Method Article

Adaptaciones específicas de miosina de ensayos de motilidad basados en microscopía de fluorescencia in vitro

DOI:

10.3791/62180

February 4th, 2021

In This Article

Summary

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Aquí se presenta un procedimiento para expresar y purificar la miosina 5a seguido de una discusión de su caracterización, utilizando ensayos basados en microscopía de fluorescencia in vitro de conjunto y molécula única, y cómo estos métodos pueden modificarse para la caracterización de la miosina 2b no muscular.

Abstract

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Las proteínas de miosina se unen e interactúan con la actina filamentosa (F-actina) y se encuentran en los organismos a través del árbol filogenético. Su estructura y propiedades enzimáticas se adaptan a la función particular que ejecutan en las células. La miosina 5a camina procesivamente sobre la F-actina para transportar melanosomas y vesículas en las células. Por el contrario, la miosina 2b no muscular funciona como un filamento bipolar que contiene aproximadamente 30 moléculas. Mueve la F-actina de polaridad opuesta hacia el centro del filamento, donde las moléculas de miosina trabajan de forma asíncrona para unir la actina, impartir un golpe de potencia y disociarse antes de repetir el ciclo. La miosina 2b no muscular, junto con sus otras isoformas no musculares de miosina 2, tiene funciones que incluyen la adhesión celular, la citocinesis y el mantenimiento de la tensión. La mecanoquímica de las miosinas se puede estudiar mediante la realización de ensayos de motilidad in vitro utilizando proteínas purificadas. En el ensayo de filamento de actina deslizante, las miosinas se unen a una superficie de cubierta de microscopio y translocan F-actina etiquetada fluorescentemente, que se puede rastrear. Sin embargo, en el ensayo de motilidad de molécula / conjunto único, la F-actina se une a un codaño y se observa el movimiento de moléculas de miosina etiquetadas fluorescentemente en la F-actina. En este informe, se describe la purificación de la miosina 5a recombinante de células Sf9 mediante cromatografía de afinidad. Después de esto, describimos dos ensayos basados en microscopía de fluorescencia: el ensayo de filamento de actina deslizante y el ensayo de motilidad invertida. A partir de estos ensayos, se pueden extraer parámetros como las velocidades de translocación de actina y las longitudes y velocidades de ejecución de una sola molécula utilizando el software de análisis de imágenes. Estas técnicas también se pueden aplicar para estudiar el movimiento de filamentos individuales de las isoformas de miosina 2 no muscular, discutidas aquí en el contexto de la miosina 2b no muscular. Este flujo de trabajo representa un protocolo y un conjunto de herramientas cuantitativas que se pueden utilizar para estudiar la dinámica de molécula única y conjunto de miosinas no musculares.

Introduction

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Las miosinas son proteínas motoras que ejercen fuerza sobre los filamentos de actina utilizando la energía derivada de la hidrólisis de trifosfato de adenosina (ATP)1. Las miosinas contienen un dominio de cabeza, cuello y cola. El dominio de la cabeza contiene la región de unión a la actina, así como el sitio de unión al ATP y la hidrólisis. Los dominios del cuello están compuestos de motivos de CI, que se unen a cadenas ligeras, calmodulina o proteínas similares a la calmodulina2,3. La región de la cola tiene varias funciones específicas para cada clase de miosinas, que incluyen, entre....

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Protocol

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1. Purificación de proteínas

  1. Lisis celular y extracción de proteínas
    1. Prepare un búfer de extracción 1.5x basado en la Tabla 1. Filtrar y conservar a 4 °C.
    2. Comience a descongelar los gránulos celulares en hielo. Mientras los gránulos se descongelan, complemente 100 ml de tampón de extracción con 1,2 mM de ditiotereitol (TDT), 5 μg/ml de leupeptina, 0,5 μM de fenilmetilsulfonil fluoruro (PMSF) y dos comprimidos inhibidores de la proteasa. Manténgase en hielo.
    3. Una vez que el pellet se haya descongelado, agregue 1 ml del tampón de extracción suplementado por 10 ml de cultivo celular. Por ejemplo, si los gránulos cel....

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Results

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La purificación de la miosina se puede evaluar mediante la realización de una electroforesis en gel reductora de dodecil sulfato de sodio-poliacrilamida (SDS-PAGE) como se muestra en la Figura 2. Si bien esta cifra representa la miosina final post-dializada, SDS-PAGE se puede realizar en alícuotas de las diversas etapas del procedimiento de purificación para identificar cualquier producto perdido por el sobrenadante. Myosin 5a HMM tiene una banda en el rango de 120-130 kDa y la miosina no mu.......

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Discussion

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Aquí se presenta un flujo de trabajo para la purificación y caracterización in vitro de la miosina 5a y la miosina no muscular 2b. Este conjunto de experimentos es útil para cuantificar las propiedades mecanoquímicas de las construcciones de miosina purificada de una manera rápida y reproducible. Aunque las dos miosinas que se muestran aquí son solo dos ejemplos específicos de las muchas posibilidades, las condiciones y técnicas se pueden aplicar, con cierta sastrería, a la mayoría de las miosinas y a muchas otras proteí.......

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Disclosures

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Los autores declaran no tener conflicto de intereses.

Acknowledgements

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Agradecemos al Dr. Fang Zhang por la asistencia técnica con la preparación de los reactivos utilizados para recopilar estos datos. Este trabajo fue apoyado por los fondos del Programa de Investigación Intramuros NHLBI / NIH HL001786 a J.R.S.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
1 mL JeringaBD309628
2 M CaCl2 SolutionVWR10128-558
2 M MgCl2 SoluciónVWR10128-298
27 AgujaBecton Dickinson309623
5 M NaCl SolutionKD MedicalRGE-3270
<Ácido acético fuerte>ThermoFisher Scientific984303
Acetato de amiloLadd Research Industries10825
Anti-FLAG M2 Affinity GelMillipore SigmaA2220
https://www.sigmaaldrich.com/content/dam/sigma-aldrich/docs/Sigma/Bulletin/a2220bul.pdfATPMillipore SigmaA7699
Biotinilado G-ActinaCitoesqueleto, Inc.AB07
Albúmina sérica bovinaMillipore Sigma5470
bPEG-silanoLaysan Bio, IncBiotina-PEG-SIL-3400-1g
Bradford Reactivo ConcentradoBio-Rad5000006
CalmodulinaPMID: 2985564
catalasa< fuerte/>Millipore SigmaC4
(Sf9) en SF-900 II SFMThermoFisher Scientific 11496015http://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/bevtest.pdf https://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/bactobac_man.pdf
Circular Paper - Gliding AssayMillipore SigmaWHA1001125
Circular Filter Paper - Ensayo invertidoMillipore SigmaWHA1001090
cOmplete, Tabletas Inhibidoras de la Proteasa sin EDTAMillipore Sigma5056489001Esto debe almacenarse a 4 & C. Los comprimidos se pueden utilizar directamente o se pueden reconstituir como una solución madre 25x disolviendo 1 comprimido en 2 mL de agua destilada. La solución resultante se puede almacenar a 4 & grados; C durante 1-2 semanas o al menos 12 semanas a -20 °C. 
(100.000 MWCO)EMD Millipore CorporationUFC910024El MWCO del tubo no es necesariamente "talla única", siempre y cuando el MWCO sea menor que el peso molecular total de la proteína que se está purificando. El NM2b se concentró con un tubo de 100.000 MWCO y el M5a se concentró con un tubo de 30.000 MWCO.
Coomassie Brilliant Blue R-250 DyeThermoFisher Scientific20278
Coverslip RackMillipore SigmaZ688568-1EA
strong>Coverslips: Ensayo de filamento de acción deslizanteVWR International48366-227
Coverslips: Ensayo de motilidad invertida Azer ScientificES0107052
Tubo de diálisis (3500 Dalton MCWO)Fischer Scientific08-670-5AEl diámetro del tubo de diálisis puede variar, pero el MWCO debe ser el mismo. El NM2b utilizado en este trabajo se dializó en un tubo de diálisis de 18 mm. Los tubos se pueden almacenar en una solución de alcohol al 20% a 4 & C.
DL-DithiothreitolMillipore SigmaD0632
Double-Sided TapeOffice Depot909955
DYKDDDDK PeptideGenScriptRP10586Se puede disolver en un tampón que contiene 0,1 M de NaCl, 0,1 mM de EGTA, 3 mM de NaN3 y 10 mM de MOPS (pH 7,2) hasta una concentración final de 50 mg/mL. Esto se puede almacenar a -20 ° C como 300 y micro; L alícuotas. 
EGTAMillipore SigmaE4378
Elution ColumnBio-Rad761-1550Estos se pueden reutilizar. Para limpiar, enjuague la columna con 2-3 volúmenes de columna de PBS y agua destilada. Enfríe la columna a 4 grados; C antes de usar.
Fischer ScientificA4094
G-actinaPMID: 4254541stock de G-actina se puede almacenar a 200 μ M en líquido N2.
GlucosaMillipore SigmaG8270
Glucosa oxidasaMillipore SigmaG2133
Solución tampón de glicina, 100 mM, pH 2-2,5, 1 LSanta Cruz Biotechnologysc-295018
HaloTagPromegaG100A
HClMillipore Sigma320331
KClFischer ScientificP217-500
Puntas de pipeta de orificio grandeFischer Scientific02-707-134
Inhibidor de la proteasa de leupeptinaThermoFisher Scientific78435
Mark12 Escalera estándar sin teñirThermoFisher ScientificLC5677
MetanolMillipore SigmaMX0482
MetilcelulosaMillipore SigmaM0512
Microscope SlidesFischer Scientific12-553-10
MOPSFischer ScientificBP308-100
mPEG-silaneLaysan Bio, IncMPEG-SIL-2000-1g
Myosin Light Chain KinasePMID: 23148220MLCK marcado con FLAG se puede purificar de la misma manera que se purificó la miosina marcada con FLAG en este documento. 
NaN3Millipore SigmaS8032
NeutrAvidinThermoFisher Scientific31050
NitrocelulosaLadd Research Industries10800
NuPAGE 4 a 12% Bis-Tris Mini Protein Gel, 15 pocillosThermoFisher ScientificNP0323PK2
NuPAGE LDS Sample Buffer (4X)ThermoFisher ScientificNP0007
fuerte, pH 7,4ThermoFisher Scientific10010023
PMSFMillipore Sigma78830El PMSF se puede hacer como una solución madre de 0,1 M en isopropanol y almacenarse en 4 °C. La adición de isopropanol da como resultado la precipitación de cristales, que se pueden disolver agitando a temperatura ambiente. Inmediatamente antes de su uso, PMSF se puede añadir gota a gota a una solución de agitación rápida hasta una concentración final de 0,1 mM.
cuchillas de afeitarOffice Depot397492
Rhodamina-FaloidinaThermoFisher ScientificR415Stock se puede diluir en metanol al 100% hasta una concentración final de 200 μM.
Sf9 MediaThermoFisher Scientific12658-027Esto debe almacenarse a 4&°C. Su vida útil es de 18 meses a partir de la fecha de fabricación.
cultivo de tejidos fuerte - Ensayo deslizanteCorningfuerte Cada placa cultivo de tejidos puede contener aproximadamente nueve cubreobjetos.
cultivo de tejidos fuerte - Ensayo invertidoCorningfuerte Cada placa cultivo de tejidos puede contener aproximadamente cuatro cubreobjetos.
Lados lisos 200 y micro; L Puntas de pipetaThomas Scientific1158U38
EQUIPMENT
CentrífugaThermoFisher Scientific75006590
MicroscopioNikonModelo: Eclipse Ti con sistema H-TIRF con objetivo TIRF 100x (N.A. 1.49)
microscopio fuerteAndor: cámara EMCCD iXon DU888 (formato de sensor de 1024 x 1024)
microscopio fuerte<>Tokai HITUnidad
< > fuerte< / unidad decuatro láseres > estado sólido para 405 nm, 488 nm, 561 nm y 640 nm
Mid Bench CentrifugageThermoFisher ScientificModel: CR3i
Misonix SonicatorMisonixXL2020
Optima Max-Xp Ultracentrífuga de sobremesaBeckman Coulter393315
Plasma-CleanerDiener electronic GmbH + Co. KGSystem Tipo: Zepto
Sonda de sonicador (3,2 mm)Qsonica4418
Standard IncubatorBinderModelo: 56
Waverly Tube MixerWaverlyTR6E
SOFTWARE
ImageJ FIJIhttps://imagej.net/Fiji/Downloads
FAST (Version 1.01)http://spudlab.stanford.edu/fast-for-automatic-motility-measurementsFAST está disponible para sistemas basados en Mac OSX y Linux.
Image Stabilizer Pluginhttps://imagej.net/Image_Stabilizer
ImageJ TrackMatehttps://imagej.net/TrackMate
Imaging SoftwareNIS Elements (paquete AR)
http://www.cs.cmu.edu/~kangli/code/Image_Stabilizer.html
https://github.com/turalaksel/FASTrack
https://github.com/turalaksel/FASTrack/blob/master/README.md
><0 < / láser de microscopio personalizada File:TrackMate-manual.pdf

References

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  1. Sellers, J. R. Myosins: A diverse superfamily. Biochimica et Biophysica Acta - Molecular Cell Research. 1496 (1), 3-22 (2000).
  2. Cheney, R. E., Mooseker, M. S. Unconventional myosins. Current opinion in cell biology. 4 (1), 27-35 (1992).
  3. Rhoads, A. R., Friedberg, ....

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