 4 veces al animal. Promedio de todas las medidas. Medir independientemente cada pata y con intervalos de al menos 1 min entre mediciones sucesivas de la misma pata.
  3. Déficit postural: prueba del cojinete de peso dinámico
    1. Medir el peso corporal de cada animal antes de la prueba, ya que requiere de análisis de carga el peso corporal de cada animal individual como un parámetro de entrada.
    2. Colocar los animales individualmente en un sistema carga dinámico instrumentada por el piso montado en una cubierta de apoyo a una cámara que graba movimientos del ratón. Deje que el animal aclimatarse por 0,5 a 1 min antes de grabar durante 5 minutos.
      Nota: En esta prueba, sólo un animal libremente móvil se puede evaluar en un momento.
    3. Ajuste la configuración para realizar peso y analizar los datos.
      Nota: En estos experimentos, utilizamos los siguientes parámetros: umbral de peso (i) baja de g: 0,6 es el peso mínimo necesario para activar una de las células del sensor. (ii) umbral el alto peso de 1 g:, este número indica el peso necesario para activar completamente una célula. (iii) superficie umbral de 2 células: este número indica el número de las células adyacentes entre sí que deben activarse para ser tomado en cuenta. (iv) el mínimo número de imágenes es 5: tarda 0,1 s para capturar cada imagen. El número indica el número mínimo de fotogramas en la que el ratón no se mueve. Como tal, un valor de 5 significa que el ratón la postura debe ser estable para > 0.5 s para obtener una medición que se toma en cuenta para el análisis.
    4. Realizar el análisis de cada vídeo por reproducir el video y asegúrese de que cada miembro sea reconocido correctamente por el software en el marco de tiempo indicado por el software.
      Nota: Un mínimo de 1 minuto de tiempo grabado debe ser validado. La carga dinámica de software calcula y proporciona los siguientes parámetros: (i) el peso soportado por cada pata individual en gramos y como porcentaje del peso del cuerpo entero. (ii) el peso soportado por la pata delantera combinada o las patas traseras combinadas en gramos y como porcentaje del peso del cuerpo entero. (iii) la relación izquierda/derecha patas peso rodamiento o cojinete de peso delantero/trasero. (iv) la superficie de cada pata o patas de frente/parte posterior combinadas que activa la almohadilla de presión sensible. (v) media y desviación para cada parámetro. (vi) duración de las diferentes posturas (cría, 3 patas o 4 patas) durante el experimento entero. (vii) tiempo (s) cada pata lleva peso durante el experimento entero.

4. proteína de fusión intratecal inyectable de IL4-10 para la analgesia

Nota: Confirmar que la ventilación a la sala está abierta para asegurar el flujo de aire adecuado. Para probar la eficacia de la proteína de la fusión de IL4-10 (1 μg/ratón; volumen de total de la inyección de 5 μl) debe ser probado contra vehículo las inyecciones y las inyecciones de la combinación de las individuales citoquinas (IL4 IL10, μg 0,5 + 0,5 μg/ratón, volumen de inyección total de 5 μl).

  1. Anestesiar el ratón con 3-4% de isoflurano con una tasa de flujo de oxígeno de 2 L/min en la cámara de inducción. Compruebe que el ratón correctamente está anestesiado pellizcando la pata para asegurar que el animal no responda.
  2. El ratón sobre la mesa con su cabeza colocada en el cono de la nariz del aparato y mantener la sedación de ratón con isoflurane 1.5-2% con una tasa de flujo de oxígeno de 2 L/min mientras que realizando la inyección intratecal.
  3. Back-fill los compuestos inyectables en un vaso limpio 25 μl jeringa Hamilton conexión a una aguja de calibre 27.
  4. Sujete el mouse con firmeza por la columna vertebral posterior a las costillas y levantar ligeramente el ratón. Coloque la aguja verticalmente entre la vértebra lumbar L5 y L6 e introducirlo cuidadosamente a través de la piel en el centro de las vértebras lumbares. Coloque la aguja en el espacio intervertebral.
    Nota: Encontrar el espacio intervertebral puede requerir algunos 'buscando' por mover la aguja a lo largo del eje ventral rostral, presionando ligeramente la aguja hasta que se note una pérdida de la resistencia del tejido óseo.
    1. Confirmar objetivo correcto verificando que se produjo un movimiento de cola. Inyecte lentamente 5 μl del compuesto, esperar unos segundos y luego retraiga lentamente la aguja. Si sólo se observa un movimiento de la pata sola, la aguja es probable que no esté colocado correctamente.
  5. Después de la inyección, compruebe el ratón cerca de los primeros 30 min después de la recuperación de la anestesia para garantizar la ausencia de cualquier deterioro motor, parálisis.
    Nota: Comportamientos de dolor pueden ser medidos (como se describe en sección 3) 15 minutos después de la recuperación.

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Resultados

Una imagen representativa de un gel de SDS-PAGE que contiene diferentes fracciones obtenidas durante la purificación de cromatografía de afinidad se muestra en la figura 1A. En la carga (L) y el flujo a través de fracciones (FT), se observan todas las proteínas presentes en el sobrenadante HEK293. Ninguna proteína se observa en la fracción de lavado (W). En la fracción de elución (E), se observan dos bandas de 35 y 37 kDa correspondientes a d...

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Discusión

Este manuscrito describe métodos para la producción y caracterización de un recombinante de la proteína de la fusión de IL4-10 y métodos para probar su eficacia en la inhibición de hiperalgesia inflamatoria en modelos de ratón de dolor inflamatorio persistente. La producción y purificación de la proteína de fusión de IL4-10 se realiza en pequeña escala. Se seleccionan las células HEK293 como sistema de expresión para la producción de proteína porque permiten modificaciones post-traduccionales que no pueden lograrse en si...

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Parte de este trabajo ha sido financiado por una ciencias biológicas de la Universidad de Utrecht conceda

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
FreeStyle 293-F cellsInvitrogenR790-07Células de riñón embrionario humano 
GIBCO FreeStyle 293 Expression Medium Lifetechnologies 12338018Medio de cultivo
293fectina ReactivoInvitrogen12347019Reactivo de transfección
GIBCO Opti-MEM + GlutaMAXLife technologies51985026Medio de suero reducido para uso durante transfecciones de lípidos catiónicos 
GIBCO RPMI Medium 1640 (1x)Life technologies52400-025
CNBr-Activated Sepharose 4BGE Healthcare17-0430-01medios preactivados para acoplar anticuerpos u otras proteínas grandes
Ácido clorhídrico fumante 37% Merck1003171000
Cloruro de sodioSigmaS7653-1kg
Bicarbonato de sodio Sigma31437
Clorhidrato de TrizmaSigmaT3253-500GClorhidrato de TRIS  
Ácido Acético 100%                                                         Merck1.00063.1000 
Glicina-HCl                                                                               SigmaG2879                         
PBS                                                                                                     Farmacia, UMCUsolución salina tamponada con fosfato
10X TGSBIO-RAD161-0772Tampón Tris/glicina/SDS para electroforesis SDS
Mini-PROTEAN TGX GelesBIO-RAD456-104612% SDS geles prefabricados
Trans-Blot Turbo Paquete de transferenciaBIO-RAD170-4157Paquetes de transferencia Western blot
Yarra 3u SEC-2000 columnaPhenomenex
InstantBlue Protein StainExpedeonISB1Llisto para usar Tinción de proteína Coomassie para geles de poliacrilamida
Human IL-10 DuoSet ELISAR& DDY217B
TNF&alfa humano; Set ELISADiaclona851570020
BCA Pierce Kit de ensayo de proteínasThermoFisher Scientific23227
CarrageninaSigma-Aldrich22049mucopolisacárido
vegetal CFASigma-AldrichF5881adyuvante para vacunas
Jeringa HamiltonSigma-Aldrich20779jeringa de vidrio
Animal EnclosureIITC Ciencias de la Vida433Recinto para animales
Von Frey Soporte de mallaIITC Ciencias de la Vida410Soporte de malla
Von Frey pelos Sondas sensorialesStoelting58011
Prueba plantar (método Hargreaves)IITC Life Science390Gprueba plantar con vidrio calentado
Prueba dinámica de rodamiento de pesoBiosebBIO-DWB-AUTO-M Pruebadéficit postural
Columnas Econo-Column de vidrio, 1,5 y veces; 30 cmBIO-RAD7371532columna de cromatografía en vidrio   
Tubo de diálisis SnakeSkin Thermo Scientific88242
Minisart NML Filtro de jeringa Sartorius16555-K unidad de filtro deun solo uso, 0,45 μ M
CASY Contador y Analizador de CélulasRoche
touch test de

Referencias

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