Method Article

Optimización del Microdissection de la captura de láser para el aislamiento de los ganglios entéricos de tejido humano fresco congelado

DOI:

10.3791/57762

June 14th, 2018

In This Article

Summary

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El objetivo de este protocolo es obtener muestras de RNA de alta integridad de ganglios entéricos aislados del tejido intestinal humano no fijado, recién resecado usando el microdissection de la captura de láser (LCM). Este protocolo implica preparación de flash-congeladas muestras de tejido intestinal humano, cryosectioning, coloración etanólico y deshidratación, LCM y la extracción de RNA.

Abstract

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El propósito de este método es obtener muestras de RNA de alta integridad de ganglios entéricos de interpretaciones, recién resecado tejido intestinal humano usando el microdissection de la captura de láser (LCM). Hemos identificado cinco pasos en el flujo de trabajo que son cruciales para la obtención de RNA aislados de ganglios entéricos con suficiente calidad y cantidad de RNA-seq. En primer lugar, preparar el tejido intestinal, cada muestra debe tener todo exceso de líquido eliminado por borrar antes de aplanar la serosa tanto como sea posible a través del fondo de grandes moldes base. Las muestras entonces se congelan rápidamente encima de una mezcla de hielo seco y 2-Metilbutano. En segundo lugar, al seccionar los tejidos, es importante posicionar cryomolds para que las secciones intestinales paralelas el plano completo del plexo mientérico, produciendo así la mayor superficie de ganglios entéricos por diapositiva. Tercero, en la LCM, polietileno napthalate (PEN)-diapositivas de membrana ofrecen la mayor velocidad y flexibilidad en las formas no uniformes de ganglios entéricos el recoger los ganglios entéricos. En cuarto lugar, para la clara visualización de ganglios entéricos dentro de las secciones, colorantes compatibles con etanol, como el violeta de cresilo, ofrecen excelente preservación de la integridad del RNA en relación con tintes acuosos. Finalmente, para la extracción del ARN de los ganglios capturados, observamos diferencias entre los kits comerciales de extracción RNA que rindieron superior cantidad de RNA y de calidad, eliminando la contaminación del ADN. Optimización de estos factores en el protocolo actual en gran medida acelera el flujo de trabajo y da muestras de los ganglios entéricos con excepcional calidad de RNA y la cantidad.

Introduction

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Este método está diseñado para obtener muestras de RNA de alta calidad de ganglios entéricos de tejido intestinal humano usando el microdissection de la captura de láser (LCM). El protocolo descrito aquí ha sido optimizado para proporcionar suficiente RNA calidad y rendimientos para ARN de secuencia (RNA-seq) y está destinado a ser utilizado con tejido intestinal humano recién resecado, interpretaciones, flash-congeladas.

Trastornos de la motilidad gastrointestinal y tripas funcionales afectan uno de cada cuatro personas en los Estados Unidos. El sistema nervioso entérico (ENS), también conocido como el segundo cerebro1

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Protocol

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Se describen aquí todos los protocolos han sido aprobados por la Vanderbilt University institucional de junta (IRB).

1. preparación antes de la llegada de tejido

  1. Obtener la aprobación IRB apropiado y coordinar con agencias de donación de órganos humanos para obtener tejido intestinal recién resecado, interpretaciones de los donantes que cumplen todos los criterios de investigación para el estudio.
    Nota: Este protocolo puede ser adaptado para su uso con ratones y otros roedores modelos.
    1. Inmediatamente tras la resección de cada segmento intestinal, deje correr el lumen con PBS frío o medio de almacenamiento de tejido para....

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Results

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Hemos hecho varias mejoras en los protocolos que permiten la colección relativamente rápida de ganglios entéricos de muestras intestinales humanas usando LCM, cumpliendo con los estándares para RNA-seq. En primer lugar, hemos optimizado la congelación rápida de los segmentos de tejido intestinal en grandes moldes de base colocados en la superficie de una mezcla de hielo seco en 2 MB (figura 1B). Se obtuvo el mejor éxito durante cryosectioning.......

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Discussion

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Este procedimiento permite la eficiente recopilación de numerosos ganglios entéricos como fuente para obtener RNA para RNA-seq. Aquí, hemos acelerado los procesos descritos en los protocolos existentes al máximo preservar integridad del RNA. Como todos los pasos de este procedimiento son interdependientes, es importante eliminar todos los problemas desde el inicio del estudio y que todas las muestras se preparan como semejantemente uno al otro como sea posible, para obtener confiable RNA-seq.

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Disclosures

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Los autores no tienen conflictos de interés divulgar.

Acknowledgements

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Agradecemos a los donantes y sus familias que hicieron posible este trabajo. También agradecemos la asistencia de personal en el Instituto Internacional de medicina y servicios de donantes de Tennessee para ayudar a coordinar colección de tejido utilizado en este estudio. Este trabajo fue apoyado por subvenciones de los institutos nacionales de salud, NIH OT2-OD023850 a EMS2 y estipendio apoyo de NIH T32-DK007673 al AMZ. Agradecemos al personal de Vanderbilt traslacional patología compartida del recurso de acceso al instrumento de LCM y asesoramiento sobre la preparación de tejido. El recurso de compartido de patología de tejido Vanderbilt es apoyado en par....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
10% Formalina con tamponamiento neutroSigmaHT501128-4L
2-MetilbutanoFisherO3551-4
jeringa de 3 mLBD309628
tubos cónicos de 50 mL, polipropileno Corning05-526B
Moldes base 37x24x5mm, desechablesCiencias de Microscopía Electrónica 5025511
Belzer UW  Solución de almacenamiento en fríoBridge to LifeN.A.
CapSure Macro LCM tapasArcturus, ThermoFisherLCM0211
Cling Wrap, Press' n Sello     Contento   N.A. 
Acetato violeta Cresyl AcrosOrganicsAC405760025
tablade cortar Ciencias de la Microscopía Electrónica 63308
Etanol, 190 pruebasPharmco-AAPER111000190
Etanol, 200 pruebas Pharmco-AAPER111000200
Portaobjetos de microscopio de vidrioFisher12-550-343
Guantes, puño extendidoMicroflex 
Batas, quirúrgicas-desechablesKimberly-Clark 19-088-2116
Bandeja, 20 L (bandeja esterilizadora grande de polipropileno)Nalgene   1335920B
Toallitas Kimwipes (grandes)Kimberly-Clark 34120
Kimwipes (pequeño)Kimberly-Clark 34133
Sistema de microdisección por captura láser (ArcturusXT)ThermoFisherN.A.
Mandril de criostato Leica, grande,  40 mm Servicio de Instrumentación de Patología del SuresteN.A. 
Microscopio ópticoOlympusCX43
Objetivo de microscopio (20X)Olympus UPlanFl 20X/0.50, ∞/0.17N.A.
Objetivo de microscopio (10X)Olympus UPlanFl 10X/0.25, ∞/-N.A. 
Tamicesmoleculares Acros OrganicsAC197255000
Agua libre de nucleasasAmbionAM9937
Kit de extracción de ARN PicoPureApplied Biosystems12204-01
Mortero de pelletsKimble Kontes 4621973
PEN membrana LCM portaobjetosArcturus, ThermoFisherLCM022
Tubos sin RNasa, 1,5 mLAmbionAM12400
RNaseZAP SigmaSigma-R2020
Kit de extracción de ARN "A" (PicoPure)Applied Biosystems12204-01
Kit de extracción de ARN "B" (RNeasy  Micro kit)Qiagen74004
Método de extracción de ARN "C" (TRIzol)Invitrogen15596-026
Kit de extracción de ARN "D" (RNeasy PLUS Mini kit)Qiagen74134
Splash Shield, pantalla facial desechableFisher17-310
Tijeras, quirúrgica, 14,5 cm "afilada-afilada"Fine Science Tools14002-14
Filtro de jeringa, acetato de celulosa (0,2 μ m)Nalgene   190-2520
Medio de congelación de tejidosgenerales Cuidado de la saludTFM-5
XilenosFisher X3P1GAL
19010144 Datos

References

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  1. Gershon, M. D. The second brain : the scientific basis of gut instinct and a groundbreaking new understanding of nervous disorders of the stomach and intestine. , HarperCollinsPublishers. 1st edn (1998).
  2. Grundmann, D., Klotz, M., Rabe, H., Glanemann, M., Schafer, K. H. Isolation of high-purity myenteric plexus from adult human and mouse ....

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