Artículo de método

Tinte de FM ciclismo en la sinapsis: comparación de potasio alto despolarización, eléctrico y Channelrhodopsin estimulación

DOI:

10.3791/57765

24 de mayo de 2018

En este artículo

Resumen

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Vesícula sináptica (SV) ciclismo es el mecanismo principal de comunicación intercelular en las sinapsis neuronales. Liberación y absorción del tinte de FM son los medios primarios de análisis cuantitativo de la SV endo - y exocitosis. Aquí, comparamos todos los métodos de estimulación para conducir bicicleta en la sinapsis de Drosophila Unión neuromuscular (NMJ) modelo FM1-43.

Resumen

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FM colorantes se utilizan para estudiar el ciclo de la vesícula sináptica (SV). Estas sondas anfipáticos tienen una cabeza hidrofílica y cola hidrofóbica, haciéndolos hidrosolubles con la capacidad reversible entrar y salir de bicapas de lípidos de membrana. Estos tintes styryl son relativamente no-fluorescentes en medio acuoso, pero causa la inserción en el prospecto externo de la membrana plasmática una > 40 X aumento en fluorescencia. En las sinapsis neuronales, tintes de FM son internalizados durante la endocitosis SV, víctimas de la trata dentro y entre piscinas SV y lanzado con exocitosis SV, proporcionando una potente herramienta para visualizar etapas presinápticas de la neurotransmisión. Un modelo genético primario de desarrollo de sinapsis glutamatérgica y de la función es la Drosophila Unión neuromuscular (NMJ), donde FM teñir la proyección de imagen se ha utilizado extensivamente para cuantificar la dinámica de la SV en una amplia gama de condiciones mutantes. La terminal sináptica NMJ es fácilmente accesible, con una hermosa gama de grandes botones sinápticos ideales para aplicaciones de imagen. Aquí, comparar y contrastar las tres formas de estimular la Drosophila NMJ conducir dependiente de actividad FM1-43 tinte absorción/release: aplicación 1) baño de alto [K+] despolarizar los tejidos neuromusculares, 2) nervio motor electrodo de succión estímulo para despolarizar el nervio presynaptic terminal y 3) objetivo expresión transgénica de channelrhodopsin variantes para el control espacial, estimulado por la luz de despolarización. Cada uno de estos métodos tiene ventajas y desventajas para el estudio de los efectos de la mutación genética en el ciclo SV en la Drosophila NMJ. Vamos a discutir las ventajas y desventajas para ayudar a la selección del enfoque de estimulación, junto con las metodologías específicas para cada estrategia. Además de la proyección de imagen fluorescente, tintes de FM pueden ser photoconverted a las señales de electrón-densos visualizados mediante microscopía electrónica de transmisión (TEM) para estudiar mecanismos de ciclo SV a nivel ultraestructural. Proporcionamos las comparaciones de confocal y microscopia electrónica de la proyección de imagen de los diferentes métodos de estimulación de la NMJ de Drosophila , para ayudar a guiar la selección de futuros paradigmas experimentales.

Introducción

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El modelo glutamatérgica y sinapsis maravillosamente caracterizada Drosophila Unión neuromuscular larvaria (NMJ) se ha utilizado para estudiar la formación de sinapsis y función con un vasto espectro de perturbaciones genéticas1. El terminal de la neurona de motor consiste en múltiples ramas del axón, cada uno con muchos botones sinápticos ampliadas. Estas várices de gran capacidad (hasta 5 μm de diámetro) contienen toda la maquinaria de la neurotransmisión, incluyendo vesículas sináptica glutamatérgica uniforme (SVs; ~ 40 nm de diámetro) en la reserva citosólica y fácilmente liberable piscinas2. Estas vesículas....

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Protocolo

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1. larvas pegamento disección

  1. Mezclar bien 10 partes de elastómero de silicona base con 1 parte de elastómero de silicona curado a agente del kit del elastómero (Tabla de materiales).
  2. Capa de cubreobjetos de vidrio de 22 x 22 mm con el elastómero y el cura sobre una placa caliente a 75 ° c durante varias horas (hasta que ya no es pegajoso al tacto).
  3. Coloque un cubreobjetos de vidrio solo revestimiento de elastómero en la sala de disección de cristal plexi a medida (figura 1, abajo) en preparación para la disección de la larva.
  4. Preparar las pipetas de pegamento de tubo capilar de vid....

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Resultados

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La figura 1 muestra el flujo de trabajo para el tinte de FM dependientes de la actividad de protocolo. El experimento comienza siempre con la misma disección cola larvaria, independientemente del método de estimulación utilizado posteriormente. Figura 1a es un diagrama esquemático de una larva disecada, el cordón nervioso ventral (VNC), irradiando los nervios y hemisegmental repetido patrón de músculo. La VNC se retira y la prepa.......

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Discusión

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Alta estimulación despolarización salina [K+] es por lejos el más fácil de las tres opciones para teñir de FM dependientes de actividad ciclismo, pero probablemente la menos fisiológica29. Este sencillo método despolarizan cada célula accesible en el animal entero y por lo tanto no permite estudios dirigidos. Es posible aplicar localmente alta [K+] solución salina con una micropipeta, pero esto todavía despolarizar pre/postsynaptic células y probable glia sinapsis asociadas

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Divulgaciones

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Los autores declaran a no hay intereses contrapuestos.

Agradecimientos

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Agradecemos a los miembros de Broadie Lab contribuciones a este artículo. Este trabajo fue financiado por los NIH R01s MH096832 y MH084989 a K.B. y beca predoctoral NIH MH111144 F31 a D.L.K.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Kit de elastómero de silicona SylGard 184Fisher ScientificNC9644388Para poner en cubreobjetos para disecciones
Cubreobjetos de microscopio 22x22-1Fisherbrand12-542-BPara poner SylGard en disecciones
Placa calefactora superior de aluminio tipo 2200ThermolyneHPA2235MPara curar el SylGard
Cámara de disección de plexiglásN/AN/AHecho a mano
Capilares de vidrio de borosilicatoWPI1B100F-4Para hacer micropipetas de succión y pegamento
Extractor de micropipetas basado en láserSutter InstrumentP-2000Para hacer micropipetas de succión y pegamento
Tygon E-3603 Laboratory TubingComponent Supply Co.TET-031APara boca y pipeta de succión
P2 punta de pipetaUSA Scientific1111-3700Para pipeta bucal
de 0,6 mL Tapón de tubo EppendorfFisher Scientific05-408-120Se utiliza para poner pegamento para la disección
Vetbond 3MWPIvetbondPegamento utilizado para disecciones
Cloruro de potasioFisher ScientificP-217Forsaline
Cloruro de sodioMillipore SigmaS5886para solución salina
Cloruro de magnesioFisher ScientificM35-500Para solución salina
Cloruro de calcio dihidratadoMillipore SigmaC7902Para
sacarosa salina FisherScientificS5-3Para
solución salina HEPESMillipore SigmaH3375Para solución salina
HRP: Alexa Fluor 647Jackson ImmunoResearch123-605-021Para etiquetar las membranas neuronales
PincelWinsor & Newton94376864793Para manipular las larvas
Dumont Dumostar Pinzas #5WPI500233Utilizadas durante la disección
7 cm Microtijeras McPherson-Vannas (cuchillas de 3 mm)WPI14177Utilizadas durante la disección 
FM1-43Fisher ScientificT35356Temporizador digital fluorescente de tinte estiril
VWR62344-641Para temporizar la carga/descarga del tinte FM 
LSM 510 META microscopio confocal de barrido láserZeissPara la obtención de imágenes de los marcadores fluorescentes
Zen 2009 SP2 versión 6.0ZeissSoftware para la obtención de
HeNe 633nmLasosPara excitar HRP:647 durante la adquisición de imágenes
Argón 488nmláser LasosPara excitar el tinte FM durante la adquisición
de imágenes Micro-ForgeWPIMF200Para pulir al fuego micropipetas de vidrio
20mL Jeringa Slip TipBD301625Para aspirar el axón para la estimulación eléctrica.
Micro Manipulador (base magnética)NarishigeMMN-9Para controlar el electrodo de succión para la estimulación eléctrica
EstimuladorGrassS48Para controlar el LED y la estimulación eléctrica
Zeiss Axioskop MicroscopioZeissUtilizado durante la estimulación eléctrica.
40X Achroplan Objetivo de inmersión en aguaZeissestimulación eléctrica y la obtención de imágenes confocales
All-trans RetinalMillipore SigmaR2500Cofactor esencial para ChR2
Microscopio Zeiss Stemi con puerto de cámaraZeiss2000-CSe utiliza durante la estimulación con canalrodopsina
LED 470nmThorLabsM470L2Se utiliza para la activación de ChR
Controlador LED T-CubeThorLabsLEDD1BPara controlar la
fuente de alimentación LED LED CinconElectronics Co.TR15RA150Para alimentar el medidor óptico de
potencia y energíaThorLabsPM100DPara medir la intensidad del LED
imágenes en el láser confocal Se utiliza durante la LED

Referencias

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  1. Menon, K. P., Carrillo, R. A., Zinn, K. Development and plasticity of the Drosophila larval neuromuscular junction. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2 (5), 647-670 (2013).
  2. Rizzoli, S. O., Betz, W. J. Synaptic vesicle pools. Nat Rev Neurosci. 6 (1), 57-69 (2005).

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Etiquetas

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