Este método describe la purificación por citometría de flujo de MEP y MKp de fémures, tibias y huesos pélvicos de ratones.
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Artículo de método
Este método describe la purificación por citometría de flujo de MEP y MKp de fémures, tibias y huesos pélvicos de ratones.
Los megacariocitos de la médula ósea son células poliploides grandes que aseguran la producción de plaquetas sanguíneas. Surgen de las células madre hematopoyéticas a través de la megacariopoyesis. Las etapas finales de este proceso son complejas y clásicamente involucran a los progenitores bipotentes de megacariocitos-eritrocitos (MEP) y los progenitores de megacariocitos unipotentes (MKp). Estas poblaciones preceden a la formación de megacariocitos de buena fe y, como tales, su aislamiento y caracterización podrían permitir el análisis robusto e imparcial de la formación de megacariocitos. Este protocolo presenta en detalle el procedimiento para recolectar células hematopoyéticas de la médula ósea de ratón, el enriquecimiento de progenitores hematopoyéticos a través del agotamiento magnético y, finalmente, una estrategia de clasificación celular que produce poblaciones MEP y MKp altamente purificadas. Primero, las células de la médula ósea se recolectan del fémur, la tibia y también la cresta ilíaca, un hueso que contiene un alto número de progenitores hematopoyéticos. El uso de huesos de la cresta ilíaca aumenta drásticamente el número total de células obtenidas por ratón y, por lo tanto, contribuye a un uso más ético de los animales. Se optimizó un agotamiento del linaje magnético utilizando perlas magnéticas de 450 nm que permiten una clasificación celular muy eficiente por citometría de flujo. Finalmente, el protocolo presenta la estrategia de etiquetado y gating para la clasificación de las dos poblaciones progenitoras de megacariocitos altamente purificadas: MEP (Lin-Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9dim)y MKp (Lin- Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9brillante) ). Esta técnica es fácil de implementar y proporciona suficiente material celular para realizar i) caracterización molecular para un conocimiento más profundo de su identidad y biología, ii) ensayos de diferenciación in vitro, que proporcionarán una mejor comprensión de los mecanismos de maduración de los megacariocitos, o iii) modelos in vitro de interacción con su microambiente.
Las plaquetas sanguíneas son producidas por los megacariocitos. Estas grandes células poliploides se localizan en la médula ósea y como para todas las células sanguíneas se derivan de las Células Madre Hematopoyéticas (HSC)1. La vía clásica de producción de megacariocitos en la médula ósea se origina a partir de HSC e implica la generación de diferentes progenitores que restringen progresivamente su potencial de diferenciación2. El primer progenitor que firma el compromiso con el linaje megacariocítico es el Progenitor Megacariocito-Eritrocito (MEP), un progenitor bipotente capaz de producir tanto células eritroides como....
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Los protocolos con animales se realizaron de acuerdo con el Comité CREMEAS sobre la Ética de los Experimentos con Animales de la Universidad de Estrasburgo (Comité Régional d'Ethique en Matière d'Expérimentation Animale Strasbourg. Número de permiso: E67-482-10).
1. Colección de hueso de ratón
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El análisis fenotípico de las células identificadas como MEP y MKp se realizó mediante citometría de flujo. Las células fueron etiquetadas con anticuerpos conjugados de fluorescencia a CD41a y CD42c, marcadores clásicos de los linajes megacariocítico y plaquetario. Ambos marcadores fueron expresados por las células de la población MKp mientras que estos marcadores aún no se detectan en la superficie de las células de la población MEP (Figura 4Ai,4Aii). La poliploidía es un s.......
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El método descrito en este documento permite la extracción y purificación de MEP y MKp de ratón. Un parámetro importante en la optimización del protocolo fue obtener un número suficiente de células que fueran compatibles con la mayoría de los ensayos moleculares y celulares. La práctica general de la recolección de hueso de ratón para la extracción de células hematopoyéticas generalmente consiste en cosechar tanto los fémures como las tibias de cada ratón. Por lo tanto, el hueso pélvico, otra fuente de material hematopoy.......
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Los autores no declaran intereses financieros contrapuestos.
Los autores desean agradecer a Monique Freund, Catherine Ziessel y Ketty por su asistencia técnica. Este trabajo fue apoyado por ARMESA (Association de Recherche et Développement en Médecine et Santé Publique), y por Grant ANR-17-CE14-0001-01 a Henri.de la. Salle.
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Agujas de calibre 21 | BD Microlance | 301155 | |
| 7AAD | Sigma-Aldrich | A9400 | |
| Anticuerpo Gr-1-biotina | eBioscience | 13-5931-85 | Depleción magnética |
| Anticuerpo B220-biotina | eBioscience | 13-0452-85 | Depleción magnética |
| Anticuerpo Mac-1-biotina | eBioscience | 13-0112-85 | Magnético depleción |
| Anticuerpo CD3e-biotina | eBioscience | 13-0031-85 | Depleción magnética |
| Anticuerpo CD4-biotina | eBioscience | 13-9766-82 | Depleción magnética |
| Anticuerpo CD5-biotina | eBioscience | 13-0051-85 | Depleción magnética |
| Anticuerpo CD8a-biotina | eBioscience | 13-0081-85 | Depleción magnética |
| Anticuerpo TER119-biotina | eBioscience | 13-5921-85 | Depleción magnética |
| Anticuerpo CD127-biotina | eBioscience | 13-1271-85 | Depleción magnética |
| Anticuerpo CD45-FITC | eBioscience | 11-0451-85 | Clasificación celular |
| Anticuerpo CD45-PE | eBioscience | 12-0451-83 | Clasificación celular |
| Anticuerpo TER119-APC | eBioscience | 17-5921-83 | Clasificación de celdas |
| Anticuerpo CD45-PECy7 | eBioscience | 25-0451-82 | Clasificación celular |
| Anticuerpo CD45-biotina | eBioscience | 13-0451-85 | Clasificación celular |
| Anticuerpo CD9-FITC | eBioscience | 11-0091-82 | Clasificación celular |
| Anticuerpo c-kit-APC | eBioscience | 17-1171-83 | Clasificación celular |
| Anticuerpo Sca-1-PE | eBioscience | 12-5981-83 Clasificación de | células |
| Anticuerpo CD16/32-PE | eBioscience | 12-0161-83 | Clasificación de células |
| Anticuerpo CD150-PECy7 | eBioscience | 25-1502-82 | Clasificación de células |
| Medio de cultivo StemSpan-SFEM | Tecnologías de células madre | #09650 | |
| Almohadilla de disección | Fisher Scientific | 10452395 | |
| DPBS | Life Technologies | 14190-094 | |
| Etanol | vWR Productos químicos | 83813.360 | |
| Pinzas | Euronexia | P-120-AS | |
| Pipeta de vidrio | Dutscher | 42011 | |
| Imán : DynaMag-5 | Thermo Fisher Scientific | 12303D | |
| Perlas magnéticas: Dynabeads Sheep Anti-Rat IgG | Thermo Fisher Scientific | 11035 | |
| Megacult | Tecnologías de células madre# | 04970 | |
| MethoCult SF M3436 | Tecnologías de células madre | #03436 | |
| Suero para terneros recién nacidos | Dutscher | 50750-500 | |
| Lisis de glóbulos rojos solución | BD Bioscience | 555899 | |
| Fisher Scientific | |||
| Euronexia | C-165-ASB | ||
| Jeringas estériles de 1 mL | BD Bioscience | ||
| Tubos estériles de 15 ml | Sarstedt | 62.554.502 | |
| Tubos estériles de polipropileno de 5 ml | Falcon | 352063 | |
| Tubos estériles de poliestireno de 5 ml | Falcon | 352054 | |
| Tubos estériles con 70µ m tapón de filtro de células | Falcon | 352235 | |
| Placa de Petri estéril | Falcon | 353003 | |
| Estreptavidina-APC-Cy7 | BD Biosciences | 554063 | Clasificación de células |
| Rodillo de tubo | Benchmark Scientific | R3005 |
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An erratum was issued for: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors. A figure was updated.
Figure 2 was updated from:

Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.
to:

Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.