Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Uso de CRISPR/Cas9 para noquear GM-CSF en células CAR-T

10.4K visualizaciones

DOI:

10.3791/59629

22 de julio de 2019

En este artículo

Resumen

Aquí, presentamos un protocolo para editar genéticamente las células CAR-T a través de un sistema CRISPR/Cas9.

Resumen

La terapia celular del receptor de antígeno quimérico T (CAR-T) es una nueva opción de tratamiento para el cáncer de vanguardia y potencialmente revolucionaria. Sin embargo, hay limitaciones significativas a su uso generalizado en el tratamiento del cáncer. Estas limitaciones incluyen el desarrollo de toxicidades únicas como el síndrome de liberación de citoquinas (SCR) y neurotoxicidad (NT) y la expansión limitada, las funciones del efector y la actividad antitumoral en tumores sólidos. Una estrategia para mejorar la eficacia CAR-T y / o controlar las toxicidades de las células CAR-T es editar el genoma de las células CAR-T sí mismos durante la fabricación de células CAR-T. Aquí, describimos el uso de la edición de genes CRISPR/Cas9 en células CAR-T a través de la transducción con una construcción lentiviral que contiene un ARN guía al factor estimulante de colonias de macrófagos de granulocitos (GM-CSF) y Cas9. Como ejemplo, describimos el nocaut mediado por CRISPR/Cas9 de GM-CSF. Hemos demostrado que estas células GM-CSFk/o CAR-T producen efectivamente menos GM-CSF mientras mantienen la función crítica de las células T y dan lugar a una mayor actividad antitumoral in vivo en comparación con las células CAR-T de tipo salvaje.

Introducción

La terapia celular del receptor de antígeno quimérico T (CAR-T) exhibe una gran promesa en el tratamiento del cáncer. 1 , 2 Dos terapias de células CAR-T dirigidas a CD19 (CART19) fueron aprobadas recientemente en los Estados Unidos y en Europa para su uso en neoplasias malignas de células B después de demostrar resultados sorprendentes en ensayos clínicos multicéntricos. 3 , 4 , 5 Las barreras para un uso más generalizado de las células CAR-T son la actividad limitada en tumores sólidos y toxicidades asociadas, como ....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

Este protocolo sigue las pautas de la Junta de Revisión Institucional (IRB) y del Comité Institucional de Bioseguridad (IBC) de Mayo Clinic.

1. Producción celular CART19

  1. Aislamiento de células T, estimulación y cultivo ex-vivo
    1. Llevar a cabo todo el trabajo de cultivo celular en una campana de cultivo celular utilizando el equipo de protección personal adecuado. Cosechar células mononucleares de sangre periférica (PPBM) de conos de sangre de donante normales no identificados recogidos durante la aféresis, ya que se sabe que son una fuente viable de PPBCM.13.
    2. Para aislar los PACL, añada 15....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

La Figura 1 muestra la reducción de GM-CSF en células GM-CSFk/o CART19. Para verificar que el genoma de las células T fue alterado para noquear GM-CSF, se utilizó la secuenciación TIDE en las células GM-CSFk/o CART19 (Figura1A). La tinción de la superficie de la célula CAR-T verifica que las células T expresen con éxito el receptor de superficie CAR in vitro mediante la medición en células CD3+ vivas (Figura.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

En este informe, describimos una metodología para utilizar la tecnología CRISPR/Cas9 para inducir modificaciones secundarias en células CAR-T. Específicamente, esto se demuestra utilizando la transducción lentiviral con un vector viral que contiene gRNA dirigido al gen de interés y Cas9 para generar células GM-CSFk/o CART19. Anteriormente habíamos demostrado que la neutralización GM-CSF mejora el CRS y NT en un modelo de xenoinjerto. 12 Como se ha descrito anteriormente, las células GM-.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

SSK es un inventor de patentes en el campo de la terapia de células T CAR que tienen licencia para Novartis (bajo un acuerdo entre Mayo Clinic, Universidad de Pensilvania y Novartis). Estos estudios fueron financiados en parte por una subvención de Humanigen (SSK). RMS, MJC, RS y SSK son inventores de patentes relacionadas con este trabajo. El laboratorio (SSK) recibe fondos de Tolero, Humanigen, Kite, Lentigen, Morphosys y Actinium.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado a través de subvenciones de K12CA090628 (SSK), la Red Nacional Integral contra el Cáncer (SSK), el Centro Clínica Mayo para Medicina Individualizada (SSK), la Fundación Predolin (SSK), la Oficina de Traducción a la Práctica de Mayo Clinic (SSK) y el Programa de Capacitación de Científicos Médicos de Mayo Clinic Robert L. Howell Physician-Scientist (RMS).

....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Anticuerpo monoclonal CD3 (OKT3), PE, eBioscienceInvitrogen12-0037-42
Anticuerpo monoclonal CD3 (UCHT1), APC, eBioscienceInvitrogen17-0038-42
Choice Taq Blue MastermixDenville ScientificC775Y51
CTS (Sistemas de Terapia Celular) Dynabeads CD3/CD28Gibco40203D
Sistema CytoFLEX B4-R2-V2Citómetro de flujoBeckman CoulterC10343
sulfóxido de dimetiloMillipore SigmaD2650-100ML
solución salina tamponada con fosfato de DulbeccoGibco14190-144 
Dynabeads MPC-S (Concentrador de partículas magnéticas)Applied BiosystemsA13346
Easy 50 EasySep MagnetSTEMCELL Technologies18002
EasySep Kit de aislamiento de células T humanas STEMCELL Technologies17951perlas magnéticas de selección negativa; 17951RF incluye puntas y tampón
Suero fetal bovinoMillipore SigmaF8067
FITC Ratón Anti-Humano CD107a BD Pharmingen555800
Medio de fijación (medio A)InvitrogenGAS001S100
GenCRISPR gRNA Constructo: Nombre: CSF2
ARN guía CRISPR 1; Especie: Humano, Vector:
pLentiCRISPR v2; Resistencia: Ampicilina; Número de copia:
Alto; Preparación de plásmidos: Entrega estándar: 4 μ g (Gratis
de cargo)
GenScriptN/Apersonalizado
Anticuerpo secundario de adsorción cruzada IgG (H + L) anti-ratón de cabra, Alexa Fluor 647InvitrogenA-21235
https://tide.nki.nl.Suero AB Humano de Desktop Genetics
; donantes masculinos; tipo AB; USCorning35-060-CI
IFN gamma Anticuerpo monoclonal (4S. B3), APC-eFluor 780, eBioscienceInvitrogen47-7319-42
Lipofectamine 3000 Reactivo de transfecciónInvitrogenL3000075
LIVE/DEAD Kit de tinción de células muertas Aqua fijable, para excitación de 405 nmInvitrogenL34966
LymphoprepSTEMCELL Technologies07851
Solución de Monensina, 1000XBioLegend420701
Ratón Anti-Humano CD28 Clon CD28.2BD Pharmingen559770
Ratón Anti-Humano CD49d Clon 9F10BD Pharmingen561892
Ratón Anti-Humano MIP-1β PE-Cy7BD Pharmingen560687
Mr. Frosty Contenedor de congelaciónThermo Scientific5100-0001
NALM6, clon G5 ATCCCRL-3273línea celular de leucemia linfoblástica aguda
Agua libre de nucleasaPromegaP119C
Sistemas de filtro al vacío Olympus, 500 mL, membrana PES, 0,22 uM, estérilGenesee Scientific25-227
Nalgene Unidades de filtro desechables estériles de flujo rápido con membrana CN 0,45 uMThermo Scientific Nalgene450-0045
Opti-MEM I Suero reducido Medio (1X), LíquidoGibco31985-070
PE-CF594 Ratón Anti-Humano IL-2BD Horizon562384
Penicilina-Estreptomicina-Glutamina (100X), LíquidoGibco10378-016
Medio de permeabilización (Medio B)InvitrogenGAS002S100
PureLink Genomic DNA Mini KitInvitrogenK182001
Dihidrocloruro de puromicinaMP Biomedicals, Inc.
Kit de extracción de gel QIAquickQIAGEN28704
Rata Anti-Humana GM-CSF BV421BD Horizon562930
RoboSep-SSTEMCELL Technologies21000Separador de células totalmente automatizado
SepMate-50 (IVD)STEMCELL Technologies85450
Azida de sodio, 5% (c/v)Ricca Chemical7144.8-16
X-VIVO 15 Medio de células hematopoyéticas sin sueroLonza04-418Q
pedido 0210055210

Referencias

  1. Kenderian, S. S., Ruella, M., Gill, S., Kalos, M. Chimeric antigen receptor T-cell therapy to target hematologic malignancies. Cancer Research. 74 (22), 6383-6389 (2014).
  2. Lim, W. A., June, C. H. The Principles of Engineering Immune Cells to Treat Cancer. Cell. 168

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Edici n g nica CRISPR Cas9knockout de GM CSFterapia de c lulas CAR Ttransducci n lentiviralan lisis por citometr a de flujoaislamiento de c lulas Tselecci n con puromicinaconcentraci n de virus por ultracentrifugaci ns ndrome de liberaci n de citocinasactividad antitumoral