Artículo de método

Preparación de células sintéticas productoras de proteínas mediante extractos bacterianos libres de células, liposomas y transferencia de emulsión

DOI:

10.3791/60829

27 de abril de 2020

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

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Este protocolo describe el método, los materiales, el equipo y los pasos para la preparación ascendente de ARN y células sintéticas productoras de proteínas. El compartimento acuoso interno de las células sintéticas contenía el lisato bacteriano S30 encapsulado dentro de una bicapa lipídica (es decir, liposomas estables), utilizando un método de transferencia de emulsión de agua en aceite.

Resumen

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El enfoque de montaje ascendente para la construcción de células sintéticas es una herramienta eficaz para aislar e investigar procesos celulares en un entorno de imitación celular. Además, el desarrollo de sistemas de expresión sin células ha demostrado la capacidad de reconstituir los procesos de producción, transcripción y traducción de proteínas (ADN-ARN-proteína) de manera controlada, aprovechando la biología sintética. Aquí describimos un protocolo para preparar un sistema de expresión libre de células, incluyendo la producción de un potente lisado bacteriano y encapsular este liso dentro de vesículas unilamelares gigantes a base de lípidos ricos en colesterol (GUVs) (es decir, liposomas estables), para formar células sintéticas. El protocolo describe los métodos para preparar los componentes de las células sintéticas, incluida la producción de lisatos bacterianos activos, seguido de una preparación detallada paso a paso de las células sintéticas basada en un método de transferencia de emulsión de agua en aceite. Estos facilitan la producción de millones de células sintéticas de una manera sencilla y asequible con una alta versatilidad para producir diferentes tipos de proteínas. Las células sintéticas obtenidas se pueden utilizar para investigar la producción de proteínas/ARN y la actividad en un entorno aislado, en evolución dirigida, y también como una plataforma de administración controlada de fármacos para la producción bajo demanda de proteínas terapéuticas dentro del cuerpo.

Introducción

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Las células sintéticas son partículas similares a células artificiales, imitando una o varias funciones de una célula viva, como la capacidad de dividir, formar interacciones de membrana y sintetizar proteínas basadas en un código genético1,,2,3. Las células sintéticas que encierran sistemas de síntesis de proteínas libres de células (CFPS) poseen una alta modularidad debido a su capacidad para producir varias proteínas y secuencias de ARN después de alteraciones en la plantilla de ADN. Presentando una alternativa atractiva a los enfoques actuales de la producción de proteína....

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Protocolo

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NOTA: La ilustración del protocolo de producción de las células sintéticas completas se presenta en la Figura 1. Según las necesidades del usuario, la expresión proteica (sección 3.2) y la formación de células sintéticas (sección 4) partes del protocolo también se pueden llevar a cabo de forma independiente (con algunas adaptaciones).

1. Preparación del lisado S30-T7

  1. Placa de raya de la bacteria E. coli BL21(DE3) transformada con el ARN T7 polimerasa que expresa pAR1219 plásmido en una placa de agar LB complementado con 50 g/ml de ampicilina para obtener colonias individuales.
  2. Prepa....

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Resultados

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Presentamos un protocolo para la preparación de células sintéticas encapsulando un sistema S30-T7 CFPS basado en BL21 E. coli dentro de las vesículas lipídicas. En la Figura 2se presenta una descripción esquemática del proceso de preparación que incluye una imagen de cada etapa. El éxito del proceso de preparación de células sintéticas depende del rendimiento adecuado de cada etapa y se realiza mediante diferentes parámetros. El protocolo debe ajustarse para adaptarse a la producció.......

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Discusión

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Este protocolo introduce un método simple y asequible para la producción de grandes cantidades de células sintéticas productoras de proteínas. El rendimiento de las células activas depende de una ejecución cuidadosa y precisa del protocolo con énfasis en varios pasos críticos. En la sección de preparación de lisados de este método, es esencial alcanzar la densidad bacteriana adecuada antes de la lisis celular para lograr una cantidad suficiente de proteínas en el lisato bacteriano. En segundo lugar, el proceso de lisis d.......

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Divulgaciones

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Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

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Este trabajo fue apoyado por ERC-STG-2015-680242.

Los autores también reconocen el apoyo del Technion Integrated Cancer Center (TICC); el Russell Berrie Nanotechnology Institute; el Lorry I. Lokey Interdisciplinary Center for Life Sciences & Engineering; el Ministerio de Economía de Israel para una beca Kamin (52752); el Ministerio de Tecnología Científica y Espacio de Israel – Oficina del Científico Jefe (3-11878); la Fundación para la Ciencia de Israel (1778/13, 1421/17); la Asociación israelí contra el cáncer (2015-0116); la Fundación Alemán-Israelí para la Investigación y el Desarrollo Científico para una beca GIF Young (I-2328-1139.10/....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
A. Reactivos necesarios para el paso 1 (preparación del lisado S30-T7)
E.coli BL21 (DE3) NEBC2527E.coli BL21 (DE3).
pAR1219SigmaT2076Vector TargeTron para transformación.
Solución madre de 50 mg/mL de ampicilinaSigmaA9518almacenada a -20 °C.
10 g/L de bacto-triptonaBD Bioscience 211705Para la preparación de la placa de agar Luria Bertani (LB) (1,5%).
10 g/L Cloruro de sodio (NaCl)Bio-Lab19030591
5 g/L Extracto de Betato-LevaduraBD Bioscience 212750
15 g/L Agar agar purificadoMerck1.01614.5007
50 µ g/mL AmpicilinaSigmaA9518
10 g/L Bacto-triptonaBD Bioscience 211705Para la preparación de medios Luria Bertani (LB) (20 mL).
10 g/L Cloruro de sodio (NaCl)Bio-Lab19030591
5 g/L Extracto de Betato-LevaduraBD Bioscience 212750
50 y micro; g/mL AmpicilinaSigmaA9518
12 g/L Bacto-triptonaBD Bioscience 211705Para la preparación de caldo estupendo (TB) medio (1 L).
24 g/L de extracto de Betato-LevaduraBD Bioscience 212750
4% (v/v) Glicerol anhidroBio-Lab7120501
2,32 g/L K2HPO4Espectro químicoP1383
12,54 g/L KH2PO4Espectro químicoP1380
  50 y micro; g/mL de ampicilinaSigmaA9518
Solución madre de 100 mM de isopropilo β-D-1-tiogalactopiranósido (IPTG) INALCOINA-1758-1400Filtrado usando 0.2 y micro; m Filtro de jeringa de PVDF hidrófilo.
Solución madre de 0,1 M de ditiotreitol (DTT) TCID1071Filtrado usando 0.2 y micro; m Filtro de jeringa de PVDF hidrófilo.
10 mM Tris-acetato a pH = 7,4SigmaT1503Tampón de lisado S30 (1,5 L)
14 mM acetato de magnesioMerck1.05819.0250
60 mM acetato de potasioCarlo Erba470147
1 mM DTTTCID1071
0,5 mL/L 2-mercaptoetanolSigmaM6250
Equipo necesario para el paso 1
100 mL matraces Erlenmeyer esterilizadosThermo Scientific50-154-28462 matraces
Erlenmeyer esterilizados de 2 L con deflectoresKIMAX-KIMBLE256302 matraces
Incubadora de sueloMRCTOU-120-2Incubadora agitadora de laboratorio 450x450mm, 400rpm, 70 °
CentrífugaThermo Scientific75004270(75003340) - Rotor de ángulo fijo Fiberlite F10-6 x 100 LEX.
Debe permitir al menos 13,000 x g.        * Preenfriado a 4 °C.
Homogeneizador de alta presiónAVESTINEmulsiFlex-C3Preenfriado a 4 °C.
-80oC congeladorSO-LOWU85-18
Tubos de plástico esterilizados de 1,5 mLEppendorf30120086 Preferiblemente preenfriado a -20 °C.
EspectrofotómetroTECANIN-MNANOInfinite M200 pro
Placa transparente de 96 pocillosThermo Scientific167008
Cilindro graduadoesterilizado Corning
Tubos de centrífuga esterilizadosEppendorf30120086Preferiblemente preenfriado a -20 °C.
Puntas de pipeta esterilizadasCorningPreferiblemente preenfriadas a -20 °C.
Cubita de hielo picadoBel-ArtM18848-4001
Pequeño tanque de nitrógeno líquidoNALGENE4150-4000
B. Reactivos necesarios para la etapa 3 (lípidos en la preparación de la solución de aceite):
1-palmitoil-2-oleoil-sn-glicero-3-fosfocolina (POPC)Lipoid556400
Polvo Colesterol SigmaC8667
CloroformoBio-Lab 3082301
Aceite mineralSigmaM5904Aceite ligero
Equipo necesario para el paso 2
Precalentado a 80 °C.
Debería permitir una temperatura controlada. 
Viales de vidrio con cuello de rosca de 2 mLCSI Analytical InnovationsVT009M-1232Para una escala mayor, use halcones de 50 mL y evapore el cloroformo usando un evaporador rotativo.
Tapón de rosca de 9 mmCSI Analytical InnovationsC395R-09LC
strong>C. Reactivos necesarios para el paso 3 (mezclas de reacción internas y de alimentación):
HEPESSpectrumH10891 M HEPES-KOH (pH = 8) - Tampón
de pH Hidróxido de potasio (KOH)Frutarom55290
1 M Acetato de magnesioMerck1.05819.0250Cofactor y estabilizador de carga negativa.
1 M Acetato de potasioCarlo Erba 470147Estabilizador de carga negativa.
5.2 M Acetato de amonioMerck1.01116.1000Estabiliza la carga negativa.
50% (p/v) Polietilenglicol 6000 (PEG)Merck8.07491.1000Aumenta la concentración de las macromoléculas.
0,5 M 3-fosfoglicerato (3-PGA)SigmaP8877Fuente de energía secundaria.
50 mM Mezcla de aminoácidos ISigmaLAA21-1KTAditivo de aminoácidos.
Contiene: 50 mM de cada uno de los siguientes 17 aminoácidos naturales: alanina, arginina, asparagina, ácido aspártico, cisteína, glutamina, ácido glutámico, glicina, histidina, isoleucina, leucina, lisina, metionina, prolina, serina, treonina y valina.
50 mM Mezcla de aminoácidos IISigmaLAA21-1KTAditivo de aminoácidos.
Contiene: 50 mM de cada uno de los siguientes 3 aminoácidos naturales: triptófano, fenilalanina y tirosina.
100 mM Trifosfato de adenina (ATP)SigmaA3377Nucleótidos y fuente de energía.
50 mM Trifosfato de guanidina (GTP)SigmaG8877Nucleótidos y fuente de energía.
100 mM Trifosfato de uridina (UTP)ACROS ORGANICS226310010Aditivo de nucleótidos.
100 mM Isopropilo β-D-1-tiogalactopiranósido (IPTG)INALCOINA-1758-1400Inducción de la expresión de genes.
2 M SacarosaJ.T. Baker 1933078Generación de un gradiente de densidad.
2 M GlucosaSigma16301Generando un gradiente de densidad.
H2O Agua ultrapura (UPW)Bio-Lab2321777500DNasa &
Lisado de S30-T7 libre de__Preparado en el paso 1.                                                                                                                                              Fuente de transcripción & translation components.
Almacenar en -80 ° C, descongele sobre el hielo estrellado justo antes de usarlo. 
Stock de plásmido de ADN de elección__Contiene la secuencia de la proteína solicitada.
Bajo T7 promotor
D. Equipo necesario para el paso 4 (preparación de células sintéticas)
incubadora de suelo o ThermomixerMRCTOU-120-2Incubadora agitadora de laboratorio 450x450mm, 400rpm, 70 ° C
Beca PHMT Bio PSC18Centrífuga Thermo Mixer
Thermo Scientific75004270(75003629) - TX-400 4 x 400mL Rotor de cubeta oscilante.
Adecuado para tubos de 15 mL.
Preferiblemente cubos oscilantes.
Debe permitir al menos 1000 x g.
Preenfriado a 4 °C.
Centrífuga de mesaThermo Scientific75002420(75003424) - 24 x 1,5/2,0 ml de rotor con ClickSeal.
Adecuado para viales Eppendorf.
Preenfriado a 4 °C.
Mezclador de vórticeScientific industriesSI-0256
Cubo de hielo picadoBel-ArtM18848-4001
2 mL viales de vidrio con cuello de roscaCSI Analytical InnovationsVT009M-1232
Tubos de plástico estériles de 15 mLThermo Scientific339651
Tubos de plástico esterilizados de 1,5 mLEppendorf30120086
Puntas de pipetaesterilizadas CorningEsterilizadas en autoclave.
C en polvo Mezclador de vórtice Industrias científicas SI-0256 Bloque calefactor TECHNE FDB03AD < RNasaAgitador de

Referencias

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Blain, J. C., Szostak, J. W. Progress toward synthetic cells. Annual review of biochemistry. 83, 615-640 (2014).
  2. Richmond, D. L., et al. Forming giant vesicles with controlled membrane composition, asymmetry, and contents. Procee....

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