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Artículo de método

Cicatrización de heridas de abrasión epitelial corneal con rebabas Ocular como un modelo de córnea

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DOI:

10.3791/58071

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10 de julio de 2018

En este artículo

Resumen

Este protocolo describe un método para causar una abrasión en la superficie ocular del ratón y seguir la herida en proceso de curación después de eso. El protocolo aprovecha de una ocular rebabas a eliminar parcialmente el epitelio de superficie del ojo en ratones anestesiados.

Resumen

La córnea murina ofrece un excelente modelo para estudiar la cicatrización de heridas. La córnea es la capa más externa del ojo y es la primera defensa a la lesión. De hecho, el tipo más común de lesión de ojo encontrado en clínica es una abrasión corneal. Aquí, utilizamos un ocular burr para inducir una abrasión, resultando en la eliminación del epitelio corneal en vivo sobre ratones anestesiados. Este método permite la interrupción epitelial específica y reproducible, dejando otras áreas intactas. Además, describimos la visualización del epitelio erosionada con tinción de fluoresceína y proporcionar consejos concretos sobre cómo visualizar la córnea erosionada. Luego, seguimos la línea de tiempo de cicatrización 0, 18 y 72 h después de la abrasión, hasta que la herida es re-epithelialized. El modelo de abrasión epitelial de la lesión corneal es ideal para los estudios sobre proliferación de células epiteliales, la migración y la reepitelización de las capas corneales. Sin embargo, este método no es óptimo para estudiar la activación estroma durante la cicatrización de heridas, porque las rebabas del ocular no penetran a las capas de células estromales. Este método también es adecuado para aplicaciones clínicas, por ejemplo, pre-clínica prueba de eficacia de la droga.

Introducción

Las capas epiteliales de numerosos órganos están expuestas a lesiones. Sin embargo, también contienen la capacidad de compensar la pérdida de tejido por medio de la cicatrización de heridas. La córnea ofrece un excelente modelo para estudiar la cicatrización de heridas. Forma la superficie externa del ojo y proporciona una capa protectora para la delicada maquinaria ocular. Así, la córnea funciona como una barrera física frente a patógenos y la pérdida de agua. Se compone de tres capas; epitelio, estroma y endotelio. El epitelio de la córnea es la capa más externa de la córnea. Las células epiteliales mantienen la función barrera de la córnea adhiriéndose estrictament....

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Protocolo

Todos los experimentos son aprobados por la Junta Nacional experimento animal.

1. preparaciones

  1. Preparar todas las soluciones y guardar en temperatura ambiente, salvo indicación en contrario. Siga las regulaciones de eliminación de residuos a disponer utilizada materiales y soluciones.
  2. Uso NMRI y ICR marginado las existencias, entre 4-12 semanas de edad y sexo. Si se utiliza la cepa C57BL/6, siga el método de preparación de ketamina-medetomidina en paso 1.3.2. Para otras medidas, siga las instrucciones descritas en 1.3.3.-1.3.5.
  3. Preparar la medicina veterinaria fresco y a tiempo antes de iniciar la operación. C....

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Resultados

Este protocolo describe un modelo para infligir una lesión de abrasión en la córnea de ratón y sugiere cómo seguir y visualizar el proceso de curación después de la abrasión. Recientemente, se empleó este método para estudiar el papel de células progenitoras epiteliales corneales durante6de cicatrización. El uso de herramientas establecidas es la clave para un experimento exitoso de la abrasión. Nosotros y otros, hemos utilizado las rebabas ocular Algerbrush II (

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Discusión

Hería los métodos son herramientas populares para estudiar diferentes aspectos de la homeostasis de la córnea y patologías. El modelo de abrasión ofrece un método bien-controlado para hacer frente a problemas relevantes en Oftalmología. Sin embargo, ciertos puntos críticos en el protocolo son destacar. En particular, los detalles descritos en relación con la medicina veterinaria, herida curativa línea de tiempo y resultado están optimizados para el uso con cepas NMRI y ICR exogámica, pero pueden variar entre cepas de rat.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Nos gustaría agradecer a Kaisa Ikkala por su invaluable asistencia técnica y ayuda perspicaz cuando actualizándose en este método, así como más tarde durante la aplicación a nuestras preguntas de investigación central. También queremos agradecer al centro de animales de laboratorio y Anna Meller por su ayuda con la planificación de las directrices de la labor veterinaria.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Ratón NMRIEnvigo275
0.9% NaCluso estéril
MedetomidinaVetmedicVnr087896Nombre de mercado: Cepetor Vet
KetaminaIntervetVnr511485Nombre comercial: Ketaminol Vet
BuprenorfinInvidior 3015248 Nombrecomercial: Temgesic
AtipamezolOrion PharmaVnr471953Nombre de mercado: Antisedan Vet
CarprofenNorbrookVnr027579Nombre de mercado: Norocarp Vet
1% ungüento ocular ácido fucidinaDechraVnr080899Nombre de mercado: Isathal
Sal de fluoresceínaSigma-AldrichF6377
SoluciónPBS
Algerbrush ii rebaba ocular ( Punta de 0,5 mm)Algerbrush6.39768E+11
Bolígrafo azul cobaltoSP ServicesDE/003
Placa calefactoraKunz Instruments2007-0217
Cámara réflex digitalNikonD80
Brazo de cámara ajustable y abrazaderaNeewer10086132Altura 28 cm Lámpara
mesa con brazo flexible y abrazaderaPrisma
Toallita suaveKimtechScience7552
de CO2
herramientas de disecciónHerramientas
fina Jeringas BecktonDickinson303172
26GBeckton Dickinson303800
2 mL Tubo EppendorfSarstedt689
Casete de tisúSakura Finetech4118F
Máquina de procesamiento de tisú ASP200SLeica
XilenoVWRUN1307
Cera de parafinaMilliporeK95523361
Molde de inclusión de tejidos 32 x 25 x 6 mmSakura Finetech4123
MicrotomoMicromHM355
Baño de agua para el corteOrthex60591
Baño de agua para el corteLeicaHI1210
Hoja de micrótomoFeatherS35
Corredera de vidrioTh.Geyer GmbH & Co.7.695.019
Agua ultrapuraMilliporeMPGP04001MilliQ
ParaformaldehídoSigma-Aldrich158127PFA
salina tamponada con fosfato de Cámara Juego de de ciencia

Referencias

  1. Yi, X., Wang, Y., Yu, F. S. Corneal epithelial tight junctions and their response to lipopolysaccharide challenge. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 41 (13), 4093-4100 (2000).
  2. Wang, Y., Chen, M., Wolosin, J. M.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Abrasión cornealtinción con fluoresceínaepitelio cornealreepitelizaciónmodelo animalherida cornealalteración epitelialimagen de fluorescencia