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Artículo de método

Aislamiento de progenitores de megacariocitos de ratón

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DOI:

10.3791/62498

20 de mayo de 2021

En este artículo

Aviso de erratum

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Resumen

Este método describe la purificación por citometría de flujo de MEP y MKp de fémures, tibias y huesos pélvicos de ratones.

Resumen

Los megacariocitos de la médula ósea son células poliploides grandes que aseguran la producción de plaquetas sanguíneas. Surgen de las células madre hematopoyéticas a través de la megacariopoyesis. Las etapas finales de este proceso son complejas y clásicamente involucran a los progenitores bipotentes de megacariocitos-eritrocitos (MEP) y los progenitores de megacariocitos unipotentes (MKp). Estas poblaciones preceden a la formación de megacariocitos de buena fe y, como tales, su aislamiento y caracterización podrían permitir el análisis robusto e imparcial de la formación de megacariocitos. Este protocolo presenta en detalle el procedimiento para recolectar células hematopoyéticas de la médula ósea de ratón, el enriquecimiento de progenitores hematopoyéticos a través del agotamiento magnético y, finalmente, una estrategia de clasificación celular que produce poblaciones MEP y MKp altamente purificadas. Primero, las células de la médula ósea se recolectan del fémur, la tibia y también la cresta ilíaca, un hueso que contiene un alto número de progenitores hematopoyéticos. El uso de huesos de la cresta ilíaca aumenta drásticamente el número total de células obtenidas por ratón y, por lo tanto, contribuye a un uso más ético de los animales. Se optimizó un agotamiento del linaje magnético utilizando perlas magnéticas de 450 nm que permiten una clasificación celular muy eficiente por citometría de flujo. Finalmente, el protocolo presenta la estrategia de etiquetado y gating para la clasificación de las dos poblaciones progenitoras de megacariocitos altamente purificadas: MEP (Lin-Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9dim)y MKp (Lin- Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9brillante) ). Esta técnica es fácil de implementar y proporciona suficiente material celular para realizar i) caracterización molecular para un conocimiento más profundo de su identidad y biología, ii) ensayos de diferenciación in vitro, que proporcionarán una mejor comprensión de los mecanismos de maduración de los megacariocitos, o iii) modelos in vitro de interacción con su microambiente.

Introducción

Las plaquetas sanguíneas son producidas por los megacariocitos. Estas grandes células poliploides se localizan en la médula ósea y como para todas las células sanguíneas se derivan de las Células Madre Hematopoyéticas (HSC)1. La vía clásica de producción de megacariocitos en la médula ósea se origina a partir de HSC e implica la generación de diferentes progenitores que restringen progresivamente su potencial de diferenciación2. El primer progenitor que firma el compromiso con el linaje megacariocítico es el Progenitor Megacariocito-Eritrocito (MEP), un progenitor bipotente capaz de producir tanto células eritroides como....

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Protocolo

Los protocolos con animales se realizaron de acuerdo con el Comité CREMEAS sobre la Ética de los Experimentos con Animales de la Universidad de Estrasburgo (Comité Régional d'Ethique en Matière d'Expérimentation Animale Strasbourg. Número de permiso: E67-482-10).

1. Colección de hueso de ratón

  1. Sacrificar al animal de acuerdo con los lineamientos institucionales.
    NOTA: Los datos presentados en este manuscrito se obtuvieron de ratones C57Bl/6 de 8 a 12 semanas de edad. El número de células obtenidas y la frecuencia de las poblaciones citadas pueden variar con la edad y la cepa del ratón.
  2. Rocíe el cuerpo con etanol al 70....

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Resultados

El análisis fenotípico de las células identificadas como MEP y MKp se realizó mediante citometría de flujo. Las células fueron etiquetadas con anticuerpos conjugados de fluorescencia a CD41a y CD42c, marcadores clásicos de los linajes megacariocítico y plaquetario. Ambos marcadores fueron expresados por las células de la población MKp mientras que estos marcadores aún no se detectan en la superficie de las células de la población MEP (Figura 4Ai,4Aii). La poliploidía es un s.......

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Discusión

El método descrito en este documento permite la extracción y purificación de MEP y MKp de ratón. Un parámetro importante en la optimización del protocolo fue obtener un número suficiente de células que fueran compatibles con la mayoría de los ensayos moleculares y celulares. La práctica general de la recolección de hueso de ratón para la extracción de células hematopoyéticas generalmente consiste en cosechar tanto los fémures como las tibias de cada ratón. Por lo tanto, el hueso pélvico, otra fuente de material hematopoy.......

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Divulgaciones

Los autores no declaran intereses financieros contrapuestos.

Agradecimientos

Los autores desean agradecer a Monique Freund, Catherine Ziessel y Ketty por su asistencia técnica. Este trabajo fue apoyado por ARMESA (Association de Recherche et Développement en Médecine et Santé Publique), y por Grant ANR-17-CE14-0001-01 a Henri.de la. Salle.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Agujas de calibre 21BD Microlance301155
7AADSigma-AldrichA9400
Anticuerpo Gr-1-biotinaeBioscience13-5931-85Depleción magnética
Anticuerpo B220-biotinaeBioscience13-0452-85Depleción magnética
Anticuerpo Mac-1-biotinaeBioscience13-0112-85Magnético depleción
Anticuerpo CD3e-biotinaeBioscience13-0031-85Depleción magnética
Anticuerpo CD4-biotinaeBioscience13-9766-82Depleción magnética
Anticuerpo CD5-biotinaeBioscience13-0051-85Depleción magnética
Anticuerpo CD8a-biotinaeBioscience13-0081-85Depleción magnética
Anticuerpo TER119-biotinaeBioscience13-5921-85Depleción magnética
Anticuerpo CD127-biotinaeBioscience13-1271-85Depleción magnética
Anticuerpo CD45-FITCeBioscience11-0451-85Clasificación celular
Anticuerpo CD45-PEeBioscience12-0451-83Clasificación celular
Anticuerpo TER119-APCeBioscience17-5921-83Clasificación de celdas
Anticuerpo CD45-PECy7eBioscience25-0451-82Clasificación celular
Anticuerpo CD45-biotinaeBioscience13-0451-85Clasificación celular
Anticuerpo CD9-FITCeBioscience11-0091-82Clasificación celular
Anticuerpo  c-kit-APCeBioscience17-1171-83Clasificación celular
Anticuerpo Sca-1-PEeBioscience12-5981-83 Clasificación decélulas
Anticuerpo CD16/32-PEeBioscience12-0161-83Clasificación de células
Anticuerpo CD150-PECy7eBioscience25-1502-82Clasificación de células
Medio de cultivo StemSpan-SFEMTecnologías de células madre#09650
Almohadilla de disecciónFisher Scientific10452395
DPBSLife Technologies14190-094
EtanolvWR Productos químicos83813.360
PinzasEuronexiaP-120-AS
Pipeta de vidrioDutscher42011
Imán :  DynaMag-5Thermo Fisher Scientific12303D
Perlas magnéticas: Dynabeads Sheep Anti-Rat IgGThermo Fisher Scientific11035
MegacultTecnologías de células madre#04970
MethoCult SF M3436Tecnologías de células madre#03436
Suero para terneros recién nacidosDutscher50750-500
Lisis de glóbulos rojos soluciónBD Bioscience555899
Fisher Scientific
EuronexiaC-165-ASB
Jeringas estériles de 1 mLBD Bioscience
Tubos estériles de 15 mlSarstedt62.554.502
Tubos estériles de polipropileno de 5 mlFalcon352063
Tubos estériles de poliestireno de 5 mlFalcon352054
Tubos estériles con 70µ m tapón de filtro de célulasFalcon352235
Placa de Petri estérilFalcon353003
Estreptavidina-APC-Cy7BD Biosciences554063Clasificación de células
Rodillo de tuboBenchmark ScientificR3005
Bisturíes Tijeras 12308009 303172

Referencias

  1. Kaushansky, K. Historical review: megakaryopoiesis and thrombopoiesis. Blood. 111 (3), 981-986 (2008).
  2. Akashi, K., Traver, D., Miyamoto, T., Weissman, I. L. A clonogenic common myeloid progenitor that gives rise to all myeloid lineages. Nature. 404 (6774), 193-197 (....

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Reimpresiones y permisos

Erratum


Formal Correction: Erratum: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors
Posted by JoVE Editors on 7/28/2021. Citeable Link.

An erratum was issued for: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors. A figure was updated.

Figure 2 was updated from:

Hematopoietic cell separation diagram with flow cytometry result, showing Lin+ and Lin- fractions.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

to:

Hematopoietic cell separation process diagram with antibody labeling and magnet use, flow cytometry results.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

Etiquetas

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