Describimos un protocolo para inducir la transición de fase de la proteína 43 de unión al ADN TAR (TDP-43) por la luz en las neuronas motoras espinales utilizando el pez cebra como modelo.
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Artículo de método
Describimos un protocolo para inducir la transición de fase de la proteína 43 de unión al ADN TAR (TDP-43) por la luz en las neuronas motoras espinales utilizando el pez cebra como modelo.
La agregación anormal de proteínas y la vulnerabilidad neuronal selectiva son dos características principales de las enfermedades neurodegenerativas. Las relaciones causales entre estas características pueden interrogarse mediante el control de la transición de fase de una proteína asociada a la enfermedad en un tipo de célula vulnerable, aunque este enfoque experimental ha sido limitado hasta ahora. Aquí, describimos un protocolo para inducir la transición de fase de la proteína de unión al ARN / ADN TDP-43 en las neuronas motoras espinales de larvas de pez cebra para modelar la agregación citoplasmática de TDP-43 que ocurre en las neuronas motoras degeneradas en la esclerosis lateral amiotrófica (ELA). Describimos un método genético basado en el cromosoma artificial bacteriano (BAC) para administrar una variante optogenética de TDP-43 selectivamente a las neuronas motoras espinales del pez cebra. La alta translucidez de las larvas de pez cebra permite la transición de fase del TDP-43 optogenético en las neuronas motoras espinales mediante una simple iluminación externa utilizando un diodo emisor de luz (LED) contra peces sin restricciones. También presentamos un flujo de trabajo básico de imágenes en vivo de las neuronas motoras espinales del pez cebra y análisis de imágenes con el software Fiji / ImageJ disponible gratuitamente para caracterizar las respuestas del TDP-43 optogenético a la iluminación de la luz. Este protocolo permite la caracterización de la transición de fase de TDP-43 y la formación de agregados en un entorno celular vulnerable a la ELA, lo que debería facilitar la investigación de sus consecuencias celulares y de comportamiento.
Los gránulos de ribonucleoproteína (RNP) controlan una miríada de actividades celulares en el núcleo y el citoplasma mediante el ensamblaje de particiones sin membrana a través de la separación de fase líquido-líquido (LLPS), un fenómeno en el que un fluido homogéneo se demezcla en dos fases líquidas distintas1,2. El LLPS desregulado de las proteínas de unión al ARN que normalmente funcionan como componentes de gránulos RNP promueve la transición de fase anormal, lo que lleva a la agregación de proteínas. Este proceso se ha implicado en enfermedades del neurodesarrollo y neurodegenerativas3,4,5.
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Todo el trabajo con peces se llevó a cabo de acuerdo con la Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (número de identificación de aprobación 24-2) del Instituto Nacional de Genética (Japón), que tiene un Aseguramiento de Bienestar Animal en el archivo (número de garantía A5561-01) en la Oficina de Bienestar de Animales de Laboratorio de los Institutos Nacionales de Salud (NIH, Estados Unidos).
1. Construcción de BAC para la expresión del gen optogenético TDP-43 a partir del promotor mnr2b
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Imágenes en vivo de proteínas TDP-43 optogenéticas y no optogenéticas en las neuronas motoras espinales mnr2b + de larvas de pez cebra
Para inducir la transición de fase de TDP-43 en las neuronas motoras espinales en el pez cebra, se construyó un TDP-43h humano que está marcado con mRFP1 y CRY2olig22 en el N- y C-termini, respectivamente, y designado como opTDP-43h14 (Figura 1A). E.......
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La expresión mediada por mnr2b-BAC de opTDP-43h y EGFP-TDP-43z en pez cebra proporciona una oportunidad única para la obtención de imágenes en vivo de la transición de fase de TDP-43 en las neuronas motoras espinales. La transparencia óptica de los tejidos corporales de las larvas de pez cebra permite la estimulación optogenética simple y no invasiva de opTDP-43h. Las comparaciones entre neuronas motoras espinales individuales a lo largo del tiempo demostraron que la oligomerización dependiente de la luz de opTD.......
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KA y KK son los inventores de la propiedad intelectual descrita en este manuscrito y las patentes provisionales han sido presentadas por el Instituto Nacional de Genética.
Este trabajo fue apoyado por SERIKA FUND (KA), KAKENHI Grant números JP19K06933 (KA) y JP20H05345 (KA).
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Microscopio confocal | Olympus | FV1200 | |
| Microscopio de epifluorescencia | ZEISS | Axioimager Z1 | |
| Microscopio estereoscópico de fluorescencia | Leica | MZ16FA | |
| Plato base de vidrio | IWAKI | 3910-035 | |
| Incubadora | MEE | CN-25C | |
| Panel LED | Nanoleaf Limited | Kit inteligente Nanoleaf AURORA | |
| Medidor de potencia óptica | HIOKI | 3664 | |
| Sensor óptico | HIOKI | 9742-10 | |
| Solución de rojo de fenol 0.5% | Merck | P0290-100ML | |
| PrimeSTAR GXL DNA Polimerasa | TAKARA | R050A | |
| QIAquick Kit de extracción de gel | Qiagen | 28704 | |
| Plato de seis pocillos | FALCON | 353046 | |
| Sonda espectrómetro BLUE-Wave | StellerNet Inc. | VIS-50 | |
| Aguja de jeringa | TERUMO | NN-2725R | |
| TaKaRa Ex Taq | TAKARA | RR001A | |
| Tricane | Sigma-Aldrich | A5040 | |
| Pez cebra clon BAC CH211-172N16 | BACPAC Genómica | CH211-172N16 |
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